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Article de méthode

Hybridation in situ par fluorescence infrarouge photothermique optique (OPTIR-FISH)

2.1K vues

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DOI :

10.3791/66562

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23 février 2024

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* These authors contributed equally

Dans cet article

Résumé

Ici, nous présentons un protocole utilisant l’hybridation in situ par fluorescence infrarouge photothermique optique (OPTIR-FISH), également connue sous le nom de FISH PHOTOTHERMIQUE DANS L’INFRAROUGE MOYEN (MIP-FISH), pour identifier les cellules individuelles et comprendre leur métabolisme. Cette méthodologie peut être largement appliquée à diverses applications, notamment la cartographie du métabolisme cellulaire avec une résolution unicellulaire.

Résumé

Comprendre les activités métaboliques des cellules individuelles au sein de communautés complexes est essentiel pour démêler leur rôle dans la maladie humaine. Ici, nous présentons un protocole complet d’identification cellulaire et d’analyse métabolique simultanées avec la plateforme OPTIR-FISH en combinant des sondes FISH marquées à ARNr et des substrats marqués par isotope. L’imagerie par fluorescence permet l’identification cellulaire par la liaison spécifique de sondes FISH marquées à ARNr, tandis que l’imagerie OPTIR fournit des activités métaboliques au sein de cellules individuelles par décalage vers le rouge induit par les isotopes sur les spectres OPTIR. En utilisant des bactéries cultivées avec du 13C-glucose comme banc d’essai, le protocole décrit la culture microbienne avec marquage isotopique, l’hybridation in situ en fluorescence (FISH), la préparation des échantillons, l’optimisation de la configuration d’imagerie OPTIR-FISH et l’acquisition de données. Nous montrons également comment effectuer une analyse d’images et interpréter des données spectrales au niveau d’une cellule unique avec un débit élevé. La nature normalisée et détaillée de ce protocole facilitera grandement son adoption par des chercheurs de divers horizons et disciplines au sein de la vaste communauté de recherche sur le métabolisme unicellulaire.

Introduction

Le métabolisme cellulaire est un pilier fondamental de la biologie cellulaire, guidant de nombreux processus qui déterminent la santé, la fonction et l’interaction des cellules avec l’environnement. L’analyse du métabolisme au niveau des cellules individuelles, en particulier dans les environnements natifs, fournit des informations inestimables pour révéler les activités hétérogènes et complexes des systèmes biologiques1. Ceci est particulièrement crucial dans l’étude des micro-organismes, car de nombreux microbes présentent des exigences de croissance uniques ou des dépendances environnementales qui remettent ....

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Protocole

L’utilisation d’échantillons bactériens dans cette étude est conforme aux directives de l’Institutional Review Board (IRB) de l’Université de Boston et du National Institute of Health.

REMARQUE : Le flux de travail général suivi dans ce protocole est résumé à la figure 2.

1. Culture bactérienne et marquage isotopique (figure 2A)

REMARQUE : L’exemple donné ici concerne l’étiquetage d’une culture bactérienne pure. Si l’on applique ce protocole à des communautés po....

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Résultats

Le flux de travail général pour l’analyse métabolique microbienne unicellulaire avec identification génétique par OPTIR-FISH est résumé dans Graphique 2. Les résultats représentatifs démontrant la capacité d’imagerie métabolique unicellulaire d’OPTIR sont présentés dans Graphique 3. Cet exemple a utilisé des cellules E. coli incubées avec 12C- ou 13C-glucose pendant 24 h. L’incorporation de 13Il a été démontré que C dans les prot.......

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Discussion

Ici, nous avons décrit un protocole détaillé pour l’application de la plateforme OPTIR-FISH pour l’identification simultanée des espèces microbiennes et la quantification des activités métaboliques à la résolution de la cellule unique. Les étapes critiques comprennent la culture avec marquage d’isotopes stables pour l’étude d’activités métaboliques spécifiques et l’hybridation in situ en fluorescence pour identifier les espèces microbiennes cibles. L’imagerie par fluorescence mu.......

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Déclarations de divulgation

Y.B. est consultant à temps partiel pour Photothermal Spectroscopy Corp.

Remerciements

Ce travail a été soutenu par le National Institute of Health R35GM136223, R01AI141439 à J.X.C.

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Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
Éthanol à 96 %ThermoScientificT032021000
Fluorure de calciumCrystranCAFP10-0.35
D-(+)-GlucoseSigma-AldrichG7021-1KG
D-Gluocose (U-13C6, 99 %)Cambridge Isotopic LaboratoriesCLM-1396-1
Acide éthylènediaminetétraacétiqueSigma-AldrichE9884-100G
formamideThermoScientific17899
Bouillon Luria-Bertani  ;Sigma-AldrichL3522-250G
M9 Sels minimaux 5xSIGMAM6030-1KG
Instrument OPTIRSpectroscopie Photothermique Corp.mIRage LS
Solution de paraforaldéhyde, 4 % dans une solution deThermoScientificJ19943-K2
à 0,1 % (p/v)  ;Sigma-AldrichP8920-500ML
Chlorure de sodiumSigma-AldrichS9888-25G
Dodécylsulfatede sodium Sigma-AldrichL3771-25G
Chlorhydrate de tris(hydroxyméthyl)aminométhane, 99+ %ThermoScientificA11379.18
Bouillon de soja trypicSigma-Aldrich22092-500G
poly-L-lysine PBS

Références

  1. Evers, T. M. J., et al. Deciphering metabolic heterogeneity by single-cell analysis. Anal Chem. 91 (21), 13314-13323 (2019).
  2. Overmann, J., Abt, B., Sikorski, J. Present and future of culturing bacteria. Annu Rev Microbiol. 71, 711-730 (2017).
  3. Epstein, S.

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Réimpressions et autorisations

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