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Article de méthode

Application de l’acupotomie dans un modèle d’arthrose du genou chez le lapin

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DOI :

10.3791/65584

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20 octobre 2023

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1School of Acupuncture-Moxibustion and Tuina, Beijing University of Chinese Medicine, 2Acupuncture and Moxibustion Department, Beijing Hospital of Traditional Chinese Medicine affiliated with Capital Medical University, 3The Third Affiliated Hospital of Beijing University of Chinese Medicine

Dans cet article

Résumé

Dans ce protocole, un modèle d’arthrose du genou a été préparé en utilisant la méthode Videman modifiée, et les procédures opératoires et les précautions de l’acupotomie sont détaillées. L’efficacité de l’acupotomie a été démontrée en testant les propriétés mécaniques du quadriceps fémoral et du tendon et les propriétés mécaniques et morphologiques du cartilage.

Résumé

L’arthrose du genou (KOA) est l’une des maladies les plus fréquemment rencontrées dans le service orthopédique, ce qui réduit sérieusement la qualité de vie des personnes atteintes de KOA. Parmi plusieurs facteurs pathogènes, le déséquilibre biomécanique de l’articulation du genou est l’une des principales causes de KOA. L’acupotomologie croit que le rétablissement de l’équilibre mécanique de l’articulation du genou est la clé du traitement de l’AAK. Des études cliniques ont montré que l’acupotomie peut réduire efficacement la douleur et améliorer la mobilité du genou en réduisant l’adhérence, la contracture des tissus mous et les points de concentration de stress dans les muscles et les tendons autour de l’articulation du genou.

Dans ce protocole, nous avons utilisé la méthode de Videman modifiée pour établir un modèle KOA en immobilisant le membre postérieur gauche en position droite. Nous avons décrit en détail le mode opératoire et les précautions liées à l’acupotomie et évalué l’efficacité de l’acupotomie en conjonction avec la théorie de la « modulation des muscles et des tendons pour traiter les troubles osseux » grâce à la détection des propriétés mécaniques du quadriceps fémoral et du tendon, ainsi que de la mécanique et de la morphologie du cartilage. Les résultats montrent que l’acupotomie a un effet protecteur sur le cartilage en ajustant les propriétés mécaniques des tissus mous autour de l’articulation du genou, en améliorant l’environnement de stress cartilagineux et en retardant la dégénérescence du cartilage.

Introduction

L’arthrose du genou est la forme la plus fréquente d’arthrose, souvent reconnue comme une maladie de l’articulation entière caractérisée par une dégénérescence du cartilage articulaire, qui se manifeste cliniquement par une douleur, un gonflement et un mouvement limité des articulations touchées1. Selon des statistiques épidémiologiques récentes, la KOA aurait touché 654,1 millions de personnes âgées de 40 ans ou plus dans le monde en 2020. La prévalence et l’incidence de l’arthrose cutanée augmentent avec l’âge, sont les plus élevées chez les adultes d’âge moyen et plus âgés, et touchent plus de femmes que d’hommes2. La prévalence de l’arthrose de l’alcool et de l’obésité dans le monde est susceptible d’augmenter en raison du vieillissement de la population et de l’épidémie d’obésité, ce qui constitue une menace croissante pour la santé publique mondiale. L’âge, le sexe, l’obésité, les traumatismes et d’autres facteurs de risque complexes associés au KOA ont tous un impact direct sur l’instabilité du genou, faisant d’un déséquilibre biomécanique dans les articulations du genou l’une des principales causes du KOA3.

Dans des conditions physiologiques normales, l’articulation du genou est dans un état d’équilibre mécanique, garantissant que les charges mécaniques dans l’articulation sont uniformément réparties sur le cartilage. Tout déséquilibre mécanique dans l’articulation du genou peut entraîner un stress anormal dans le cartilage, entraînant une dégénérescence du cartilage et l’apparition de KOA4. Le système muscle-tendon est le principal système dynamique qui maintient l’équilibre mécanique de l’articulation du genou. Le mouvement coordonné du système muscle-tendon extenseur et fléchisseur peut répartir uniformément la charge générée par le mouvement sur la surface du cartilage, évitant le déséquilibre métabolique des contraintes cartilagineuses locales au-delà de sa charge physiologique qui entraîne une perte de cartilage5. La diminution de la force musculaire est la principale cause de troubles du mouvement intramusculaire et de lésions cartilagineuses, qui peuvent survenir avant le KOA symptomatique.

Le KOA peut également induire une inhibition musculaire arthrogène (IAM), se manifestant par une faiblesse musculaire et une diminution de la force musculaire autour du genou6. Parmi ces muscles, le groupe du quadriceps fémoral fonctionne comme le seul extenseur du genou, une structure importante dans le maintien de la stabilité de l’articulation du genou. Des études ont montré qu’une diminution de la section transversale du quadriceps et de la force musculaire est significativement et positivement corrélée à la progression du KOA7. Le déclin de la force du quadriceps affecte le modèle de marche, la stabilité du genou, les schémas de mouvement et de nombreuses autres fonctions. De plus, le déclin de la force musculaire altère la fonction tendineuse, se manifestant par une diminution de la rigidité tendineuse, du module d’élasticité et d’autres propriétés biomécaniques8. Dans la réparation à long terme, des changements tels que l’adhérence et la contracture peuvent se produire dans les muscles et les tendons de l’articulation du genou, endommageant leurs propriétés mécaniques, provoquant une instabilité articulaire et formant finalement un cercle vicieux de changements pathologiques de KOA. Il est donc crucial pour le traitement KOA d’améliorer les propriétés mécaniques du système musculo-tendineux et de rétablir l’équilibre mécanique articulaire.

Parmi les causes de KOA, le déséquilibre biomécanique est le principal facteur inducteur de la douleur au genou, du dysfonctionnement, des lésions inflammatoires et de la dégénérescence du cartilage9. Par conséquent, la clé du traitement de l’arthrose est de rétablir l’équilibre biomécanique de l’articulation du genou. L’acupotomologie croit que l’étiologie et la pathogenèse du KOA sont un « déséquilibre mécanique ». Lorsque les caractéristiques mécaniques des tissus mous autour du genou changent anormalement, l’articulation du genou perd son équilibre mécanique et l’environnement de stress mécanique anormal de l’articulation accélère la dégénérescence, provoquant une stimulation inflammatoire pour aggraver encore les adhérences des tissus mous, les contractures et le déclin de la stabilité articulaire. Ce cercle vicieux finit par se transformer en KOA. En relâchant les adhérences et les contractures des tissus mous, ainsi qu’en réduisant la concentration du stress dans les muscles et les tendons, l’acupotomie en conjonction avec la théorie de la « modulation des muscles et des tendons pour traiter les troubles osseux » améliore la mécanique des tissus mous et « module les muscles et les tendons », ce qui équilibre le stress mécanique de l’articulation, soulageant efficacement la dégénérescence du cartilage et « traitant les troubles osseux »10. En termes de sélection de modèles animaux, sur la base de l’objectif de cette étude, nous avons préparé le modèle KOA par la méthode modifiée de Videman d’immobilisation de l’extension des membres postérieurs gauches.

Cet article détaille l’établissement du modèle KOA en utilisant la méthode modifiée de Videman d’immobilisation de l’extension du membre postérieur gauche et la méthode de fonctionnement et les précautions de l’acupotomie. Nous démontrons l’efficacité de l’acupotomie en testant les propriétés mécaniques du quadriceps fémoral et du tendon et en détectant les changements dans le stress et la morphologie du cartilage articulaire.

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Protocole

Toutes les expériences sur les animaux ont été examinées et approuvées par le Comité d’éthique animale de l’Université de médecine chinoise de Pékin (No. BUCM-4-2022010101-1097). Dans ce protocole, 24 lapins néo-zélandais mâles âgés de 6 semaines ont été hébergés dans des conditions spécifiques, à savoir 20-25 °C, 50-60% d’humidité et un cycle circadien de 12 heures de lumière/12 heures d’obscurité, avec un accès libre à un régime alimentaire régulier. Les lapins ont été anesthésiés et sacrifiés en combinant une anesthésie profonde et une embolisation à l’air. La douleur est l’une des caractéristiques pathologiques typiques de l’AOG et est également l’un des indicateurs clés utilisés pour évaluer les modèles animaux de l’AAO et les méthodes d’intervention, de sorte que les analgésiques ne sont pas utilisés lors de la préparation du modèle.

1. Le modèle de lapin KOA

  1. Anesthésier les lapins avec 3 % de pentobarbital sodique (30 mg/kg) par voie intraveineuse au bord de l’oreille. Pour confirmer le niveau d’anesthésie approprié, recherchez un réflexe cornéen considérablement affaibli ou absent et l’absence de douleur lors du clampage de la peau avec une pince hémostatique. Pendant l’anesthésie, ajoutez 2 à 3 gouttes de lubrifiant dans les yeux des lapins toutes les 15 minutes pour éviter que les yeux des lapins ne se dessèchent.
  2. Après l’anesthésie, fixez chaque lapin en position couchée, en tirant le membre postérieur gauche en position complètement étendue.
  3. Fixez le membre postérieur gauche de chaque lapin en position étendue.
    1. Comme première couche, utilisez du ruban adhésif médical pour couvrir la peau du lapin de l’aine à l’articulation de la cheville.
    2. En deuxième couche, enroulez du ruban en mousse double face de 36 mm de large sur le ruban médical, puis enroulez un bandage en polymère de l’aine à l’articulation de la cheville. Assurez-vous que l’articulation du genou est droite à 180° et que l’articulation de la cheville est dorsifléchie de 60°.
    3. En troisième couche, immobilisez les articulations avec de petites attelles à l’avant et à l’arrière des articulations du genou et de la cheville, et enroulez un treillis d’acier autour de la couche la plus externe pour vous protéger contre les morsures. Exposez les orteils des lapins pour observer si la circulation sanguine est normale.
  4. Immobiliser les animaux pendant 6 semaines pour établir le modèle KOA (Figure 1).
    REMARQUE : 1) Pendant la préparation du modèle, inspectez les moules tous les deux jours. Si des moules sont lâches ou détachés, anesthésiez les lapins et immobilisez à nouveau les membres postérieurs gauches dans une position étendue. 2) Posez des tapis de protection au fond des cages pour éviter que les membres des lapins ne se coincent et ne causent des blessures.

2. Intervention d’acupotomie

REMARQUE : Avant le début de l’intervention d’acupotomie, anesthésier les lapins avec du pentobarbital sodique à 3 % (30 mg/kg) par injection intraveineuse sur le bord de l’oreille.

  1. Déterminez les points de traitement.
    1. Rasez la fourrure de l’articulation du genou du membre postérieur gauche du lapin.
    2. Palper l’articulation du genou du lapin, l’insertion du tendon du muscle fémoral médial, l’insertion du tendon fémoral droit, l’insertion du tendon du biceps fémoral et la bourse du pied d’oie. Marquez les indurations pathologiques des muscles locaux avec un marqueur cutané stérile. Désinfectez l’articulation du genou trois fois avec des cycles alternés d’iodophor médical et d’alcool médical à 75 %.
  2. Opération de l’acupotomie
    1. Gardez la lame d’acupotomie parallèle au sens de déplacement parallèle au tendon et à l’axe longitudinal du membre.
    2. Utilisez le pouce de la main gauche pour appuyer sur la peau entrant dans le point de repère et déplacez-vous latéralement de manière à ce que les vaisseaux sanguins et les nerfs soient séparés sur la face ventrale du pouce.
    3. Avec la poignée d’acupotomie dans la main droite, appuyez rapidement avec une petite force pour que la lame d’acupotomie traverse instantanément la peau. Avancez lentement la lame d’acupotomie jusqu’aux indurations musculaires locales et faites des coupes longitudinales et des oscillations latérales.
    4. Une fois l’opération d’acupotomie terminée, désinfectez à nouveau l’articulation du genou et appliquez un pansement.
  3. Effectuez cette opération une fois par semaine pendant 4 semaines (Figure 2).
    REMARQUE : 1) S’il n’y a pas d’induration ou de tissu en forme de cordon touché à l’insertion tendineuse du vaste médial, du vaste latéral, du droit fémoral, du biceps fémoral ou de la bourse ansérine, l’aiguille d’acupotomie doit être utilisée pour libérer directement leurs insertions tendineuses. 2) Pendant l’intervention d’acupotomie, n’immobilisez pas les membres postérieurs gauches des lapins du groupe d’acupotomie et du groupe modèle en position d’extension.

3. Module d’élasticité du quadriceps fémoral

REMARQUE : 1) Cette expérience a utilisé l’instrument de diagnostic à ultrasons par élastographie à ondes de cisaillement (SWE) en temps réel pour mesurer le module d’élasticité du quadriceps fémoral in vivo dans chaque groupe de lapins. 2) Le testeur doit être un échographiste expérimenté en détection par ultrasons. Lors de la mesure, la sonde à ultrasons doit être placée doucement sur la surface de la peau du quadriceps pour éviter les tensions musculaires locales. Les mesures doivent être prises lorsque l’animal est dans un état calme, sans lutte ni activité. Si l’animal est actif, attendez qu’il soit calme avant d’effectuer le test.

  1. Rasez la fourrure pour exposer la peau dans la région des quadriceps de la patte arrière gauche.
  2. Utilisez l’échographie bidimensionnelle conventionnelle pour localiser le quadriceps musculo-abdominal et déterminer la région d’intérêt (ROI), réglée à une profondeur de 1 à 2 cm.
  3. Démarrez le mode SWE pour l’inspection.
    1. Réglez uniformément la zone d’intérêt sur une zone circulaire d’un diamètre de 2 mm et la zone d’intérêt à ~0,5-1 cm de profondeur de la surface de la peau.
    2. Utilisez l’instrument de diagnostic à ultrasons pour générer une impulsion de force de rayonnement acoustique afin de stimuler le tissu musculaire et d’obtenir une élastographie tissulaire.
    3. Attendez 2-3 s que l’image se stabilise, puis figez l’image. Activez la fonction Q-BOX de l’instrument pour mesurer le module de Young du muscle quadriceps.
    4. Attendez que le système calcule automatiquement les valeurs maximales, minimales et moyennes (unité : KPa) du module de retour sur investissement de Young. Sélectionnez trois retours sur investissement à la même profondeur pour trois mesures et prenez la valeur moyenne pour l’analyse statistique.
      REMARQUE : Le testeur doit être un échographiste expérimenté en détection par ultrasons. Lors de la mesure, la sonde à ultrasons doit être placée doucement sur la surface de la peau du quadriceps pour éviter les tensions musculaires locales. Les mesures doivent être prises lorsque l’animal est dans un état calme, sans lutte ni activité. Si l’animal est actif, attendez qu’il soit calme avant d’effectuer le test.

4. Mesurer la force de contraction du quadriceps fémoral

REMARQUE : Après la mesure de la force de contraction du quadriceps fémoral, les lapins ont été euthanasiés par embolie gazeuse sous anesthésie.

  1. Anesthésier les lapins avec du pentobarbital sodique à 3 % (30 mg/kg) par voie intraveineuse au bord de l’oreille. Pour confirmer que le niveau d’anesthésie approprié a été atteint, recherchez un réflexe cornéen considérablement affaibli ou absent et l’absence de douleur lors du clampage de la peau avec une pince hémostatique. Pendant l’anesthésie, ajoutez 2 à 3 gouttes de lubrifiant dans les yeux des lapins toutes les 15 minutes pour éviter que les yeux des lapins ne se dessèchent.
  2. Exposez les muscles quadriceps et fixez le transducteur de tension.
    1. Coupez la peau sous la rotule, le long de l’axe longitudinal du membre vers le haut jusqu’à la base de la cuisse, et continuez à couper la peau vers le haut de 3-4 cm. Décollez soigneusement la peau et le fascia et exposez le muscle. Coupez le ligament rotulien et séparez soigneusement le quadriceps de la jonction iliaque, en gardant le quadriceps en relation avec l’iliacium.
    2. Lister les sutures chirurgicales à la jonction tendineuse entre la rotule et le muscle quadriceps. Étirez le muscle sur toute sa longueur dans son état naturel, puis attachez-le au transducteur de tension. Gardez la ligne de ligature sur le muscle en ligne droite avec la ligne de ligature sur le capteur de force.
    3. Fixez le capteur de tension au support. Connectez la ligne d’acquisition de signal sur le transducteur de tension au processeur du système d’acquisition de biosignaux.
  3. Mesurez les performances contractiles du muscle quadriceps.
    1. Insérez les électrodes parallèlement à l’abdomen du quadriceps et évitez tout contact entre les électrodes.
    2. Appuyez sur le bouton de l’oscilloscope. Ajustez la position du capteur de force sur le support pour maintenir la ligne de base à zéro. Sélectionnez les paramètres de stimulation du stimulateur avec une largeur d’onde de 5 ms et un retard de 10 ms.
    3. Utilisez d’abord un seul stimulus et ajustez progressivement l’intensité du stimulus à partir de zéro avec un incrément de 0,1 V à chaque fois. Observez les changements dans la courbe de contraction musculaire et l’amplitude de contraction jusqu’à ce que l’amplitude de contraction unique maximale (Pt) du quadriceps soit déterminée. Enregistrez-le pour les statistiques suivantes.
    4. Utilisez un stimulus en grappe et utilisez l’amplitude du stimulus qui induit l’amplitude de contraction unique maximale comme base pour stimuler continuellement le muscle et augmenter progressivement la fréquence du stimulus. Observez les changements dans la courbe de contraction musculaire jusqu’à ce que l’amplitude de contraction maximale (Pt) du quadriceps soit déterminée. Enregistrez-le pour les statistiques suivantes.
      REMARQUE : 1) Après chaque contraction musculaire, le muscle doit être laissé 30 secondes pour se détendre avec la solution tampon musculaire goutte à goutte en continu sur le muscle. 2) Pendant l’opération, jugez de l’état de l’anesthésie en surveillant le réflexe des paupières, le rythme respiratoire, la relaxation musculaire et la réponse au pincement cutané du lapin.

5. Les performances mécaniques du tendon du quadriceps

  1. Prétraitement : Le jour du test, mesurez la longueur, la largeur et l’épaisseur du tendon du quadriceps avec un pied à coulisse et installez une pince antidérapante spéciale dans la machine d’essai de fatigue. Répétez le chargement et le déchargement 15x pour le prétraitement.
  2. Test de relaxation des contraintes : Utilisez le capteur allant de 0 N à 100 N, étirez-le à une vitesse de 5 mm/min jusqu’à ce qu’il atteigne la longueur requise, puis commencez à collecter des données. Réglez le temps d’acquisition des données informatiques à partir de t (0), en collectant des données toutes les 0,1 s, pendant 1 800 s. Après avoir atteint le temps défini, enregistrez les données et les courbes.
  3. Essai de traction : Utilisez le capteur allant de 0 N à 100 N et étirez-le à une vitesse de 5 mm/min jusqu’à la charge maximale jusqu’à ce que l’éprouvette soit séparée. Après l’essai, calculez le déplacement maximal, la charge ultime et la rigidité de l’éprouvette.

6. Pression de la surface de contact articulaire et pression par unité de surface du cartilage

  1. Fixez les échantillons de fémur et de tibia des deux côtés en position droite sur le dispositif et effectuez un test de précharge. Mesurez l’amplitude approximative de l’articulation du genou, coupez le papier sensible à la pression dans la même forme et scellez-le avec une pellicule plastique.
  2. Placez le papier sensible à la pression scellé entre les articulations du tibia et du fémur et effectuez un test de pression sur l’articulation du genou avec une pression de 5 mm/min et une pression maximale de 50 N. Maintenez la pression pendant 2 minutes jusqu’à ce qu’elle atteigne 50 N lorsque le papier sensible à la pression est de couleur stable.
  3. Après 2 min, retirez le papier sensible à la pression, fixez la surface colorée sur une feuille de papier au format A4 et acquérez des images avec l’échelle mise de côté.
  4. Téléchargez l’image sur l’ordinateur. Utilisez le logiciel référencé pour la mesure de surface et la mesure multi-segments pour les figures irrégulières. Mesurez la pression à l’intérieur et à l’extérieur des articulations du fémur et du tibia et notez les résultats.

7. Coloration Safranin O/Fast Green du cartilage de l’articulation du genou

  1. Après la fin de l’intervention d’acupotomie, prélevez les tissus du complexe cartilagineux-osseux sous-chondral et intégrez-les dans de la paraffine. Coupez les blocs de cire de tissu préparés et préparez les lames. Déparaffiniser les lames de tissu préparées avec la solution de déparaffinage ambiante (I) et la solution de déparaffinage ambiante (II) pendant 15 minutes chacune ; puis, trempez-les successivement dans du xylène et de l’éthanol anhydre (1 :1), de l’éthanol anhydre (I), de l’éthanol à 95 %, de l’éthanol à 85 % et de l’éthanol à 75 %, 2 à 5 min à chaque étape ; et enfin, les faire tremper dans de l’eau distillée pendant 15 min.
  2. Effectuez la coloration.
    1. Teindre les lames avec la solution Fast Green pendant 1 min. Au cours de ce processus, sortez les lames de la solution et observez-les au microscope jusqu’à ce que le tissu soit coloré en vert foncé.
    2. Séparation des couleurs : Rincez l’excès de solution Fast Green avec de l’eau ultra-pure. Faites tremper rapidement les lames dans une solution d’acide acétique à 1 % pendant 5 à 10 secondes.  Encore une fois, rincez la lame à l’eau ultra-pure.
    3. Colorer les lames dans une solution de safranine O pendant 10 à 15 minutes jusqu’à ce que le cartilage soit coloré en rouge.
  3. Déshydratez et clarifiez les tissus, scellez les lames de verre et observez-les au microscope.
    1. Faites tremper les lames dans de l’éthanol à 75 %, à 85 %, à 95 % d’éthanol et à 100 % d’éthanol pendant 3 à 5 secondes successivement.
    2. Tremper les lames dans la solution de déparaffinage environnemental (I) et la solution de déparaffinage environnemental (II) pendant 10 minutes successives. Sortez les lames et déposez le milieu résineux neutre sur le devant des lames, en évitant le tissu. Placez le bord du couvre-objet sur la lame, puis posez-le lentement pour couvrir le baume neutre. Retirez l’air et évitez les bulles d’air. Essuyez l’excès de xylène et le baume neutre et laissez-le reposer toute la nuit à température ambiante.
    3. Observez les lames au microscope et acquérez des images. Pour chaque groupe, sélectionnez six échantillons de cartilage de genou de lapin et sélectionnez au hasard quatre champs d’observation différents pour chaque échantillon à évaluer. Noter l’histologie du cartilage de chaque groupe selon la méthode Mankin (tableau 1).

8. Analyse statistique

  1. Exprimer les données sous forme de moyenne ±écart-type (figure-protocol-1 ± s).
  2. Effectuer une analyse de variance à un facteur (ANOVA) et le test de LSD pour déterminer la signification statistique des comparaisons de groupes multiples.
  3. Considérez les différences comme statistiquement significatives lorsque P < 0,05.

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Résultats

Résultats expérimentaux des propriétés mécaniques du quadriceps fémoral et du tendon
Pour évaluer l’effet de l’acupotomologie sur les propriétés mécaniques du quadriceps fémoral chez les lapins atteints de KOA, nous avons utilisé respectivement une imagerie par ultrasons élastiques à ondes de cisaillement en temps réel et un transducteur de tension musculaire. Par rapport au groupe témoin, le module de Young du quadriceps fémoral dans le groupe KOA a diminué (P < 0,05). Par rapport au grou...

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Discussion

Un modèle animal approprié est l’un des facteurs clés pour atteindre les objectifs expérimentaux et clarifier une question scientifique spécifique. Cette étude était basée sur les théories du « Zongjin contrôlant les os et lubrifiant les articulations » et du « déséquilibre mécanique » en acupotomologie, visant à expliquer la connotation scientifique derrière le traitement du KOA en « modulant les muscles et les tendons pour traiter les troubles osseux » dans la thérapie par acupotomie. En d’autres termes, l’acupotomie a...

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Déclarations de divulgation

Les auteurs n’ont aucun conflit d’intérêts à divulguer.

Remerciements

Ce travail a été soutenu par la Fondation nationale des sciences naturelles de Chine (n° 82074523,82104996).

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Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
AcupotomieBeijing Zhuoyue Huayou Medical Devices Co., Ltd.0,4 x 40 mm
Connect Cast Orthopedic Casting TapeSuzhou Connect Medical Technology Co., Ltd.KCP0615,0 cm x 360 cm
Ruban en mousse double faceDeli Group Co.,Ltd.NO.3041636 mm x 5 yards x 2,5 mm
Solution de déparaffinage environnementalWuhan Servicebio Technology Co., Ltd.G1128
Absolu d’éthanolBeijing Hengkangda Medicine Co., Ltd.
Solution verte rapideWuhan Servicebio Technology Co., Ltd.G1031
Fast grenn FCFSigma,America2353-45-9
Machine d’essai de fatigueBOSE, AmériqueBose Electro Force 3300
Enregistreur physiologique à quatre canauxChengdu Instrumeny FrctoryRM-6420
FPD-305EFuji, Japon
FPD-306EFuji, Japon
Solution d’hématoxylineWuhan Servicebio Technology Co., Ltd.G1005
Désinfectant à l’iodophore médicalShan Dong Lircon Medical Technology Co., Ltd.
Ruban médicalShandong Rongjian Sanitary Products Co., Ltd.2004021,5 x 500 cm
Transducteur de tension musculaireChengdu Instrumeny FrctoryJH-2204005, 50 g
PrescaleFuji, Japon
Instrument de diagnostic à ultrasons SWE en temps réelSuperSonic Imagine SA, FranceSuperSonic Imagine AixPlorer
Rhamsan gumWuhan Servicebio Technology Co., Ltd.
Safranine OSigma,America477-73-6
Safranine O solutionWuhan Servicebio Technology Co.,Ltd.G1015
Statistical Package for the Social Sciences (SPSS)IBM, Amérique
WG10004160

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