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Article de méthode

Un appareil d’exercice de poisson-zèbre induit par la natation pour des approches d’entraînement polyvalentes

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DOI :

10.3791/66382

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18 octobre 2024

 ,  ,  , 
1Exercise Genetics and Metabolism Laboratory, Molecular Biology Program, Department of Biophysics, Federal University of São Paulo, 2Exercise Genetics and Metabolism Laboratory, Nephrology Program, Department of Biophysics, University Federal of Sao Paulo

Dans cet article

Résumé

L’appareil d’exercice conçu pour les poissons moins fortunés facilite la mise en œuvre de divers protocoles d’exercice d’intensités variables en manipulant la vitesse d’écoulement de l’eau, réalisable grâce à la rhéotaxie.

Résumé

Pour étudier de manière exhaustive les effets de l’exercice sur la santé et la maladie, les modèles animaux jouent un rôle central. Le poisson-zèbre, un organisme modèle de vertébré largement utilisé, offre une plate-forme unique pour de telles études. Cette étude a introduit le développement d’un appareil rentable adapté aux études d’exercice du poisson-zèbre en utilisant des matériaux facilement disponibles. Le dispositif est fondé sur les principes d’un tunnel de nage et englobe un réseau de tuyaux et de vannes reliés à une pompe submersible. Le débit d’eau est méticuleusement surveillé par un capteur et régulé par des vannes. Pour évaluer l’efficacité de l’appareil, deux protocoles d’entraînement ont été mis en place : l’entraînement continu d’intensité modérée (MICT) et l’entraînement par intervalles à haute intensité (HIIT). Les poissons ont été entraînés collectivement et leurs performances en natation ont été évaluées par un test d’endurance. Les deux protocoles d’entraînement ont entraîné une amélioration des performances de natation après 30 jours d’entraînement et ont induit des modifications de la réponse moléculaire à l’exercice par rapport à un groupe témoin sédentaire. Notamment, le HIIT a démontré une efficacité supérieure à celle du MICT. Le système d’entraînement du poisson-zèbre s’est avéré être un outil précieux pour les recherches en physiologie de l’exercice et renforce l’utilité du modèle du poisson-zèbre dans ce domaine.

Introduction

L’exercice physique englobe tout mouvement corporel effectué par les muscles squelettiques qui entraîne une augmentation de la dépense énergétique, l’exercice étant un sous-ensemble structuré et répétitif des activités physiques1. L’exercice, une activité multifactorielle et rentable impliquant l’ensemble du corps, apporte de nombreux avantages pour la santé, tels que la prévention du syndrome métabolique et de la sarcopénie2. Par conséquent, le domaine de la physiologie de l’exercice présente un intérêt considérable car il cherche à élucider comment le corps s’adapte au stress aigu de l’exercice, au stress chronique de l’entraînement physique et à l’impact global de l’exercice sur la santé1.

La réalisation d’études sur la physiologie de l’exercice chez l’homme peut être à la fois coûteuse et chronophage en raison des défis liés à la conception expérimentale et au suivi desparticipants3. Par conséquent, l’utilisation de modèles animaux en laboratoire a été fortement recommandée en raison de leur uniformité génétique et physiologique. De plus, dans des conditions de laboratoire contrôlées, les animaux ont généralement un mode de vie sédentaire et une consommation alimentaire réglementée4. Parmi les modèles animaux, les rongeurs ont été les plus largement utilisés dans la recherche impliquant l’exercice physique1. Cependant, le poisson-zèbre (Danio rerio ; Hamilton, 1822) est un modèle complémentaire aux souris et à d’autres espèces pour les études d’exercice 5,6,7,8.

Dans la recherche sur le poisson zèbre, l’exercice physique peut être effectué à l’aide de tunnels de nage disponibles dans le commerce ou fabriqués sur mesure. Parmi les options disponibles dans le commerce, le tunnel de type Blazka, développé par Loligo System, est le 7,9,10 le plus fréquemment utilisé. Ce système induit une nage forcée à travers une hélice couplée à un moteur électrique, générant un écoulement d’eau continu à l’intérieur du tunnel. Cette capacité de nage est enracinée dans le principe de la rhéotaxie, un comportement inné chez les poissons qui les pousse à nager contre les courants d’eau et à maintenir leur position11. La rhéotaxie permet de mesurer la vitesse critique de nage (Ucrit), représentant la vitesse maximale qu’un poisson peut maintenir pendant une durée spécifique. Cependant, il convient de noter que cet équipement, bien que précieux pour évaluer le comportement de nage et la consommation d’oxygène, a un coût important12.

Les chercheurs ont mis au point des appareils alternatifs pour exercer le poisson zèbre, souvent basés sur le mécanisme de type Blazka10,13,14 ou des mécanismes plus simples 8,15,16. Néanmoins, ces méthodes peuvent être limitées par les exigences techniques du protocole, notamment des durées prolongées, des dépenses d’équipement substantielles et des limites de débit et de précision. Par conséquent, l’objectif principal de l’étude était de concevoir un système d’exercice de poisson-zèbre abordable et convivial en utilisant des matériaux facilement disponibles, fournissant ainsi un nouvel appareil alternatif pour l’exercice physique chez les poissons. Un objectif secondaire était de mettre en œuvre des régimes d’exercice aérobique et anaérobie chez le poisson zèbre, faisant ainsi progresser l’utilisation du modèle du poisson zèbre comme stratégie d’intervention dans la recherche sur l’exercice.

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Protocole

Les procédures ont reçu l’approbation préalable du Comité d’éthique de l’utilisation des animaux de l’Université fédérale de São Paulo (CEUA/UNIFESP n° 9206260521). Seules les femelles adultes de type sauvage Danio rerio, âgées de 6 mois et pesant de 2,5 à 3 g, ont été employées dans cette étude. L’équipement et les réactifs nécessaires à l’étude sont énumérés dans la table des matériaux.

1. Appareil d’exercice Zebrafish sur mesure

REMARQUE : L’appareil d’exercice a été construit sur mesure. Pour plus de détails, voir la figure 1, le tableau supplémentaire 1, le fichier supplémentaire 1 et le fichier supplémentaire 2.

  1. Placez une pompe submersible (N) à l’intérieur d’un réservoir d’eau (O) (≥30 L). Assurez-vous que l’eau répond aux conditions suivantes : pH de 7,2 ± 0,5 et 400 ± 50 μS, 28 ± 1 °C.
  2. Écoulement du tableau supplémentaire 1 et de la figure 1, connectez le tuyau (I) au tuyau en T pointé (B) et fixez un petit tuyau (G) sur le côté de B. À partir de G, établissez des raccordements au robinet à soupape (F), puis à un autre G, et dans l’ordre au coude de tuyau (A) et I, complétant ainsi le segment responsable de la régulation de la pression de l’eau dans le système. Cette régulation est réalisée par un retour vers le réservoir d’eau (O).
  3. Dans la section alternée de B, reliez-le à un tuyau (J), suivi des connexions à A et G. Utilisez le raccord de tuyau à emboîtement (D) pour connecter le robinet d’eau (E) à G.
  4. Intégrez un orifice d’entrée de poisson dans le système en connectant B à G à une extrémité et en attachant un autre G à l’extrémité opposée. Par la suite, connectez le Raccord de Tuyau à douille (C) à ce deuxième G, en établissant une séquence qui se connecte au Tuyau en acrylique (K), ce qui est crucial pour visualiser le comportement de nage.
    1. Pour relier K au capteur de débit d’eau (M), utilisez les tuyaux C, G et D. Connectez M à G à l’aide de D, puis intégrez A, G et H pour faciliter le retour de l’eau dans le réservoir.
      REMARQUE : Insérez une moustiquaire dans le segment de tuyau court entre l’opercule et le robinet à soupape (F2) pour empêcher les poissons d’accéder à d’autres sections de l’appareil. Le robinet à soupape (F) a une double fonction. Le premier robinet à soupape (F1) contrôle le débit d’eau qui retourne dans le réservoir avant d’entrer dans le reste de l’appareil, agissant comme une soupape de régulation de la pression du système. Le robinet à soupape (F2) est un point d’entrée et de sortie pour le poisson-zèbre dans le système.
  5. Fixez un capteur de débit d’eau en aval du tuyau en acrylique.
    REMARQUE : le capteur de débit doit être connecté à un écran LCD et programmé à l’aide d’un Arduino (Figure 1). Les détails de la configuration d’Arduino sont fournis dans le fichier supplémentaire 2.

2. Fonctionnement de l’appareil

  1. Pour introduire en toute sécurité les poissons dans le système, il est essentiel d’interrompre l’écoulement de l’eau. Pour ce faire, fermez le robinet-vanne (E) tout en gardant le robinet à soupape (F1) ouvert. Ensuite, ouvrez le robinet à soupape (F2), qui sert d’entrée au système, introduisez doucement le poisson et fermez rapidement le robinet F2. Enfin, ouvrez la valve E pour remplir la zone d’exercice avec de l’eau.
  2. Utilisez le robinet à soupape pour contrôler la vitesse d’écoulement, en détournant l’eau vers le réservoir si nécessaire.
  3. Utilisez le robinet-vanne (F2) pour un réglage précis du débit et pour gérer l’accès des poissons.
  4. Pour retirer le poisson à la fin de l’essai, fermez la soupape (E) après avoir observé les critères d’épuisement. Ensuite, ouvrez la valve F et faites-la pivoter de 180° par rapport à l’axe du tube acrylique ; Cela facilitera le drainage de l’eau emportant avec lui les poissons épuisés.
  5. Effectuez la surveillance du débit.
    REMARQUE : Il est nécessaire de surveiller la vitesse d’écoulement de l’eau à travers un système qui intègre un Arduino Nano, un écran LCD 16 x 2, une résistance traversante de 10 kΩ, 0,25 W et un potentiomètre de 10 kΩ. Le capteur de débit surveille en permanence la vitesse d’écoulement de l’eau sur la base de la technologie à effet Hall17. Chaque impulsion de courant correspond à un tour du flopper du capteur, ce qui donne une fréquence (Hz) de 6,6 x Q (débit en L/min).
    1. Connectez les fils appropriés du capteur de débit aux broches 5 V, GND et D2 de l’Arduino Nano (tableau supplémentaire 1). Chargez l’esquisse fournie (fichier supplémentaire 1) dans l’Arduino à l’aide de l’IDE Arduino. Alimentez le système via le port USB Arduino.
      REMARQUE : Les mesures de débit sont affichées sur l’écran LCD 16 x 2. L’étalonnage du capteur de débit d’eau est illustré à la figure 2. Les schémas des connexions Arduino à l’écran LCD sont illustrés à la figure 3.

3. Test d’endurance

REMARQUE : Cette étape décrit la procédure du test d’endurance pour déterminer la vitesse maximale de nage (Umax) du poisson-zèbre.

  1. Tout d’abord, laissez le poisson s’adapter pendant 60 minutes par jour à une faible vitesse d’écoulement de l’eau (0,06 m/s) à l’intérieur du tunnel de baignade pendant deux semaines.
    REMARQUE : Après une période de préconditionnement de 24 heures, chaque poisson-zèbre subira le test de performance de natation soutenue. Le but de ce test est d’établir l’Umax de chaque poisson.
  2. Placez le poisson-zèbre individuellement dans l’appareil.
  3. Conditions d’essai : Positionner le poisson contre un courant d’eau à une vitesse initiale de 0,06 m/s pendant 10 min.
  4. Incréments de vitesse : Augmentez le débit d’eau par étapes discrètes, avec des incréments de vitesse de 0,02 m/s se produisant toutes les minutes pendant 40 à 50 min.
  5. Détermination Umax : Recpod la vitesse maximale de nage (Umax) lorsque le poisson répond aux critères d’épuisement.
    REMARQUE : L’épuisement est défini lorsque la première des situations suivantes est observée : (1) incapacité à maintenir sa position contre le courant d’eau pendant plus de trois cas, ou (2) incapacité à maintenir sa position pendant plus de 5 s.
  6. Fermez la vanne (E) après avoir respecté les critères d’épuisement. Ensuite, ouvrez la valve F et faites-la pivoter de 180° par rapport à l’axe du tube acrylique. Cela facilitera le drainage de l’eau, transportant les poissons épuisés.

4. Groupes d’exercices et procédure

REMARQUE : Pour établir des protocoles d’exercice distincts, il est essentiel d’inclure un groupe sédentaire exposé à des conditions expérimentales identiques afin de comparer les effets des protocoles d’exercice, mais sans subir d’exercice de haute intensité. Il est également essentiel d’établir l’Umax car les fractions de la valeur Umax sont nécessaires pour déterminer l’intensité des protocoles d’exercice.

  1. Groupe sédentaire (SED) : Soumettre le poisson à une nage forcée à contre-courant de l’eau à 0,06 m/s pendant 60 min.
    REMARQUE : L’appareil génère un flux d’eau continu, obligeant le poisson à nager à contre-courant selon le principe de la rhéotaxie11.
  2. Groupe d’entraînement continu d’intensité modérée (MICT) : Soumettre le poisson à une nage forcée à contre-courant du débit d’eau à 60 % de Umax, tel que déterminé dans le test de capacité maximale, pendant 35 min.
    REMARQUE : Ce protocole a été adapté de Húngaro et al.18. Pendant les 10 premières minutes, le poisson s’est acclimaté à la même vitesse que le groupe sédentaire (0,05 m/s).
  3. Groupe d’entraînement par intervalles à haute intensité (HIIT) : Soumettre les poissons à une nage forcée en alternant les vitesses de nage : 2 min à 90% de Umax suivi de 2 min à 30% d’Umax, répété pendant 18 min (9 cycles). Ce protocole a été adapté de Marcinko et al.19.
    REMARQUE : Pendant les 10 premières minutes de la période d’exercice, il est nécessaire d’acclimater le poisson à la même vitesse que le groupe sédentaire (0,06 m / s).
  4. Mettez en œuvre tous les protocoles d’exercice 5 jours par semaine sur une période de quatre semaines.
    REMARQUE : Les poissons doivent être logés dans des aquariums qui offrent des conditions appropriées, et ils ne doivent être introduits dans l’appareil d’exercice que pendant les périodes d’exercice désignées. Les poissons doivent recevoir de la nourriture en flocons de poissons tropicaux trois fois par jour, et l’eau des aquariums d’entretien doit subir un changement partiel tous les 2 jours.
  5. Répétez le test d’endurance à la fin de chaque semaine, avec des données de latence et de vitesse au point de fatigue comme indicateurs des paramètres de conditionnement physique.
  6. Pour induire des effets de surentraînement, augmentez la vitesse d’écoulement de l’eau chaque semaine en fonction des résultats du test d’endurance effectué après chaque cycle d’entraînement de 4 jours. Les durées d’entraînement doivent être ajustées pour tenir compte de la distance parcourue (vitesse × temps), et ces durées doivent rester cohérentes entre les groupes exercés.
  7. Ajustez le temps de nage en fonction de l’augmentation du débit d’eau, uniformisant ainsi la charge d’entraînement entre les groupes d’exercices.

5. Mesures corporelles

  1. Anesthésier le poisson avec 0,0075 % de tricaïne (p/v) par immersion pour effectuer des mesures corporelles (poids et taille)20.
  2. Photographiez et pesez le poisson pour déterminer ses dimensions à l’aide du logiciel ImageJ.
  3. Exprimer les données en termes d’indices d’état corporel (poids [g]/longueur standard [mm]2 ; IMC) et l’évaluation de l’état corporel (NEC)20.
  4. Pour éliminer les variations de taille et de poids causées par la formation des œufs, soumettez le poisson à un élevage standard20, suivi de mesures et d’une pesée.

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Résultats

L’appareil d’exercice a démontré une efficacité remarquable dans la régulation de la vitesse d’écoulement. Afin d’améliorer progressivement la vitesse de nage, le débit d’eau a été augmenté progressivement chaque semaine pour tous les groupes, à l’exception du groupe SED, qui a été maintenu à une vitesse d’écoulement constante de 0,06 m/s. L’appareil permettait notamment un niveau de précision remarquable, permettant des ajustements de vitesse d’écoulement aussi fins que 0,001 m/s. Cependant, le taux d’erreur était de 30...

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Discussion

Dans cette étude, un système d’exercice innovant et rentable a été développé en s’inspirant du respiromètre à tunnel de nage de Loligo Systems21 et du système de canal22 pour l’examen complet des performances de nage du poisson-zèbre. L’Umax a été déterminé en augmentant systématiquement le débit d’eau par étapes discrètes, avec des augmentations de vitesse se produisant sur de courts intervalles (20-30 min) jusqu’à ce que le poisson atteig...

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Déclarations de divulgation

Il est essentiel de préciser qu’il n’y a pas d’intérêts financiers concurrents associés à la recherche présentée dans ce manuscrit. Aucun partenariat financier ou affiliation avec des organisations ou des entités n’a été établi qui pourrait influencer ou biaiser les résultats de ce travail. Cette déclaration sert à garantir que le processus de recherche a été simple et honnête, sans qu’aucun conflit financier n’influence les résultats. La présentation de ce travail est motivée par une véritable passion pour le sujet, motivée uniquement par un amour pour le milieu universitaire et la poursuite de la connaissance scientifique.

Remerciements

Nous remercions M. Omar Mertins d’avoir généreusement fourni l’accès au laboratoire pour l’entretien des poissons et l’exécution des tests. De plus, des reconnaissances sont accordées à la FAPESP, au CNPq et au CAPES pour l’octroi de bourses de soutien à ces recherches.

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Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
CPVC Femelle Coude à 90 degrés pour plomberieTigre221502603/4 pouce  ;
24AWGWire Sky Cablo StoreConnexion entre les composants dans la carte de circuit imprimé perforée (1m)
Tuyau acryliqueThe Clear Plastic Shop411384083/4-inch  ;
aquarium aquarium submersibleaquarium aqua tank300w
cpvc tuyautigre101217873/4 pouce  ;
Vanne d’eau à vanne filetée femelleTigre279503103/4 pouce  ;
Robinet à soupape fileté femelleTigre279405103/4 pouce  ;
Résistance à trou cylindriqueBXV10 k&Omega ;, 0,25W t
Support de laboratoire avec pince avec tige de 30 pouces  ;Masiye LabsRSC0001Soutenir l’écran LCD des tuyaux horizontaux
  ;Eichip16 x 2, modèle JHD162A
Mâle x Mâle Dupont CavaliersChyanConnexion entre l’arduino et le capteur de
Circuit imprimé perforé simple faceKY WIN ROBOT5 x 10 cm
PotentiomètreLUSYADL-ALPSA0110k&Omega ;
Rouleau de ruban adhésif de blocage d’eauOne World5603131000Pour éviter les fuites
Tuyau en siliconeTigre142112502 cm
intérieur Station de soudureQHTITECEU/US PLUGArduine system welding  ;
Bobine de fil à souderBEEYIHFI001-A001-SetSoudage système Arduine  ;
Douille mâle filetée et douille femelle non filetée Luminaire de tuyauterie CPVC354478493/4 pouce.
Tricaïne (MS-222)Sigma-AldrichE10521Anesthésique
UNO-R3 Carte UNO R3 CH340G+MEGA328P Puce 16Mhz  ;FSXSEMIPour Arduino UNO R3 Carte de développement
Tuyau en T CPVC non fileté, FemelleTigre222002673/4 pouce  ;
tuyauterie femelle non fileté en CPVCTigre221702603/4 pouce  ;
Capteur de débit d’eau  ; modèle YF-B5  ;Siqma RoboticsSQ8659à eau 1-25 L/min
  ;SunsunModèle HJ-2041, 3000L/h, 65W
Réservoir d’eauPersonnalisé30 L
débit (30 cm)Raccord de Pompe

Références

  1. Seo, D. Y., et al. Humanized animal exercise model for clinical implication. Pflugers Arch Eur. J Physiol. 466 (9), 1673-1687 (2014).
  2. Nylén, E. S., Gandhi, S. M., Lakshman, R. Cardiorespiratory fitness, physical activity, and metabolic syndrome. Cardiorespiratory Fitness in Cardiometabolic Diseases: Prev. & Manag. in Clin. Pract. , Springer. 207-215 (2019).
  3. Cholewa, J., et al. Basic models modeling resistance training: an update for basic scientists interested in study skeletal muscle hypertrophy. J Cell Physiol. 229 (9), 1148-1156 (2014).
  4. Martin, B., Ji, S., Maudsley, S., Mattson, M. P. 34;Control" laboratory rodents are metabolically morbid: Why it matters. Proc Natl Acad Sci USA. 107 (14), 6127-6133 (2010).
  5. Palstra, A. P., et al. Swimming-induced exercise promotes hypertrophy and vascularization of fast skeletal muscle fibres and activation of myogenic and angiogenic transcriptional programs in adult zebrafish. BMC Genomics. 15 (1), 1-20 (2014).
  6. Blazina, A. R., Vianna, M. R., Lara, D. R. The spinning task: A new protocol to easily assess motor coordination and resistance in zebrafish. Zebrafish. 10 (4), 480-485 (2013).
  7. Gilbert, M. J. H., Zerulla, T. C., Tierney, K. B. Zebrafish (Danio rerio) as a model for the study of aging and exercise: Physical ability and trainability decrease with age. Exp Gerontol. 50, 106-113 (2014).
  8. Usui, T., et al. The French press: A repeatable and high-throughput approach to exercising zebrafish (Danio rerio). Peer J. 2018 (1), 1-12 (2018).
  9. Tierney, K. B. Swimming performance assessment in fishes. J. Vis. Exp. (51), e2572(2011).
  10. Palstra, A. P., et al. Establishing zebrafish as a novel exercise model: Swimming economy, swimming-enhanced growth and muscle growth marker gene expression. PLoS One. 5 (12), e0014483(2010).
  11. Arnold, G. P. Rheotropism in fishes. Biol Rev Camb Philos Soc. 49 (4), 515-576 (1974).
  12. Messerli, M., et al. Adaptation mechanism of the adult zebrafish respiratory organ to endurance training. PLoS One. 15 (2), 1-20 (2020).
  13. Bek, J. W., De Clercq, A., Coucke, P. J., Willaert, A. The ZE-tunnel: An affordable, easy-to-assemble, and user-friendly benchtop zebrafish swim tunnel. Zebrafish. 18 (1), 29-41 (2021).
  14. Lucon-Xiccato, T., et al. An automated low-cost swim tunnel for measuring swimming performance in fish. Zebrafish. 18 (3), 231-234 (2021).
  15. Blazina, A. R., Vianna, M. R., Lara, D. R. The spinning task: A new protocol to easily assess motor coordination and resistance in zebrafish. Zebrafish. 10 (4), 480-485 (2013).
  16. Depasquale, C., Leri, J. The influence of exercise on anxiety-like behavior in zebrafish (Danio rerio). Behav Processes. 157, 638-644 (2018).
  17. Karsenty, A. A comprehensive review of integrated hall effects in macro-, micro-, nanoscales, and quantum devices. Sensors. 20 (15), Basel, Switzerland. 4163(2020).
  18. Húngaro, T. G. R., et al. Physical exercise exacerbates acute kidney injury induced by LPS via toll-like receptor 4. Front Physiol. 11, 1-13 (2020).
  19. Marcinko, K., et al. High intensity interval training improves liver and adipose tissue insulin sensitivity. Mol Metab. 4 (12), 903-915 (2015).
  20. Chen, W., Ge, W. Gonad differentiation and puberty onset in the zebrafish: Evidence for the dependence of puberty onset on body growth but not age in females. Mol Reprod Develop. 80 (5), 384-392 (2013).
  21. Conradsen, C., Walker, J. A., Perna, C., McGuigan, K. Repeatability of locomotor performance and morphology-locomotor performance relationships. J Exp Biol. 219 (18), 2888-2897 (2016).
  22. Widrick, J. J., et al. An open source microcontroller based flume for evaluating swimming performance of larval, juvenile, and adult zebrafish. PLoS ONE. 13 (6), 1-14 (2018).
  23. Gilbert, M. J. H., Zerulla, T. C., Tierney, K. B. Zebrafish (Danio rerio) as a model for the study of aging and exercise: Physical ability and trainability decrease with age. Exp Gerontol. 50 (1), 106-113 (2013).
  24. Hammer, C. Fatigue and exercise tests with fish. Exp Gerontol. 112 (1), 1-20 (1995).
  25. Takahiro Hasumura, S. M. Exercise quantity-dependent muscle hypertrophy in adult zebrafish (Danio rerio). J Comp Physiol B. 186, 603-614 (2016).
  26. Wang, L., et al. Effect of aerobic exercise as a treatment on type 2 diabetes mellitus with depression-like behavior zebrafish. Life Sciences. 300, 120578(2022).
  27. Conradsen, C., McGuigan, K. Sexually dimorphic morphology and swimming performance relationships in wild-type zebrafish Danio rerio. J Fish Bio. 87 (5), 1219-1233 (2015).
  28. Hughes, D. C., Ellefsen, S., Baar, K. Adaptations to endurance and strength training. Cold Spring Harb Perspect Med. 8 (6), 1-18 (2018).

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