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Article de méthode

Laryngoscopie murine mini-invasive pour l’imagerie en gros plan du mouvement du larynx pendant la respiration et la déglutition

1.9K vues

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DOI :

10.3791/66089

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1 décembre 2023

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Dans cet article

Résumé

Ce protocole décrit une approche de laryngoscopie transorale en série pour les souris et les rats qui permet une imagerie vidéo en gros plan et sans obstruction du larynx pendant la respiration et la déglutition à l’aide d’un régime anesthésique optimisé et de techniques de manipulation endoscopique finement ajustées.

Résumé

Le larynx est un organe essentiel chez les mammifères avec trois fonctions principales : respirer, avaler et vocaliser. Un large éventail de troubles sont connus pour altérer la fonction laryngée, ce qui entraîne des difficultés respiratoires (dyspnée), des troubles de la déglutition (dysphagie) et/ou des troubles de la voix (dysphonie). La dysphagie, en particulier, peut entraîner une pneumonie par aspiration et la morbidité associée, des hospitalisations récurrentes et une mortalité précoce. Malgré ces graves conséquences, les traitements existants pour la dysfonction laryngée visent en grande partie des interventions chirurgicales et comportementales qui, malheureusement, ne rétablissent généralement pas la fonction laryngée normale, soulignant ainsi le besoin urgent de solutions innovantes.

Pour combler cette lacune, nous avons développé une approche endoscopique expérimentale pour étudier la dysfonction laryngée chez des modèles murins (c’est-à-dire souris et rats). Cependant, l’endoscopie chez les rongeurs est assez difficile en raison de leur petite taille par rapport à la technologie actuelle des endoscopes, des différences anatomiques dans les voies respiratoires supérieures et de la nécessité pour l’anesthésie d’accéder de manière optimale au larynx. Ici, nous décrivons une nouvelle approche de laryngoscopie transorale qui permet une imagerie vidéo en gros plan et sans obstruction du mouvement du larynx chez les souris et les rats. Les étapes critiques du protocole comprennent une prise en charge précise de l’anesthésie (pour éviter un surdosage qui abolit la déglutition et/ou risque de mortalité liée à la détresse respiratoire) et le contrôle de l’endoscope par un micromanipulateur (pour un enregistrement vidéo stable du mouvement du larynx par un seul chercheur pour une quantification ultérieure).

Il est important de noter que le protocole peut être réalisé au fil du temps chez les mêmes animaux pour étudier l’impact de diverses conditions pathologiques spécifiquement sur la fonction laryngée. Un nouvel avantage de ce protocole est la possibilité de visualiser la protection des voies respiratoires pendant la déglutition, ce qui n’est pas possible chez l’homme en raison de l’inversion épiglottique sur l’entrée laryngée qui obstrue la glotte. Les rongeurs offrent donc une occasion unique d’étudier spécifiquement les mécanismes de la protection des voies respiratoires laryngées normales par rapport à la protection pathologique des voies respiratoires dans le but ultime de découvrir des traitements permettant de restaurer efficacement la fonction laryngée normale.

Introduction

Le larynx est un organe cartilagineux situé à l’intersection des voies respiratoires et digestives de la gorge, où il fonctionne comme un mécanisme de soupape pour contrôler avec précision le flux et la direction de l’air (c’est-à-dire pendant la respiration et la vocalisation) par rapport aux aliments et aux liquides (c’est-à-dire pendant la déglutition). On sait qu’un large éventail de troubles affectent le larynx, notamment congénitaux (p. ex., laryngomalacie, sténose sous-glottique), néoplasiques (p. ex., papillomatose laryngée, carcinome épidermoïde), neurologiques (p. ex., paralysie laryngée idiopathique, accident vasculaire cér....

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Protocole

Le protocole de laryngoscopie murine suit un protocole approuvé par l’Institutional Animal Care and Use Committee (IACUC) et les directives des National Institutes of Health (NIH). Il a été conçu pour être utilisé avec plus de 100 souris C57BL/6J adultes et plus de 50 rats Sprague Dawley adultes, de sexes à peu près égaux et âgés de 6 semaines à 12 mois pour les deux espèces. L’élaboration d’un protocole supplémentaire est nécessaire pour s’adapter aux rongeurs plus jeunes ou plus petits. Les animaux ont été logés en groupe (jusqu’à quatre souris ou deux rats par cage, en fonction du sexe et de la portée). Les conditions standard du v....

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Résultats

L’utilisation réussie de ce protocole de laryngoscopie murine permet de visualiser en gros plan le larynx pendant la respiration spontanée et d’évoquer la déglutition dans des conditions saines et pathologiques, comme le montre la figure 6. De plus, ce protocole peut être répété plusieurs fois chez les mêmes rongeurs pour permettre l’investigation de la fonction ou du dysfonctionnement du larynx au fil du temps. Comme le montre la figure.......

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Discussion

Nous avons réussi à développer un protocole de laryngoscopie reproductible spécifique à la souris qui permet de visualiser en gros plan le mouvement du larynx pendant la respiration et la déglutition. Il est important de noter que le protocole peut être réalisé au fil du temps chez les mêmes animaux pour étudier l’impact de diverses conditions pathologiques spécifiquement sur la fonction laryngée. Ce protocole a été développé au cours de la dernière décennie et a fait l’objet de modifica.......

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Déclarations de divulgation

Les auteurs n’ont aucun conflit d’intérêts à déclarer.

Remerciements

Ce travail a été financé en partie par deux subventions des NIH : 1) une subvention R01 (HL153612) multi-PI (TL et NN) du National Heart, Lung, and Blood Institute (NHLBI), et 2) une subvention R03 (TL, DC0110895) du National Institute on Deafness and Other Communication Disorders (NIDCD). Le développement de notre logiciel personnalisé de suivi du mouvement du larynx a été partiellement financé par une subvention de la Fondation Coulter (TL & Filiz Bunyak). Nous remercions Kate Osman, Chloe Baker, Kennedy Hoelscher et Zola Stephenson d’avoir fourni d’excellents soins à nos rongeurs de laboratoire. Nous remercions également Roderic Sc....

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Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
AtipamezoleZoetisAntisedan ; 5 mg/mLParsippany-Troy Hills, NJ
BioamplificateurWarner Instrument Corp.DP-304Hamden, CT
Électrode à aiguille EMG concentriqueChalgren Enterprises, Inc.231-025-24TP ; 25 mm x 0,3 mm/30 GGilroy, CA
Applicateur à pointe de coton (effilé)Produits médicaux puritainsREF 25-826 5WGuilford, ME
Système d’acquisition de donnéesADInstrumentsPowerLab 30/8Colorado Springs, CO
Système de contrôle de température DC - pour plateforme d’endoscopieFHC, Inc.40-90-8DBowdoin, ME
Logiciels d’enregistrement en électrophysiologieADInstrumentsLabChart 8 avec module de capture vidéoColorado Springs, CO
Moniteur endoscopeKarl Storz Endoscopy-AmericaMoniteur Storz Tele Pack XEl Segundo, CA
GlycopyrrolatePiramal Soins IntensifsNDC 66794-204-02 ; 0,2 mg/mLBethlehem, PA
Électrode de masse & nbsp ;Consolidated Neuro Supply, Inc.Acier inoxydable de calibre 27, #S43-438Loveland, OH
Chambre d’induction à l’isoflurane & nbsp ;Braintree Scientific, Inc.Boîte d’anesthésiation au gaz - RougeBraintree, MA
Chlorhydrate de kétamineCovetrus Amérique du NordNDC 11695-0703-1, 100 mg/mLDublin, OH
Spatule métallique pour découpler l’épiglotte et le vélumOutils scientifiques finementItem n° 10091-12 ;   ;Foster City, CA
Brosse électronique pour éliminer les aliments et les sécrétions de la cavité buccaleSafeco Dental SupplyREF 285-0023, 1,5 mmBuffalo Grove, IL
Bouillotte de la taille d’une souris pour plateforme d’endoscopieFHC, Inc.40-90-2-07 & ndash ; Coussin chauffant 5 x 12,5 cmBowdoin, ME
Pommade ophtalmique (stérile)Allergan, Inc.Rafraîchir Lacri-lubrifiantIrvine, CA
OtoscopeKarl StorzREF 1232AAEl Segundo, CA
Capteur pneumographiqueBIOPAC Systems, Inc.RX110Goleta, CA
Oxymétrie de pouls - Vetcorder Pro Vétérinaire MonitorSentier HC, LLCPartie n° 710-1750Waukesha, WI
Coussin chauffant de la taille d’un rat pour plateforme d’endoscopieFHC, Inc.40-90-2 & ndash ; Coussin chauffant 12,5x25cmBowdoin, ME
Aiguilles stériles pour injections de médicamentsBecton, Dickinson and CompanyREF 305110, 26 G x 3/8 pouce, PrecisionGlideFranklin Lakes, NJ
Seringues stériles pour injections de médicamentsBecton, Dickinson and CompanyREF 309628 ; 1 mL, pointe Luer-LokFranklin Lakes, NJ
Drape chirurgical pour couvrir la cage d’induction dans un environnement sombreCovidien LPTissu de drapé chirurgical d’argyle, simple coucheMinneapolis, MN
Ruban chirurgical pour fixer le capteur pneumographique à l’abdomen3M Santé#1527-0, 1/2 pouceSt. Paul, MN
Couverture transparente pour la thermorégulationLa Société Glad Products & nbsp ;Press' n film plastique pour scellementOakland, CA
Logiciels de montage vidéoPinnacle Systems, Inc.Pinnacle Studio, v24Mountain View, CA
Bouillotte à circulation d’eau - pour la station d’induction/récupération anesthésiqueSystèmes médicaux habilesPompe à chaleur HTP-1500Loudon, TN
XylazineVet OneNDC 13985-701-10 ; Anased, 100 mg/mLBoise, ID

Références

  1. Brunner, E., Friedrich, G., Kiesler, K., Chibidziura-Priesching, J., Gugatschka, M. Subjective breathing impairment in unilateral vocal fold paralysis. Folia Phoniatr Logop. 63 (3), 142-146 (2011).
  2. Chandrasekhar, S. S., et al. Clinical practic....

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Réimpressions et autorisations

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