Cet article décrit comment bio-imprimer en 3D des hydrogels photoaccordables pour étudier le raidissement de la matrice extracellulaire et l’activation des fibroblastes.
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Article de méthode
Cet article décrit comment bio-imprimer en 3D des hydrogels photoaccordables pour étudier le raidissement de la matrice extracellulaire et l’activation des fibroblastes.
Les hydrogels photoaccordables peuvent se transformer spatialement et temporellement en réponse à l’exposition à la lumière. L’incorporation de ces types de biomatériaux dans des plateformes de culture cellulaire et le déclenchement dynamique de changements, tels que l’augmentation de la rigidité microenvironnementale, permettent aux chercheurs de modéliser les changements dans la matrice extracellulaire (MEC) qui se produisent au cours de la progression de la maladie fibrotique. Dans cet article, une méthode de bio-impression 3D d’un biomatériau hydrogel photoaccordable capable de deux réactions de polymérisation séquentielles dans un bain de support de gélatine est présentée. La technique de bio-impression FRESH (Freeform Reversible Embedding of Suspended Hydrogels) a été adaptée en ajustant le pH du bain de support pour faciliter une réaction d’addition de Michael. Tout d’abord, la bio-encre contenant du méthacrylate de poly(éthylène glycol)-alpha (PEGαMA) a réagi hors stœchiométrie avec un agent de réticulation dégradable par cellule pour former des hydrogels mous. Ces hydrogels mous ont ensuite été exposés à un photo-initateur et à la lumière pour induire l’homopolymérisation des groupes qui n’ont pas réagi et rigidifier l’hydrogel. Ce protocole couvre la synthèse d’hydrogel, la bio-impression 3D, le phototiffening et la caractérisation des paramètres pour évaluer l’activation des fibroblastes dans les structures 3D. La méthode présentée ici permet aux chercheurs de bio-imprimer en 3D une variété de matériaux qui subissent des réactions de polymérisation catalysées par le pH et pourraient être mis en œuvre pour concevoir divers modèles d’homéostasie, de maladie et de réparation des tissus.
La bio-impression 3D est une technologie transformatrice qui permet aux chercheurs de déposer avec précision des cellules et des biomatériaux dans des volumes 3D et de recréer la structure hiérarchique complexe des tissus biologiques. Au cours de la dernière décennie, les progrès de la bio-impression 3D ont permis de créer des tissus cardiaques humains battants1, des modèles fonctionnels des tissus rénaux2, des modèles d’échange gazeux dans les poumons3 et des modèles tumoraux pour la recherche sur le cancer4. L’invention des techniques de bio-impression 3D embarquée, telle....
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1. Synthèse et caractérisation de PEGαMA
REMARQUE : La synthèse du poly(éthylène glycol)-alpha méthacrylate (PEGαMA) a été adaptée de Hewawasam et al. et réalisée dans des conditions sans humidité9.
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Ce protocole décrit comment bio-imprimer en 3D des hydrogels photoaccordables dans un bain de support pour créer des constructions capables de raidissement dynamique et temporel pour étudier l’activation des fibroblastes dans des géométries qui imitent les tissus humains. Tout d’abord, le protocole expliquait comment synthétiser le PEGαMA, l’épine dorsale de ce système polymère photoaccordable. Les mesures de spectroscopie par résonance magnétique nucléaire (RMN) ont montré une fonctionnalisation réussie de PEGαMA à 96,5.......
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Les réactions de polymérisation en deux étapes en réponse à une exposition contrôlée à la lumière peuvent rigidifier les biomatériaux avec un contrôle spatial et temporel. Plusieurs études ont exploité cette technique pour évaluer les interactions cellule-matrice dans diverses plateformes 5,8,9,10,11,21,22,23.
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Les auteurs n’ont aucun conflit d’intérêts à divulguer. Des parties de ce manuscrit sont reproduites avec la permission d’IOP © Publishing https://doi.org/10.1088/1758-5090/aca8cf. 5 Tous droits réservés.
Les auteurs tiennent à remercier le Dr Adam Feinberg (Université Carnegie Mellon) et ceux qui ont organisé l’atelier 3D Bio-Printing Open-Source. Ces personnes ont permis d’apprendre les techniques de bio-impression FRESH et de construire la bio-imprimante 3D utilisée pour ces études. De plus, les auteurs tiennent à remercier Biorender.com, qui a été utilisé pour produire des figures dans ce manuscrit. Ce travail a été soutenu par de multiples groupes ou sources de financement, notamment la Rose Community Foundation (DDH et CMM), une bourse de recherche sur les maladies vasculaires pulmonaires du Colorado (DDH et CMM), la National Science Foundation sous le prix 19414....
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| Nom | Entreprise | Numéro de catalogue | Commentaires |
|---|---|---|---|
| Kit radiomètre/photomètre AccuMax | Spectronics Corporation | XPR-3000 | Pour mesurer l’intensité lumineuse, utilisé pour la photo-tiffation |
| de l’acide acétique ; | Fisher Scientific | BP2401-500 | Utilisé lors de la synthèse de PEGaMA |
| Acétone | Fisher Scientific | A184 | Utilisé avec les cryosections |
| ActinGreen 488 ReadyProbes | Fisher Scientific | R37110 | Utilisé pour la coloration de |
| la feuille d’aluminium | Reynolds | F28028 | |
| Tétrahydrofurane anhydre (THF) | Sigma-Aldrich | 401757-1L | Utilisé lors de la synthèse PEGaMA |
| Gaz comprimé d’argon | Airgas | AR R300 | Utilisé lors de la synthèse PEGaMA |
| 8 Arm Poly(ethylene glycol)-hydroxyle (PEG-OH) | JenKem Technology | 8ARM-PEG-10K | Utilisé lors de la synthèse PEGaMA |
| Filtre passe-bande 365 nm | Edmund Optics | 65-191 | Utilisé pour la photo-consolidation |
| l’albumine sérique bovine (BSA) | Fisher Scientific | BP9700-100 | Utilisé pendant le processus de coloration |
| Buchner Funnel | Quark Glass | QFN-8-14 | Utilisé pendant la synthèse de PEGaMA |
| Calcein AM | Invitrogen | 65-0853-39 | Utilisé pendant le processus de coloration |
| Celite 545 (Aide à la filtration) | EMD Millipore | CX0574-1 | Utilisé pendant la synthèse de PEGaMA |
| Lames de microscope chargées | Globe Scientific | 1358W | |
| Chloroform-d | Sigma-Aldrich | 151823-10X0.75ML | Utilisé pour caractériser PEGaMA |
| Click-iT Plus EdU Cell Prolifération Kit | Invitrogen | C10637 | Utilisé pour la coloration de |
| tubes coniques de 50 mL | CELLTREAT | 667050B | |
| Kit de sécurité cryogénique | Cole-Parmer | EW-25000-85 | |
| Cryostat | Leica | CM 1850-3-1 | |
| Tubulure de dialyse | Repligen | 132105 | |
| 4',6-Diamidino-2-Phylindole (DAPI) | Sigma-Aldrich | D9542-1MG | Utilisé pour la coloration de |
| l’éther diéthylique | Fisher Scientific | E1384 | Utilisé lors de la synthèse du PEGaMA |
| 1,4-Dithiothreitol (DTT) ; | Sigma-Aldrich | 10197777001 | Bioink, le |
| médium modifié de Dulbecco (DMEM) | Cytiva | SH30271. | |
| Papier filtre | Whatman | 1001-090 | Utilisé lors de la synthèse PEGaMA |
| Freezone 2.5L Système de lyophilisation | Labconco | LA-2.5LR | Lyophilizer |
| Fusion 360 | Autodesk | N/A | Téléchargement de logiciel |
| 2.5 mL Seringue étanche au gaz | Hamilton | 81420 | Utilisé pour la bio-impression |
| Calibre 15 1.5" IT Series Astuce | Jensen Global | JG15-1.5X | Utilisé pour la bio-impression |
| Calibre 30 0.5" Pointe de la série HP | Jensen Global | JG30-0.5HPX | Utilisé pour la bio-impression |
| chèvre Anti-souris Alexa Fluor 555 Anticorps | Fisher Scientific | A21422 | Utilisé pour la coloration |
| Glycine | Fisher Scientific | C2H5NO2 | Utilisé pendant le processus de coloration |
| Hémocytomètre | Fisher Scientific | 1461 | |
| Hoechst | Thermo Scientific | 62249 | Utilisé pendant le processus de coloration |
| fibroblastes adventiels de l’artère pulmonaire humaine (HPAAFs) | AcceGen | ABC-TC3773 ; | D’un patient de 2 ans |
| Acide chlorhydrique (HCl) | Fisher Scientific | A144-500 | Utilisé pour ajuster le pH des solutions |
| ImageJ | National Institutes of Health (NIH) | N/A | Téléchargement gratuit du logiciel |
| ImmEdge® ; Pen | Vector Laboratories | H-4000 | Utilisé pendant le processus de coloration |
| Incubateur | VWR | VWR51014991 | |
| LifeSupport Suspension de microparticules de gélatine (Suspension de gélatine) | Advanced Biomatrix | 5244-10GM | Utilisé pour la bio-impression |
| Microscope optique | Olympus | CKX53 | Microscope à lumière inversée |
| Lithium Phényl-2,4,6-Triméthylbenzoylphosphinate ( LAP) | Sigma-Aldrich | 900889-5G | Photoinitiateur utilisé pour la photo-tiffation |
| de l’azote liquide | N/A | N/A | |
| LulzBot Mini 2 ; | LulzBot | N/A | Bio-imprimante adaptée |
| Méthacryloxyéthyle Thiocarbamoyl Rhodamine B ; | Polysciences inc. | 669775-30-8 | |
| 2-Methylbutane | Sigma-Aldrich | M32631-4L | |
| Microman Pistons capillaires CP1000 | VWR | 76178-166 | Pointes de pipette à déplacement positif |
| MMP2 Réticulant dégradable (KCGGPQGIWGQGCK) | GL Biochem | N/A | Bioink component |
| Souris Anti-Humain &alpha ;SMA Anticorps monoclonal | Fisher Scientific | MA5-11547 | Utilisé pour la coloration |
| OmniCure Série 2000 | ; Source | Lumen Dynamics S2000-XLA | utilisée pour le photo-raidissement |
| du paraformaldéhyde (PFA) ; | Microscopie électronique Sciences | 15710 | Utilisé pour fixer des échantillons |
| PH-mètre | Mettler Toledo ; | FP20 ; | |
| Bandelettes de pH | Cytiva | 10362010 | |
| solution saline tamponnée au phosphate (PBS) | Hyclone Laboratories, Inc. | Cytiva SH30256. | |
| FS Jeu de pipettes | Fisher Scientific | 14-388-100 | |
| 10 & micro ; L Pointes de pipette | USA Scientific | 1120-3710 | |
| 20 µ ; L Pointes de pipette | USA Scientific | 1183-1510 | |
| 200 µ ; L Pointes de pipette | USA Scientific | 1111-0700 | |
| 1000 & micro ; L pointes de pipette | USA Scientific | 1111-2721 | |
| Méthacrylate de poly(éthylène glycol)-alpha (PEG&alpha ; MA) | N/A | N/A | Reportez-vous au manuscrit pour les étapes de synthèse |
| Poly(Oxyde d’éthylène) (PEO) | Sigma-Aldrich | 372773-250G | Composant de bioencre |
| Pipette à déplacement positif | Fisher Scientific | FD10004G | 100-1000 & micro ; L |
| Hydroxyde de potassium (KOH) | Sigma-Aldrich | 221473-500G | Utilisé pour ajuster le pH des solutions |
| ProLong Gold Antifade Reagent | Invitrogen | P36930 | Utilisé pendant le processus de coloration |
| Pronterface | All3DP | N/A | Téléchargement |
| du logiciel Propidium Iodide | Sigma-Aldrich | P4864-10ML | Utilisé pour la coloration |
| du peptide RGD (CGRGDS) | GL Biochem | N/A | Bioink component |
| Rocker | VWR | 10127-876 | |
| Évaporateur rotatif ; | Thomas Scientific | 11100V2022 | Utilisé lors de la synthèse de PEGaMA |
| Agrafes | à élastique 808659 | ||
| Flacon Schlenk ; | Kemtech America | F902450 | Utilisé lors de la synthèse de PEGaMA |
| Slic3r | Slic3r N | /A | Téléchargement du logiciel |
| Smooth Muscle Cell Growth Medium-2 (SmGM-2) BulletKit | Lonza | CC-3182 | Le kit contient les composants CC-3181 et CC-4149 |
| Hydrure de sodium ; | Sigma-Aldrich | 223441-50G | Utilisé lors de la synthèse de PEGaMA |
| Centrifugeuse Sorvall ST 40R Fisher | Scientific | 75-004-525 | |
| Barre d’agitation | VWR | 58948-091 | |
| Filtre à seringue | VWR | 28145-483 | Utilisé pour les solutions de filtration stériles |
| T-75 Fiole traitée pour culture tissulaire | VWR | 82050-856 | Utilisé pour les travaux |
| Tissue-Tek Cyromold | Sakura | 4557 | |
| Tissue-Tek O.C.T Compound (OCT) | Sakura | 4583 | |
| Tris(2-Carboxyethyl) Phosphine (TCEP) | Sigma-Aldrich | C4706-2G | |
| Triton X-100 | Fisher Bioreagents | C34H622O11 | Utilisé pendant le processus de coloration |
| Trypan Blue | Sigma-Aldrich | T8154-20ML | Utilisé pour la culture cellulaire travail |
| 0,05 % Trypsine-EDTA | Gibco | 25-300-062 | Utilisé pour les travaux de culture cellulaire |
| Tween 20 | Fisher Bioreagents | C58H114O26 | Utilisé pendant le processus de coloration |
| Microscope vertical | Olympus | BX63F | Capacités du microscope fluorescent |
| Bain d’eau | PolyScience | WBE20A11B | |
| Plaques de culture tissulaire à 24 puits | Corning | Référence 3527 |
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