Mesure du méthane dissous dans les écosystèmes aquatiques à l’aide d’un analyseur de gaz par spectroscopie optique

Summary

Cette étude met en évidence une approche permettant de mesurer les concentrations de méthane dans des échantillons aqueux à l’aide d’analyseurs optiques portables couplés à une chambre d’injection en boucle fermée. Les résultats sont similaires à ceux de la chromatographie en phase gazeuse conventionnelle, ce qui constitue une alternative pratique et peu coûteuse, particulièrement adaptée aux études sur le terrain à distance.

Abstract

La mesure des flux de gaz à effet de serre (GES) et des réserves dans les écosystèmes est de plus en plus courante dans les études écologiques en raison de leur pertinence pour le changement climatique. Avec elle, le besoin de plates-formes analytiques adaptables à la mesure de différents bassins et flux au sein des groupes de recherche augmente également. Cette étude vise à développer une procédure pour utiliser des analyseurs de gaz portables basés sur la spectroscopie optique, conçus et commercialisés à l’origine pour mesurer les concentrations de GES dans les échantillons aqueux. Le protocole implique la technique traditionnelle d’équilibrage de l’espace de tête, suivie de l’injection d’un sous-échantillon de gaz de l’espace de tête dans une chambre reliée par une boucle fermée aux orifices d’entrée et de sortie de l’analyseur de gaz. La chambre est fabriquée à partir d’un pot Mason générique et de simples fournitures de laboratoire, et c’est une solution idéale pour les échantillons qui peuvent nécessiter une dilution avant l’injection. Les concentrations de méthane mesurées avec la chambre sont étroitement corrélées (r² > 0,98) avec les concentrations déterminées séparément par chromatographie en phase gazeuse et détection par ionisation de flamme (GC-FID) sur des sous-échantillons provenant des mêmes flacons. La procédure est particulièrement pertinente pour les études sur le terrain dans des zones reculées où l’équipement et les fournitures de chromatographie ne sont pas facilement disponibles, offrant une solution pratique, moins coûteuse et plus efficace pour mesurer les concentrations de méthane et d’autres gaz à effet de serre dissous dans les systèmes aquatiques.

Introduction

Les écosystèmes situés à l’interphase terrestre-aquatique, comme les zones humides, les lacs, les réservoirs, les rivières et les ruisseaux, sont d’importants puits et sources de gaz à effet de serre (GES) comme le dioxyde de carbone (CO₂), le méthane (CH₄) et le protoxyde d’azote (N₂O)^1,2. Le CH₄, en particulier, est produit lors de la respiration anaérobie dans les espaces interstitiels saturés des pores des sédiments. Une fois produite, une fraction est oxydée et transformée en CO₂, tandis que le reste finira par se diffuser dans la colonne d’eau et la végétation ou éclater en bulles³. La concentration de CH₄ dans l’eau qui sature les pores des sédiments (c’est-à-dire l’eau interstitielle) à un moment donné donne un aperçu de l’équilibre entre le CH₄ produit, consommé et transporté⁴. Mesurée sur des profils verticaux ou dans le temps, la concentration en eau interstitielle permet également d’identifier les zones les plus actives dans la production et la consommation de CH₄ et leur variation saisonnière.

Traditionnellement, les méthodes pour déterminer la concentration de GES de l’eau interstitielle dans les écosystèmes impliquent le traitement d’échantillons d’eau prélevés sur le terrain pour équilibrer les gaz dans un espace de tête créé. Ensuite, l’espace de tête est analysé par chromatographie en phase gazeuse pour déterminer les concentrations⁵. Bien que cette méthode soit largement appliquée dans les études écologiques, elle nécessite des systèmes de chromatographie en phase gazeuse et de détection par ionisation de flamme (GC-FID) de paillasse qui impliquent l’allocation d’un espace de laboratoire conventionnel et un haut degré de connaissances spécialisées pour l’étalonnage et le fonctionnement (par exemple⁶). Cela nécessite également l’utilisation de consommables spécialisés, tels que de grands réservoirs de gaz vecteurs (c’est-à-dire de l’azote (N₂) et de l’hélium (He)), qui ne sont pas facilement disponibles dans les endroits éloignés. Ces exigences et la logistique associée au transport des échantillons au laboratoire peuvent limiter la conception de l’échantillonnage et, dans certains cas, limiter la portée de l’étude lorsque l’équipement de chromatographie n’est pas disponible.

Cette étude visait à développer une méthode alternative pour mesurer les concentrations de gaz à effet de serre dissous à partir d’échantillons de solutions aqueuses dans l’espace de tête à l’aide d’analyseurs de gaz portables basés sur la spectroscopie optique. Ce type d’analyseur de gaz optique est une alternative rentable aux systèmes GC-FID standard, et sa portabilité en fait un choix idéal pour les applications de travail sur le terrain. Les analyseurs de gaz portables basés sur la spectroscopie optique produisent des mesures de concentration de gaz à haute fréquence (^{c’est-à-dire ~ 1 s-1}) avec des temps de réponse de 2 à 5 s, selon les marques et les modèles. Ces instruments sont conçus et commercialisés principalement pour déterminer les flux de gaz à partir de surfaces émettrices de GES comme les sols, l’eau et la végétation ^7,8,9. Les analyseurs optiques permettent de calculer le flux à partir de mesures de concentration continues dans des chambres d’espace de tête non stationnaires déployées sur les surfaces d’émission d’intérêt. Dans le cadre de leur utilisation habituelle avec des chambres de surface, les mesures à haute fréquence du taux de variation des concentrations observées dans la chambre et des dimensions, de la pression et de la température connues de la chambre permettent d’interpréter ces données comme pour le taux d’émission (ou d’absorption) par surface (c’est-à-dire les flux de surface)¹⁰. Cependant, les analyseurs de gaz portables ne sont ni équipés ni optimisés pour les concentrations dissoutes dans les milieux aqueux, ce qui nécessite des adaptations et des interprétations supplémentaires pour ce type d’analyse.

En nous appuyant sur les démonstrations précédentes de l’utilisation d’analyseurs optiques pour déterminer les concentrations dans des échantillons discrets à partir d’espaces de tête⁸, nous avons conçu une petite chambre fermée (c’est-à-dire sans surfaces d’émission) qui se connecte à l’analyseur en boucle fermée. La variation des concentrations après l’injection du sous-échantillon de gaz dans l’espace de tête, suivie des calculs de dilution, permet de déterminer les concentrations de l’espace de tête d’origine. La précision de cette approche a été évaluée en comparant ses résultats à ceux obtenus par GC-FID dans les mêmes échantillons. La méthode est également démontrée par un cas d’utilisation qui a analysé les profils verticaux de CH₄ dans des échantillons d’eau interstitielle prélevés sur des sites expérimentaux dans un marais d’eau douce en Louisiane.

Protocol

1. Échantillonnage et analyse de l’eau interstitielle

1. Prélever les échantillons à l’aide d’échantillonneurs à dialyse à eau interstitielle11. Déployez les regards dans les endroits pertinents du site d’étude. Dans l’étude de démonstration, 6 rainettes ont été déployées sur les deux parcelles de végétation dominante d’un marais d’eau douce : trois sur une parcelle dominée par Sagitaria lancifolia et les trois autres sur une parcelle co-dominée par la végétation de S. lancifolia et de Typha latifolia.
2. Prélevez des échantillons 4x en juin, septembre, octobre et décembre. Prélevez des échantillons à 10 profondeurs différentes de la surface du sol jusqu’à ~50 cm en dessous. L’échantillonnage a suivi la méthode décrite aux^{paragraphes 12 et 13}.
   1. Remplissez les cellules d’échantillonnage avec 61 mL d’eau déminéralisée ~20 jours avant l’échantillonnage. Buller de l’eau désionisée avec du N₂ pendant 5 min en laboratoire pour éliminer l’oxygène avant de l’utiliser sur le terrain.
   2. Pendant l’échantillonnage, prélever 25 mL d’eau de la cellule à l’aide d’une seringue reliée à la conduite d’extraction de la cellule. Ensuite, remplissez les cellules avec de l’eau fraîche déminéralisée pré-bulle de N₂ à travers une ligne de recharge de cellule secondaire. Si des mesures de concentration sont nécessaires juste après le prélèvement, passez à l’étape 2.1.
   3. Ajouter l’eau extraite dans des flacons en verre de 10 mL conservés avec 0,2 mL de HCl 0,1 M, les boucher avec du septum et les réfrigérer jusqu’à l’analyse en laboratoire.
      REMARQUE : Les utilisateurs de cette méthode sont invités à modifier les profondeurs de collecte, le calendrier d’échantillonnage et la fréquence en fonction des besoins spécifiques de l’étude.

2. Mesure de la concentration de gaz à effet de serre

1. Effectuer l’équilibrage de l’espace de tête d’échantillons d’eau interstitielle dans une seringue
   1. Créez des échantillons de gaz dans l’espace de tête à l’aide de la technique d’équilibrage¹⁴. À l’aide d’une seringue de 30 ml, prélevez 5 ml d’eau (V_pw) dans les échantillons prélevés sur le terrain, puis ajoutez 15 mL de N₂ (Ultra Haute Pureté 99,999 %) pour créer l’espace libre (V_hs).
   2. Agitez la seringue vigoureusement et régulièrement pendant 5 min, manuellement ou à l’aide d’un agitateur à bascule (si disponible). Injectez 12 mL de sous-échantillon de gaz dans l’espace de tête dans un flacon pré-évacué de 10 mL utilisé pour les mesures de concentration de gaz avec l’analyseur optique en suivant les étapes suivantes (Figure 1). Évacuez les flacons à l’aide d’une pompe péristaltique¹⁵ ou tirez manuellement le piston d’une seringue de 60 ml sur le flacon fermé et pompez l’air 3 fois.
      REMARQUE : Il peut être utilisé à la place de N₂ pour créer l’espace de tête. La procédure d’ajout de N₂ ou He à la seringue dépend de l’adaptation spécifique ou du régulateur du réservoir réel disponible pour les utilisateurs. Cet ajout implique généralement le couplage de la seringue au réservoir à l’aide d’un tube adapté ou l’extraction avec la seringue à partir d’un orifice d’échantillonnage adapté au réservoir. Selon les conditions du site et la logistique associée, les utilisateurs peuvent utiliser l’air ambiant pour créer l’espace de tête.
2. Créer la chambre d’injection
   1. Fabriquer une chambre d’injection capable d’accepter un petit volume d’air (~1 à 5 ml) dans un volume d’air scellé qui se connecte à l’entrée et à la sortie de l’analyseur de gaz pour former une boucle fermée (Tableau des matériaux). La chambre d’injection et l’analyseur sont les deux éléments principaux du système (Figure 2).
   2. Modifier le couvercle métallique d’un pot Mason de 365 mL en perçant un trou de 11 mm de diamètre pour y installer un septum comme orifice d’injection et deux trous de 7 mm de diamètre pour insérer des robinets d’arrêt qui se connectent à l’analyseur. Utilisez de la colle époxy pour serrer l’orifice d’injection et les raccords et assurer l’étanchéité de la chambre.
3. Connecter la chambre d’injection à l’analyseur optique
   1. Connectez le bocal aux orifices d’entrée et de sortie de l’analyseur optique en utilisant un diamètre intérieur (D.I.) de 5/32 de pouce et un diamètre extérieur de 1/4 de pouce (O.D.) Tubes en plastique PFA et tenir compte de leur volume supplémentaire. Assurez-vous que le tube suit les recommandations du fabricant de l’instrument et qu’il est propre et sec sans condensation.
   2. Réglez les vannes qui relient la chambre d’injection à l’instrument pour qu’elles s’ouvrent afin de créer un circuit d’air en boucle fermée. Attendez que les concentrations de gaz se stabilisent.
4. Injecter un échantillon dans la chambre
   1. Lorsque la concentration dans la chambre et le signal dans l’analyseur se sont stabilisés (c.-à-d. écart type <0,03 ppm), injecter 2 mL d’un sous-échantillon des flacons contenant l’échantillon d’espace de tête créé à l’étape 2.1.2. Attendez que les concentrations dans l’analyseur se stabilisent à nouveau avant d’injecter le sous-échantillon suivant (figure 3).
   2. Injecter jusqu’à 20 sous-échantillons consécutivement ou moins si la concentration se rapproche de 100 ppm (voir⁸pour les effets sur la précision au-dessus de ce seuil). Analysez CH₄ , vérifiez les étalons pour 5 échantillons et évaluez la différence avec les mesures réelles à l’aide de l’écart-type relatif (RSD).
   3. Une fois l’ensemble d’injections empilées terminé, débranchez l’une des conduites connectées à l’instrument pour réinitialiser la chambre à la pression ambiante et éviter une accumulation importante de pression et de concentration de méthane.
      REMARQUE : Sur la base de plusieurs essais, il a été déterminé que le signal s’est stabilisé ~15 s après l’injection, mais des moments différents peuvent être nécessaires en réponse à d’autres spécifications d’enregistrement de l’instrument (Figure 3). Le débit de l’instrument utilisé était de ~1 L/min avec un temps de réponse de 5 s et une pression de cavité lors des différentes analyses à différents jours allant de 720 à 745 Torr.
5. Calculer Concentrations de CH₄ dans l’espace de tête
   1. Pour chaque sous-échantillon, calculer la concentration du GES cible (p. ex., CH₄, CO_2, N₂O) dans l’espace de tête (C_hs - μmol/mol) à l’aide de l’équation 1 :
      Équation [1]
      Où V_hs est le volume du sous-échantillon de l’espace de tête.
   2. Calculer les concentrations avant (C_bi - μmol ^mol-1) et après les injections (C_ai - μmol ^mol-1) comme la moyenne de 15 mesures (~15 s) avant l’injection et de 15 après la stabilisation du signal après l’injection. Calculez les volumes en mL, avant (V_bi) et après les injections (V_ai) avec les équations 2 et 3 :
      [2]
      et
      [3]
      Où V_j (mL) est le volume ajouté du bocal (365 mL) et du tuyau (125,4 mL), et V_i (mL) est le volume cumulé des sous-échantillons injectés.
6. Calculer concentration d’eau interstitielle
   1. Calculer la pression partielle (P_i - MPa) de CO₂, CH₄ ou N₂O dans l’espace de tête en utilisant la fraction molaire de gaz dans l’espace de tête et la pression atmosphérique (P) pendant le traitement de l’échantillon à l’aide de l’équation 4 :
      [4]
   2. Calculer la concentration équivalente aqueuse de GES dans l’eau interstitielle à l’aide d’une équation de dilution (équation 5) avec l’espace de tête et les concentrations et volumes équivalents aqueux :
      [5]
      Où R est la constante universelle des gaz (0,008314 L MPa mol⁻¹ K⁻¹), est la température de l’air (K), V_hs est le volume de l’espace de tête (mL), K_H^cp est la constante de volatilité de Henry de CO₂, CH₄ ou N₂O (2,96, 67,13 et 3,82 L MPa/mol, respectivement)¹⁶, et V_pw le volume du sous-échantillon liquide utilisé pour créer l’espace de tête (mL).
   3. Utilisez les T et P enregistrés pendant les mesures. Les valeurs moyennes de T et de P lors de l’analyse des échantillons du projet de démonstration étaient de 295,15 K et de 0,101325 MPa, respectivement.

3. Validation par rapport aux mesures de chromatographie standard

1. Analysez différentes concentrations connues de CH₄ dans des flacons de 10 mL à l’aide d’un chromatographe en phase gazeuse classique. Utilisez trois groupes identiques de 20 étalons chacun. Les concentrations les plus faibles variaient de 5 à 100 ppm et augmentaient par tranches de 5 ppm.
2. Déterminer les concentrations de CH₄ par détection par ionisation de flamme sur un chromatographe en phase gazeuse. Le chromatographe a utilisé une colonne poreuse absorbante de polymère remplie avec He (25 mL/min) comme gaz vecteur. Pour effectuer les mesures des concentrations des étalons, étalonnez le chromatographe selon un ajustement de courbe (r²) > 0,99.
3. Après la chromatographie, on procède à la détermination de la concentration en CH₄ dans les mêmes flacons étalons à l’aide de la méthode décrite ci-dessus, à l’aide d’un analyseur optique étalonné par le fabricant (c.-à-d. précision (300 s, 1σ) : 0,3 ppb CH₄).
4. Évaluez la précision de la méthode en ajustant une régression linéaire aux résultats de la chromatographie et de l’analyseur optique des trois groupes d’étalons. Évaluer la réplicabilité de la méthode en comparant les pentes et les interceptions des régressions effectuées au sein de chaque groupe de normes. Évaluez la comparaison à l’aide d’un modèle standard des moindres carrés en mettant l’accent sur l’effet de levier. Évaluez toutes les régressions et comparaisons à un niveau de signification de 0,05.

Results

Analyseur optique versus chromatographie en phase gazeuse
Les résultats obtenus par chromatographie en phase gazeuse et par analyseur optique pour les trois groupes d’étalons ont montré de bons ajustements linéaires (c’est-à-dire r² > 0,98) avec des pentes proches de un (figure 4). Les pentes des régressions dans les trois expériences étaient statistiquement similaires (F(2) = 0,478, p = 0,623), ce qui suggère la reproductibilité des résultats. Il est important de noter que les pentes dans les trois cas étaient supérieures à un, ce qui indique qu’en moyenne, on peut s’attendre à une légère sous-estimation des concentrations de gaz mesurées avec l’analyseur optique par rapport aux concentrations obtenues par chromatographie. Cependant, les intersections à zéro sont différentes (F(1) = 1648,49, p <0,0001), ce qui incite à la prudence lors de l’interprétation de faibles concentrations de CH₄ (c.-à-d. <10 μmol/mol). En fait, à ces concentrations les plus faibles, l’analyseur optique et la chromatographie ont montré les erreurs relatives les plus importantes (tableau 1), ce qui suggère les défis de la mesure à de faibles concentrations.

Essai sur le terrain : utilisation du protocole pour déterminer les concentrations de méthane dans l’eau interstitielle de deux parcelles de végétation dans les zones humides côtières de la Louisiane
Les concentrations en CH₄ de l’eau interstitielle déterminées à partir d’échantillons prélevés sur le terrain montrent des dynamiques verticales et temporelles distinctes (figure 5). Ces modèles sont attendus dans les milieux écohydrologiques des zones humides comme ceux échantillonnés, où la diversité de la végétation des zones humides peut moduler la production et l’oxydation du CH₄ et les échanges gazeux qui en résultent avec l’atmosphère^17,18. La DSR était ± 10,03 %, inférieure aux 15 % généralement utilisés comme seuil dans les protocoles de contrôle et d’assurance de la qualité (CQ/AQ) utilisant la chromatographie pour les analyses de gaz à effet de serre¹⁹.

Figure 1 : Vue d’ensemble du protocole. Schéma montrant les principales étapes du protocole. Veuillez cliquer ici pour voir une version agrandie de cette figure.

Figure 2 : Composants du système. (A) Composants principaux et (B) Vue détaillée de la chambre d’injection. Veuillez cliquer ici pour voir une version agrandie de cette figure.

Figure 3 : Concentrations lors des injections. Les concentrations de CH₄ dans la chambre d’injection au cours d’une mesure sélectionnée montrent la réponse typique après l’injection de l’échantillon. Les zones mises en évidence indiquent les concentrations avant et après l’injection prises en compte pour les calculs. Veuillez cliquer ici pour voir une version agrandie de cette figure.

Figure 4 : Comparaison entre les mesures effectuées avec cette méthode et la chromatographie. Les relations linéaires entre les concentrations dans l’espace de tête CH₄ déterminées par chromatographie en phase gazeuse (GC-FID) et les concentrations déterminées avec cette méthode pour les trois expériences présentaient de bons ajustements linéaires (c.-à-d. r² > 0,98). Veuillez cliquer ici pour voir une version agrandie de cette figure.

Figure 5 : Démonstration d’un cas d’utilisation. Concentrations d’eau interstitielle dans les parcelles dominées par (A) Sagittaria lancifolia, et (B) un mélange de Sagittaria lancifolia et de Typha latifolia. Veuillez cliquer ici pour voir une version agrandie de cette figure.

Norme CH4 [ppm]	GC [ %]	Analyseur optique [ %]
5	24.3	22.8
10	9.6	3.4
15	16.7	6.1
20	0.6	3.4
25	1	6
30	1.5	6.7
35	1.7	8
40	1.3	13.3
45	1.4	8.2
50	0.2	6.9
55	1.4	7.9
60	1.6	4.6
65	0.4	8.8
70	2.4	4.3
75	1.4	6.3
80	0.9	7
85	0.4	4.1
90	1.6	3.3
95	3.4	9
100	4.2	3.3

Tableau 1 : Erreur relative ( %) Les mesures par chromatographie en phase gazeuse (GC) et par analyseur optique du même flacon étalon de contrôle.

Discussion

Cette étude a démontré l’applicabilité d’analyseurs de gaz portables basés sur la spectroscopie optique couplés à une chambre d’injection sur mesure pour analyser les espaces de tête créés à partir d’échantillons d’eau. La démonstration s’est concentrée sur le CH₄, mais le protocole pourrait être appliqué à l’analyse d’autres GES pertinents comme le CO₂ et le N₂O⁸. L’objectif était d’élargir les évaluations systématiques antérieures de ces systèmes en boucle fermée qui représentent une plateforme analytique alternative à la chromatographie en phase gazeuse conventionnelle dans les études de mesure de la concentration de GES.

À l’instar de la chromatographie en phase gazeuse, dans cette approche, il est essentiel d’utiliser des étalons de contrôle pour assurer le contrôle de la qualité et l’évaluation dans le processus d’analyse. Les étalons analysés avec la méthode étaient comparables à ceux de la chromatographie standard (Figure 4). Cependant, les principaux avantages perçus incluent l’absence de gaz vecteurs ou des routines d’étalonnage fréquentes. Les utilisateurs peuvent également analyser des échantillons immédiatement après l’échantillonnage sur le terrain, ce qui réduit le temps alloué à l’oxydation microbienne d’espèces réactives comme le CH₄ dans les échantillons d’eau. Même lorsqu’il n’est pas possible de disposer de gaz exempt de GES pour créer l’espace libre nécessaire à la préparation des échantillons, les utilisateurs pourraient toujours créer des espaces libres en utilisant l’air ambiant, en supposant que la concentration dans l’eau d’intérêt est supérieure à celle de l’air²⁰. Il existe également des inconvénients perçus, tels que le temps nécessaire pour mesurer de grands ensembles d’échantillons. Bien que l’analyse d’un seul échantillon puisse prendre un temps similaire à celui de la GC-FID, il n’existe pas de moyens automatisés d’effectuer des injections dans les analyseurs optiques, et cette approche nécessite plus de temps de fonctionnement que pour les systèmes d’échantillonneur automatique GC plus établis.

La principale différence entre cette approche et d’autres systèmes en boucle fermée avec des orifices d’injection en ligne (par exemple, ⁸) est l’ajout d’une chambre d’injection. Dans celui-ci, les échantillons à haute concentration peuvent être dilués dans le cadre du fonctionnement régulier pendant l’analyse, évitant ainsi des étapes supplémentaires pour diluer les échantillons avant leur injection dans la boucle. En pratique, l’opérateur peut procéder à des injections à partir de l’espace de tête dans la chambre au lieu de créer des dilutions pour les échantillons dont les concentrations sont suspectées d’être élevées. Le volume de la chambre peut être modifié et agrandi pour accueillir des échantillons à forte concentration ou plus petit pour les échantillons à faible concentration. Un autre avantage de cette méthode par rapport à d’autres systèmes en boucle fermée avec injections en ligne en termes d’efficacité dans l’analyse de plusieurs échantillons est la possibilité d’injections en pile sans rinçage de la chambre juste après chaque injection. La dilution dans la chambre d’injection a permis à la concentration de méthane dans la boucle de rester constamment inférieure à 100 ppm de CH₄ pendant l’approche d’injection à 20 empilements que nous avons testée, que des travaux antérieurs ont identifiée comme le seuil de concentration de la boucle à partir duquel la précision de l’analyse du CH₄ commence à baisser³.

Dans l’ensemble, cette méthode convient à l’analyse d’échantillons dans des endroits éloignés ou dans les cas où les chromatographes, y compris les chromatographes portables²¹, ne sont pas réalisables ou disponibles. Par exemple, les scientifiques qui participent à des expéditions sur le terrain dans des endroits éloignés seront en mesure de déterminer les concentrations réelles de GES dans les plans d’eau et les systèmes aqueux après quelques étapes simples pour créer l’espace libre et prendre des décisions concernant les priorités et les besoins en matière d’échantillonnage sur place, au lieu d’avoir à rapporter les échantillons à un laboratoire ou à une station de terrain équipée de chromatographie.

Materials

List of materials used in this article

Name	Company	Catalog Number	Comments
1/4 po de diamètre intérieur x 3/8 po de diamètre extérieur Tube en vinyle transparent	Home Depot	SKU #  ; 702098	Permet de coupler les robinets d’arrêt et les tubes reliés à l’instrument. Deux pièces courtes (~4 cm).
5/16 à 5/8 pouces Collier de serrage en acier inoxydable	Everbilt	6260294	Permet de fixer les tubes reliant les vannes du robinet d’arrêt et les tubes connectés à l’instrument.
Tube semi-transparent en téflon PFA résistant aux fissures pour produits chimiques, 5/32 » ID, 1/4 » OD	McMaster-Carr	51805K86	À utiliser pour connecter la chambre d’injection aux orifices d’entrée et de sortie de l’instrument. Nous avons utilisé deux tubes de 0,68 m de long dans notre expérience.
Percer avec un foret étagé en titane	Plusieurs entreprises		Permettent de percer les trous pour le septum et les robinets d’arrêt dans le couvercle métallique du bocal.
Septum gay butyle (bouchon)	Weathon Microliter	20-0025-B	Utiliser comme port d’injection et comme septum fiole (si compatible).  ;
Flacons d’espace de tête 20ml (23x75mm), transparent, sertissage à fond arrondi	Restek	21162	À utiliser pour stocker l’échantillon d’espace de tête.  ;
Acier robuste Bond Epoxy GorillaWeld Gorilla		4330101	Permet de coller les vannes du robinet d’arrêt et le septum sur le couvercle métallique du pot.
Aiguilles hypodermiques	Air-Tite Products Co.  ;	N221	À utiliser pour extraire l’eau des flacons de terrain, injecter l’échantillon de l’espace de protection dans le flacon et injecter le sous-échantillon dans la chambre d’injection.
Pot Mason (12 oz)	Balle, Kerr, Jarden		Des volumes de chambre plus grands ou plus petits peuvent être choisis en fonction des concentrations d’échantillons.
Analyseur de gaz basé sur la spectroscopie optique  ;   ;	Plusieurs sociétés	Picarro G4301, Licor 7810, Licor 7820, ABB GLA131-GGA	Voici quelques exemples spécifiques d’analyseurs qui pourraient être couplés à la chambre d’injection. Nous reconnaissons qu’il ne s’agit pas d’une liste exhaustive et que d’autres analyseurs de spectroscopie optique peuvent également convenir à la méthode.   ;
Robinet d’arrêt	DWK Life Sciences	420163-0001	Maintenir les vannes ouvertes pendant le fonctionnement normal.  ;
Seringue (2,5 mL)	Air-Tite Products Co.  ;	R2	Permet d’extraire des sous-échantillons des flacons d’espace de tête et de les injecter dans la chambre d’injection pour analyse.
Seringue (30 mL)	Air-Tite Products Co.  ;	R30HJ	Permet de créer un espace libre pour l’analyse des gaz.