$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
La manipulation sélective de la colonne vertébrale peut favoriser la prise de poids chez les rats nourrissons atteints de paralysie cérébrale.
Au cours du traitement, le poids corporel a été mesuré aux jours 3, 14, 28, 42 et 61 postnatals (Figure 4, Tableau 3). Le troisième jour après la naissance, le poids corporel du groupe Sham était de 5,53 ± 0,035 g, et le poids corporel du groupe témoin était de 3,15 ± 0,43 g. Le poids corporel du groupe de traitement était de 4,42 ± 0,13 g, et il n’était pas significativement différent de celui des groupes placebo et témoin avant la modélisation.
Le 14e jour postnatal, le poids corporel du groupe Sham était de 35,97 ± 1,019 g, le poids corporel du groupe témoin était de 28,00 ± 0,7403 g et le poids corporel du groupe de traitement était de 33,78 ± 3,705 g. Il n’y avait pas de différence significative dans le poids corporel entre les groupes de traitement et de placebo. Le poids du groupe de traitement par rapport au groupe témoin était statistiquement significatif (P < 0,01).
Le 28ejour après la naissance, le poids corporel du groupe Sham était de 104,9 ± 3,534 g, le poids corporel du groupe témoin était de 80,35 ± 6,767 g et le poids corporel du groupe de traitement était de 96,73 ± 7,638 g. Le groupe de traitement a été comparé au groupe témoin, et il était statistiquement significatif (P < 0,01).
Au 42e jour postnatal, le poids corporel du groupe Sham était de 194,1 ± 4,333 g, le poids corporel du groupe témoin était de 138,0 ± 6,029 g et le poids corporel du groupe de traitement était de 173,9 ± 5,433 g. Il y avait une différence statistiquement significative de poids corporel entre les groupes de traitement et de contrôle (P < 0,0001).
Au 61e jour postnatal, le poids corporel du groupe Sham était de 321,5 ± 5,675 g, le poids corporel du groupe témoin était de 230,3 ± 5,198 g et le poids corporel du groupe de traitement était de 268,9 ± 15,22 g. P < 0,0001 a été considéré comme statistiquement significatif. Il y avait une différence statistiquement significative de poids corporel entre les groupes de traitement et de contrôle à P < 0,0001.
La manipulation sélective de la colonne vertébrale peut améliorer la fonction d’équilibre moteur efficace de la paralysie cérébrale.
Le 61ème jour après la naissance, après la fin du traitement, nous avons effectué le test de fatigue rotarod. Le premier temps de chute de chaque groupe était de 296,1 ± 1,65 s dans le groupe Smock, de 102,7 ± 7,73 s dans le groupe témoin et de 220,1 ± 8,04 s dans le groupe de traitement. Il y avait une différence significative entre le groupe placebo et le groupe témoin (P < 0,0001). La différence entre le groupe de traitement et le groupe témoin était statistiquement significative (P < 0,0001), et la différence entre le groupe de traitement et le groupe de placebo était statistiquement significative (P < 0,0001) (figure 5, tableau 4)
Le 61ejour après la naissance, après la fin du traitement, les scores de faute de pied des groupes Sham et Contrôle étaient respectivement de 5,53 ± 0,03 et de 3,15 ± 0,43. Le score du groupe Traitement, 4,42 ± 0,13, était significativement inférieur à celui du groupe Sham (P < 0,0001). Le score du groupe de traitement était significativement plus élevé que celui du groupe témoin (P < 0,0001). Comparativement au groupe de traitement et au groupe placebo, la différence était statistiquement significative (P < 0,0001) (figure 6, tableau 5).
La manipulation sélective de la colonne vertébrale peut réguler le niveau de sécrétion d’hormone de croissance dans la paralysie cérébrale.
Des échantillons de tissus ont été prélevés le 32e jour postnatal, et l’hypothalamus de rats atteints de paralysie cérébrale a été sélectionné pour le Western blot, et les anticorps primaires et secondaires correspondants ont été sélectionnés : les anticorps utilisés étaient les anticorps anti-hormone de croissance, les anticorps anti-récepteur de l’hormone de croissance, l’anticorps anti-bêta-actine de référence interne pour les anticorps primaires et l’anticorps anti-RabbitIgG H&L (HRP) (1/10000) de chèvre pour les anticorps secondaires. La manipulation sélective de la colonne vertébrale peut favoriser la croissance et le développement des rats nourrissons atteints de paralysie cérébrale en régulant l’expression de l’hormone de croissance (GH) et du récepteur de l’hormone de croissance (GHR) (Figure 7, Tableau 6)26.
Favoriser la croissance et le développement des rats nourrissons atteints de paralysie cérébrale peut améliorer le contenu de la sérotonine et de la noradrénaline dans l’hippocampe, améliorant ainsi la capacité d’apprentissage et la mémoire27.
La manipulation sélective de la colonne vertébrale peut améliorer efficacement la température locale des points d’acupuncture (Figure 8, Tableau 7).
L’imagerie thermique infrarouge a été utilisée pour détecter la température de la zone d’acupuncture locale avant et après le traitement dans le groupe de traitement. Il a été constaté que la température était maintenue à 32,92 ± 0,55 °C avant le traitement, à 36,32 ± 0,15 °C immédiatement après le traitement et à 35,32 ± 0,28 °C 2 min après le traitement. La température était de 34,61 ± 0,17 °C 5 min après la fin du traitement et de 34,28 ± 0,60 °C 10 min après la fin du traitement. Les différences étaient statistiquement significatives par rapport à la température immédiate avant la fin du traitement et à la zone d’acupoint local 2 min, 5 min et 10 min après le traitement (P < 0,05). Après une manipulation sélective de la colonne vertébrale, la température de la zone d’acupuncture locale dans le groupe de traitement a été augmentée et maintenue dans une certaine mesure.

Figure 1 : Réflexe de redressement. (A) Représentation schématique de l’expérience du réflexe de redressement. Le test du réflexe de redressement a été effectué le4ème jour après la naissance (le deuxième jour après le modélisme) pour vérifier le succès du modélisme. (B) Graphique à barres de l’essai de réflexe de redressement dans chaque groupe (n = 6, moyenne ± ET). Remarque : ns indique P > 0,05 et aucune différence statistique. indique un P < 0,0001, indiquant une différence très significative. Veuillez cliquer ici pour voir une version agrandie de cette figure.

Figure 2 : Manipulation sélective de la colonne vertébrale. (A) Manipulation des petits avant la manipulation. Les bébés rats ont été placés dans la paume de l’opérateur et gardés silencieux, ce qui était l’environnement du camp. (B) Représentation de la manipulation sélective de la colonne vertébrale. Appuyez et pétrissez les muscles des deux côtés de la colonne vertébrale. Veuillez cliquer ici pour voir une version agrandie de cette figure.

Figure 3 : Carte des points d’acupuncture sur le dos d’un rat humain par rapport à un rat SD. (A) Humain et (B) rat SD. C7 : septième vertèbre cervicale ; GV14 : Dazhui (GV14), localisation : entre la septième vertèbre cervicale et la première vertèbre thoracique, ligne médiane dorsale ; T3 : troisième vertèbre thoracique ; BL13 : Feishu (BL13), localisation : entre les deux côtes au-dessous de la troisième vertèbre thoracique ; T5 : cinquième vertèbre thoracique ; BL15 : pointe Xinshu, située entre les deux côtés de la côte inférieure de la cinquième vertèbre thoracique ; T7 : septième vertèbre thoracique ; BL17 : pointe Geshu, localisation : côtes inférieures et inférieures de la septième vertèbre thoracique ; BL18 : pointe de Ganshu, localisation : côtes inférieures et inférieures de la septième vertèbre thoracique ; T11 : onzième vertèbre thoracique ; GV6 : pointe de Jizhong, située entre le onzième et le douzième apophyse épineuse de la vertèbre thoracique ; BL20 : pointe Pishu, située entre les deux côtes au-dessous de la douzième vertèbre thoracique ; L2 : deuxième colonne lombaire ; GV4 : Mingmen (GV4), localisation : la ligne médiane dorsale, la dépression sous le deuxième apophyse épineuse lombaire ; BL23 : Point de Shenshu, situé de part et d’autre de la deuxième colonne lombaire. GV20 : Baihui (GV20), localisation : os pariétal médian ; GV16, pointe Fengfu, localisation : dépression dorsale de l’articulation occipito-atlantoaxiale derrière la crête occipitale. L’emplacement des points d’acupuncture dans le corps humain est très cohérent avec l’emplacement des points d’acupuncture chez les animaux à partir de la position anatomique. Le point de réponse anormale était proche du point de projection de la surface corporelle innervée. Veuillez cliquer ici pour voir une version agrandie de cette figure.

Figure 4 : Diagramme à barres de la mesure du poids dans chaque groupe (n = 6, moyenne ± écart-type). Remarque : ns P >0,05, aucune différence statistique ; **P < 0,01, ***P < 0,001, ****P < 0,0001, la différence était statistiquement significative. Veuillez cliquer ici pour voir une version agrandie de cette figure.

Figure 5 : Graphique à barres du temps de la première chute de l’essai Roat-rod dans chaque groupe (n = 6, moyenne ± écart-type). Remarque : ****P < 0,0001, la différence était statistiquement significative. Veuillez cliquer ici pour voir une version agrandie de cette figure.

Figure 6 : Diagramme à barres des scores de faute de pied dans chaque groupe (n = 6, moyenne ± écart-type). Remarque : ****P < 0,0001, la différence était statistiquement significative. Veuillez cliquer ici pour voir une version agrandie de cette figure.

Figure 7 : Bandes de Western blot de la GH et du récepteur de la GH. Le Western blot a été utilisé pour détecter la sécrétion d’hormone de croissance au niveau de la biologie moléculaire dans chaque groupe, et l’effet de la manipulation sélective de la colonne vertébrale sur l’hormone de croissance a été observé. Veuillez cliquer ici pour voir une version agrandie de cette figure.

Figure 8 : Surveillance de la température avant et après le traitement. (Panneau supérieur) Images thermiques prises par une caméra thermique infrarouge. La température (°C) de la zone d’acupuncture locale a été enregistrée par une caméra thermique infrarouge avant et après le traitement au tuina. (A) Avant le traitement au tuina. (B) Température immédiatement à la fin du traitement. (C) Température du point d’acupuncture local 2 min après le traitement. (D) Température locale du point d’acupuncture 5 min après la fin du traitement. (E) température locale du point d’acupuncture 10 min après le traitement. (Panneau inférieur) Diagramme à barres de la surveillance de la température avant et après le traitement (n = 3, moyenne ± écart-type). *P < 0,05, P < 0,01, * * * * *P < 0,001, * * * P < 0,0001, la différence est statistiquement significative. Veuillez cliquer ici pour voir une version agrandie de cette figure.
| Groupe | Nombre de cas (n) | Réflexe(s) de redressement(s) |
| Feinte | 6 | 0,77 ± 0,10 |
| Contrôle | 6 | 19.00 ± 2.04* |
| Traitement | 6 | 19.77 ± 0.55# |
Tableau 1 : Statistiques temporelles du réflexe de redressement chez les rats nourrissons atteints de paralysie cérébrale (moyenne ± ET ; n = 6). Les petits de chaque groupe ont été soumis au test du réflexe de redressement le 4ejour après la naissance (le 2ejour après le modélisme) pour vérifier si le modèle était réussi. * Par rapport au groupe Sham, P < 0,0001 ; # par rapport au groupe témoin, P < 0,0001.
| Score | Norme d’évaluation |
| 1 | Lorsque le jeune rat est placé sur l’échelle horizontale, le pied glisse lorsqu’il porte du poids, ce qui affecte la marche |
| 2 | Lorsque le jeune rat est placé sur l’échelle, le pied glisse lorsqu’il porte du poids, mais n’affecte pas la marche |
| 3 | Lorsque le jeune rat est placé sur l’échelle horizontale, le rat déplace rapidement le pied vers la prochaine marche de l’échelle en portant le poids |
| 4 | Lorsque le jeune rat est placé sur l’échelle horizontale, le rat place partiellement le pied et se déplace sur l’échelle en portant du poids |
| 5 | Lorsque le jeune rat est placé sur l’échelle horizontale, le rat met son pied sur une marche et se déplace rapidement vers une autre marche |
| 6 | Lorsque le jeune rat est placé sur l’échelle horizontale, le rat place ses coussinets correctement et supporte entièrement le poids du corps |
Tableau 2 : Tableau standard des résultats du test de faute de pied
| Heure (jour) | Nombre de cas (n) | Groupe |
| Feinte | Contrôle | Traitement |
| P3 | 6 | 8,52 ± 0,27 | 8,60 ± 0,08 | 8,45 ± 0,28D |
| P14 | 6 | 35,97 ± 1,01 | 28,00 ± 0,74* | 33.78 ± 3.70Ñ |
| P28 | 6 | 104,9 ± 3,53 | 80,35 ± 6,76* | 96.73 ± 7.63Ñ |
| P42 | 6 | 194,1 ± 4,33 | 138,0 ± 6,02* | 173,9 ± 5,43#D |
| P61 | 6 | 321,5 ± 5,67 | 230,3 ± 5,19* | 268,9 ± 15,22#D |
Tableau 3 : Résultats de l’analyse de poids de chaque groupe (moyenne ± écart-type) (g). Remarque : Ñ Par rapport au groupe témoin, P < 0,01 ; ° Par rapport au groupe Sham, P < 0,01 ; à Comparé au groupe témoin, P < 0,001 ; * Par rapport au groupe Sham, P < 0,0001 ; # Par rapport au groupe témoin, P < 0,0001 ; D Par rapport au groupe fictif, P < 0,0001.
| Groupe | Nombre de cas (n) | Roat-rod/temps/s |
| Feinte | 6 | 296,1 ± 1,65 |
| Contrôle | 6 | 102,7 ± 7,73* |
| Traitement | 6 | 220,1 ± 8,04#D |
Tableau 4 : Test Rotarod chez les nourrissons de rats de chaque groupe (moyenne ± écart-type) (s). Remarque : * Par rapport au groupe fictif, P < 0,0001 ; # Par rapport au groupe témoin, P < 0,0001 ; D Par rapport au groupe fictif, P < 0,0001.
| Groupe | Nombre de cas (n) | Score de faute de pied |
| Feinte | 6 | 5,53 ± 0,03 |
| Contrôle | 6 | 3,15 ± 0,43* |
| Traitement | 6 | 4,42 ± 0,13#D |
Tableau 5 : Scores de fautes de pied de chaque groupe (moyenne ± écart-type). Remarque : * Par rapport au groupe fictif, P < 0,0001 ; # Par rapport au groupe témoin, P < 0,0001 ; D Par rapport au groupe fictif, P < 0,0001.
| Groupe | GH | GHR |
| Feinte | 2,325 ± 0,830 | 1,469 ± 0,265 |
| Contrôle | 1.563 ± 0.070# | 1.563 ± 0.070Ñ |
| Traitement | 2,471 ± 0,956* | 2.471 ± 0.956& |
Tableau 6 : Données sur la valeur de la bande grise du transfert Western de l’hormone de croissance et du récepteur de l’hormone de croissance (n = 10). GH :* La comparaison par paires entre le groupe de traitement et le groupe témoin (P = 0,020 < 0,05) a montré une différence statistiquement significative ; # La comparaison par paires entre le groupe Sham et le groupe témoin (P = 0,022 < 0,05) a montré une différence significative ; La comparaison par paires entre le groupe de traitement et le groupe placebo n’a montré aucune signification statistique (P = 0,076 > 0,05) ; La comparaison par paires entre le groupe de traitement et le groupe témoin (P = 0,024 < 0,05) a montré une différence significative ; Ñ La comparaison par paires entre le groupe Sham et le groupe Modèle (P = 0,021 < 0,05) a montré une différence statistiquement significative ; La comparaison par paires entre le groupe de traitement et le groupe placebo n’a montré aucune signification statistique (P = 0,085 > 0,05).
| Durée du traitement | Nombre de cas (n) | Température |
| Avant le traitement | 3 | 32.92 ± 0.55 |
| Immédiatement | 3 | 36,32 ± 0,15* |
| Après 2 min | 3 | 35.32 ± 0.28# |
| Après 5 min | 3 | 34.61 ± 0.17Ñ |
| Après 10 min | 3 | 34.28 ± 0.60Dà |
Tableau 7 : Résultats de la surveillance de la température avant et après traitement (moyenne ± écart-type) (°C). Remarque : * Par rapport à ceux avant le traitement, P < 0,0001 ; # Par rapport à celui d’avant le traitement, P < 0,001 ; D Par rapport à 0 minute après le traitement, P <0,001 ; Ñ Par rapport à avant le traitement, P < 0,01 ; a Par rapport au prétraitement, le P < de 0,05.