Article de méthode

Application du code-barres ADN pour identifier les plantes médicinales

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DOI :

10.3791/66925

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1 novembre 2024

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1School of Pharmacy, Guizhou University of Traditional Chinese Medicine, 2School of Pharmacy/School of Modern Chinese Medicine Industry, Chengdu University of Traditional Chinese Medicine, 3Institute of Herbgenomics, Chengdu University of Traditional Chinese Medicine

Dans cet article

Résumé

Le présent protocole décrit l’utilisation de la technologie de codage à barres de l’ADN pour authentifier les matériaux médicinaux à base de plantes et la plante médicinale Angelica sinensis (Oliv.) Diels a été cité en exemple.

Résumé

Les plantes médicinales sont des ressources précieuses dans le monde entier et sont utilisées dans le monde entier pour maintenir la santé et traiter les maladies ; Cependant, la présence d’une falsification entrave leur développement. Le code-barres de l’ADN, une technique d’identification des espèces par des régions d’ADN standard, facilite l’identification rapide et précise des plantes médicinales traditionnelles. Le processus de codage à barres de l’ADN comporte six étapes de base : 1) le traitement des plantes médicinales, 2) l’extraction de l’ADN total de haute qualité des plantes médicinales à l’aide de la méthode de la colonne centrifuge, 3) l’amplification de l’espaceur 2 transcrit interne de la région de l’ADN cible (ITS2) avec des amorces universelles de plantes et la réalisation d’un séquençage de Sanger, 4) l’épissage et l’alignement de la séquence pour obtenir la séquence cible, 5) faire correspondre la séquence de code-barres avec la bibliothèque de codes-barres pour l’identification, 6) aligner la séquence, comparer les variations intraspécifiques et interspécifiques, construire un arbre phylogénétique de jonction de voisins. Comme le montrent les résultats, l’amorce universelle peut amplifier la région cible. L’outil de recherche d’alignement local de base (BLAST) démontre que le pourcentage identifié était de 100 %, et l’arbre de jonction de voisinage démontre que les séquences d’épissage ont été regroupées avec le clade A. sinensis OR879715.1 et que la valeur de support de clade est de 100. Ce protocole fournit une référence pour l’application de la technologie du codage à barres de l’ADN comme méthode efficace d’identification des plantes médicinales et des adultérants.

Introduction

Les plantes médicinales ont un large éventail d’effets pharmacologiques et sont des substances importantes pour le traitement et la prévention des maladies. La demande du marché pour les plantes médicinales dans les plantes médicinales et les produits pharmaceutiques est énorme et continue de croître. Avec l’augmentation du marché des plantes médicinales, le problème de la falsification a entravé le développement des plantes médicinales. Actuellement, l’adultération des plantes médicinales souffre des raisons suivantes : 1) la morphologie similaire des plantes médicinales rend difficile leur identification et leur utilisation correctes 1,2,3,4,5, 2) la demande croissante de plantes médicinales a entraîné une offre insuffisante sur le marché 6,7, 3) Les plantes médicinales sont chères et ont des prix fluctuants, et l’utilisation d’herbes bon marché au lieu de matériaux économiquement précieux a conduit à l’adultération et aux profits du marché 8,9. Pour résoudre les problèmes d’identification et d’utilisation correctes des plantes médicinales, il est nécessaire de disposer d’une technologie permettant aux non-spécialistes d’identifier la source10.

Il y a des limites à l’identification et à l’utilisation correctes des plantes médicinales uniquement par leur apparence et leur odeur11. Pour une identification plus précise et un contrôle de la qualité, des méthodes physico-chimiques sont utilisées12. La chromatographie sur couche mince (CCM), par exemple, est une méthode rapide d’identification des plantes médicinales et est incluse dans la pharmacopée chinoise. Néanmoins, il faut des étalons de référence pour identifier les plantes13. La chromatographie liquide à haute performance (HPLC) peut effectuer des tests qualitatifs et quantitatifs, ce qui la rend adaptée aux tests de qualité des médicaments. Cependant, cet instrument est coûteux et nécessite des connaissances spécialisées pour fonctionner14,15. La technologie de codage à barres de l’ADN est une technologie d’identification rapide et précise des espèces qui identifie les espèces en utilisant des séquences d’ADN stables pour différencier les plantes ayant une morphologie similaire. Hebert et al. ont proposé la technologie de codage à barres de l’ADN pour identifier les espèces, qui utilise une séquence d’ADN reconnue et relativement courte dans le génome16, Chen et al. ont proposé ITS2 comme séquence universelle pour l’identification moléculaire des plantes médicinales et ont identifié plus de 6600 plantes et ont trouvé une capacité d’identification élevée17. L’étude des plantes médicinales à partir d’ITS2 et de fragments de gènes de chloroplaste a démontré la capacité de distinguer les espèces au niveau de l’espèce, avec des applications dans les domaines de la protection des ressources, de la régulation des marchés et du commerce international 17,18,19. L’application du codage à barres de l’ADN peut surmonter les limites des méthodes d’identification traditionnelles, ce qui est utile pour garantir la qualité et la sécurité des plantes médicinales, prévenir l’abus des ressources et la confusion20. Il s’est avéré bénéfique pour l’étude des plantes médicinales, soutenant la croissance de l’industrie des plantes de manière durable et garantissant que le consommateur utilise le bon médicament 21,22,23,24.

L’article décrit des protocoles sur la façon d’appliquer le codage à barres de l’ADN pour identifier les plantes médicinales en utilisant A. sinensis comme exemple. Le codage à barres de l’ADN utilise un ou plusieurs marqueurs génétiques courts standardisés dans l’ADN d’un organisme pour le reconnaître comme appartenant à une espèce particulière. Les méthodes actuelles d’identification des plantes médicinales présentent certaines limites. L’identification morphologique traditionnelle repose en grande partie sur la vaste expérience des experts, qui peut être influencée par des facteurs humains, tandis que l’identification chimique est sujette à des problèmes tels que l’adultération de composés clés. En revanche, le codage à barres de l’ADN fournit un moyen plus précis d’identification des espèces, offrant des avantages tels que la vitesse, la reproductibilité élevée et la stabilité. De plus, cette technologie permet une gestion centralisée et le partage des données de séquence d’espèces existantes par le biais d’Internet et de plateformes d’information, ce qui améliore considérablement l’efficacité et la fiabilité de l’identification des espèces11,12. En raison de leur morphologie et de leurs parties médicinales similaires, A. sinensis est souvent confondu avec d’autres espèces et est fréquemment mal utilisé ou intentionnellement substitué sur le marché25. Yang et al. ont identifié A. anomala à l’aide d’un code-barres d’ADN pour le distinguer des faux médicaments26. Yuan et al. ont collecté 23 espèces d’Angelica et ont utilisé le codage à barres de l’ADN pour différencier les différentes espèces27. En suivant les procédures décrites dans ce protocole, les utilisateurs seront en mesure d’authentifier les matériaux médicinaux à base de plantes, du prétraitement à la correspondance finale de la séquence de code-barres avec la base de données de codes-barres (Figure 1).

Protocole

1. Préparation de l’échantillon

  1. La présente étude a utilisé A. sinensis , âgé de deux ans, avec une température basse et un long ensoleillement à une altitude de 2800 m du comté de Min, dans la province du Gansu, comme matériel expérimental. Trois plantes ont été sélectionnées parmi lesquelles plus de trois racines ont été sélectionnées pour l’expérimentation. Rincez d’abord les racines avec de l’eau stérilisée, puis nettoyez-les avec un pulvérisateur d’alcool ou des tampons imbibés d’alcool pour éviter toute contamination qui pourrait affecter la précision des résultats expérimentaux. Coupez les racines en morceaux de moins de 5 mm à l’aide d’un scalpel stérilisé et mélangez pour une analyse plus approfondie. (Figure 2).
    REMARQUE : Vous pouvez également placer les racines dans de l’azote liquide pour qu’elles soient croustillantes, ce qui les rend plus faciles à casser. En fonction de la forme, de la dureté et d’autres caractéristiques des plantes médicinales, utilisez des instruments pour les traiter.
  2. Préparez trois tubes d’échantillons expérimentaux pour des expériences parallèles. Étiquetez chaque échantillon comme AS-1, AS-2 et AS-3. Prenez environ 100 mg de tissu frais ou 20 mg de tissu sec (séché à l’air) et placez-le dans un tube à centrifuger de 2 ml.
  3. Placez deux billes en acier inoxydable de 5 mm dans les tubes à centrifuger de 2 ml. Transférez les tubes dans un broyeur de tissus à haut débit fonctionnant à 60 Hz pendant 60 s.

2 Extraction de l’ADN à partir d’un échantillon

REMARQUE : Cette étude utilise un kit d’extraction d’ADN génomique végétal, basé sur la méthode CTAB. L’extraction de l’ADN est effectuée conformément au manuel d’instructions avec quelques modifications, y compris l’ajout d’un tampon d’isolement nucléaire (NIB) unique. Le protocole améliore la pureté de l’ADN en séparant d’abord les contaminants du tissu, puis en ajoutant une étape initiale d’isolement des noyaux 28,29,30.

  1. Ajouter 800 μL de NIB pré-refroidi et placer l’échantillon sur un mélangeur vortex, en vibrant pendant 5 min.
  2. Placer dans une centrifugeuse et traiter à 13 780 x g pendant 10 min. Retirez le surnageant.
  3. Répétez les étapes 2.1-2.2 pendant 3 tours supplémentaires.
    REMARQUE : NIB extrait de l’ADN de meilleure qualité et sa préparation contient des produits chimiques dangereux qui doivent être manipulés dans une hotte, ce qui le rend plus difficile à manipuler pour les novices. Cependant, cette étape n’est pas obligatoire. Les utilisateurs peuvent choisir de suivre cette recommandation ou d’ignorer ces étapes. Sa formulation détaillée se trouve dans le tableau 1.
  4. Ajouter 600 μL de tampon P1 et 5 μL de RNase A (10 mg/mL). Placez l’échantillon sur un mélangeur vortex et vortex à mélanger. Incuber les échantillons dans un bain-marie à 65 °C pendant 1,5 h, en inversant les tubes 2x-3x pendant l’incubation.
  5. Ajouter 200 μL de tampon P2, bien mélanger, placer sur de la glace pendant 15 min, puis centrifuger à 13 780 x g pendant 10 min.
  6. Aspirez soigneusement le surnageant sur une colonne de filtre AF, centrifugez à 13 780 x g pendant 2 min et transférez le filtrat inférieur recueilli dans le tube de collecte dans un nouveau tube de centrifugation de 1,5 mL.
  7. Calculez le volume de filtrat, ajoutez 1,5 fois le volume de P3 et agitez immédiatement pour obtenir une solution mélangée.
  8. Ajouter 650 μL du mélange préparé dans une colonne d’adsorption et incuber pendant 5 min, puis centrifuger à 13 780 x g pendant 30 à 60 s.
  9. Ajouter à nouveau le filtrat obtenu à l’étape 2.8 dans le CA, centrifuger et jeter les déchets liquides. Répétez la procédure avec le reste de la solution mélangée de l’étape 2.7.
  10. Ajouter 600 μL de solution de rinçage WB, centrifuger à 13 780 x g pendant 30 s, jeter la solution de déchets et répéter la procédure 1 fois.
  11. Remettez la colonne AC dans le tube de collecte vide, centrifugez à 13 780 x g pendant 2 min et laissez à température ambiante pour éliminer l’éthanol résiduel.
  12. Prenez la colonne d’adsorbant AC et placez-la dans un tube à centrifuger propre de 1,5 ml. Ajoutez 45 μL d’eau désionisée stérilisée (ddH2O) au milieu de la membrane adsorbante, qui a été chauffée à 65 °C. Laisser à température ambiante pendant 5 min. Centrifugeuse à 13 780 x g pendant 2 min.
  13. Ajouter la solution obtenue dans la colonne et centrifuger à 13 780 x g pendant 2 min à température ambiante.
  14. Récupérez la solution filtrée. Utiliser un spectrophotomètre pour déterminer la concentration d’ADN ; OD260 représente l’absorbance des acides nucléiques. Utilisez les critères suivants pour la norme de détermination de la qualité de l’ADN : OD260/OD280 = 1,80-2,00, la plage normale ; OD260/OD280>2.00 ; il y a une grande quantité de contamination par l’ARN ; OD260/OD280<1.80, il y a des protéines, des phénols et d’autres contaminants.

3 Amplification et détection de fragments cibles

REMARQUE : Choisir les amorces d’amplification appropriées en fonction des régions de codage à barres de l’ADN proposées par la plante ; Les conditions de réaction sont indiquées dans le tableau 2.

  1. Configurer les conditions de réaction correspondant à l’amplification de l’amorce. Utilisez des tubes à centrifuger de 0,2 ml remplis de 9,5 μL de ddH2O, 12,5 μL de 2x PCR Master Mix et 1 μL d’amorce directe, d’amorce inverse et d’ADN de matrice pour un volume total de 25 μL. Préparez un témoin négatif en remplaçant la matrice par de l’eau.
  2. Ajouter 20 ml de 1 tampon Tris Acétate-EDTA (TEA) et 0,2 g d’agarose à chauffer et préparer un gel d’agarose à 1 %, puis ajouter 2 μL de colorant de gel d’acide nucléique (10 000x) et bien mélanger. Versez le mélange dans un plateau de coulée de gel et laissez-le se solidifier pour obtenir le gel d’agarose. Ajouter 3 μL du produit PCR et 2 μL de marqueur ADN 5000 pb dans le gel.
  3. Réglez la tension à 120 V, le courant à 400 mA et l’électrophorèse pendant 40 min. Utilisez un système d’analyse d’images de gel polyvalent pour visualiser les gels et vérifier les résultats.

4. Collecte et analyse des données

REMARQUE : Il existe une large gamme de logiciels d’assemblage et d’analyse de séquences ; nous utilisons le code Codon Aligner V11.0.1 et MEGA11 comme exemples pour l’illustration.

  1. Utilisez l’aligneur pour ouvrir le fichier de séquençage afin d’observer la carte de pic et d’épisser les fichiers de carte de pic de séquençage bidirectionnels.
    1. Sélectionnez Créer un nouveau projet et cliquez sur OK pour accéder à la page d’accueil du logiciel. Sélectionnez Ajouter des échantillons dans le menu Fichier, sélectionnez le fichier à traiter au format de suivi de séquence et importez-le directement dans le logiciel en tant que fichier importé dans Échantillons non assemblés.
    2. Choisissez Contig, puis, dans la section, choisissez Assemblage avancé, puis choisissez Assembler en groupes. Les nouveaux utilisateurs, après avoir sélectionné Assembler en groupes, verront la boîte de dialogue suivante : Choisissez Définir les noms. Modifiez le nom de l’échantillon des pièces en fonction du nom du fichier et cliquez sur Assembler. La séquence alignée s’affiche.
    3. Récupérez les séquences ITS2 complètes selon l’analyse de modèle basée sur le modèle de Markov caché (HMM). Utilisez les séquences 5.8s (CGAGGGCACGCCTGCCTGGGCGTCA) et 28s (CGACCCCAGGTCAGGCAGGCGGGGGGCCACC)31 pour rechercher la séquence alignée depuis le début afin de supprimer les régions 5.8s et 28s.
    4. Sélectionnez OK, puis, dans la section, sélectionnez Séquence de recherche et cliquez sur OK pour obtenir la séquence correspondante. Choisissez Contig, choisissez Supprimer dans la section pour supprimer les régions 5.8s et 28s et les séquences de faible qualité, puis le logiciel affichera les séquences d’épissage pour la correspondance.
  2. Utilisez les séquences d’épissage obtenues à partir des trois étapes expérimentales parallèles pour l’identification, sélectionnez la recherche BLAST à l’aide de la base de données de nucléotides du National Center for Biotechnology Information (NCBI), puis sélectionnez l’outil d’identification des espèces et l’introduction spécifique ITS2 correspondant dans la base de données GPGD (Global Pharmacopoeia Genome Database).
    REMARQUE : NCBI32 et GPGD33 incluent les séquences nucléotidiques des plantes et des animaux médicinaux et sont reconnues comme des bases de données faisant autorité. Leurs principales méthodes d’identification sont les méthodes basées sur la comparaison de séquences34 (BLAST). Le pourcentage d’identité à partir des résultats de l’identité est utilisé pour déterminer si l’espèce présentant la plus grande similitude est le genre cible.
  3. Utilisez MEGA11 pour l’alignement des séquences, analysez et comparez les variations de séquences intraspécifiques et interspécifiques, et construisez un arbre phylogénétique de jonction de voisins.
    1. Téléchargez les séquences de trois espèces d’Angelica et d’une espèce de Peucedanum praeruptorum en tant qu’exogroupe du NCBI. Analysez ces séquences avec la séquence de résultat obtenue.
    2. Cliquez sur Fichier, choisissez Ouvrir un fichier/une session pour importer le fichier, et une boîte de dialogue apparaîtra. Choisissez Aligner > ADN, puis sélectionnez Aligner par ClustalW pour la comparaison de séquences. Choisissez Analyse phylogénétique dans les données, puis revenez à la page d’accueil. Cliquez sur Construire/Tester l’arbre de jonction de voisins dans PHYLOGÉNIE. Le logiciel génère un arbre phylogénétique.

Résultats

Qualité de l’ADN de l’échantillon

La plage des rapports d’absorbance OD260/OD280 était de 1,80 à 1,84. La quantité d’ADN mesurée par spectrophotomètre pour chaque échantillon était supérieure à 100 ng/μL (tableau 3), ce qui indique une bonne qualité d’extraction de l’ADN de l’échantillon. Cela indique que les échantillons n’ont pas été contaminés par des protéines, de l’ARN ou des réactifs pendant le processus d’extraction et qu’ils étaient de bonne qualité et adaptés à l’amplification par PCR en aval.

Analyse PCR

Une électrophorèse sur gel a été réalisée sur le produit PCR des trois échantillons expérimentaux parallèles. La configuration était la suivante : marqueur, échantillons 1-3 (AS-1, AS-2, AS-3) et témoin négatif (0), comme le montre la figure 3. Les tailles de AS-1, AS-2 et AS-3 sont toutes comprises entre 500 pb avec des bandes simples, brillantes et claires, et il n’y a pas de bandes dans le 0, indiquant que l’ADN extrait a été amplifié à 500 pb à l’aide des amorces ITS2.

Comparaison des résultats de séquençage dans les bases de données

Les résultats du séquençage ont permis d’identifier A. sinensis avec une similitude de séquence de 100 % en combinant les résultats d’identification BLAST de la base de données NCBI, qui sont les mêmes que les résultats d’identification des espèces de la base de données GPGD (tableau 4). Le résultat BLAST a été déterminé à l’aide du score d’identité en pourcentage le plus élevé et de la valeur e la plus faible. L’identification d’une espèce a été considérée comme réussie lorsque le pourcentage maximal d’identité le plus élevé incluait une seule espèce et que la note était de >99 %. Si un score est ≤ 99 %, vérifiez la qualité du fichier de séquençage ou si le produit PCR n’est pas contaminé.

Analyse phylogénétique basée sur l’arbre de l’identification des espèces

Les résultats ont montré que dans l’arbre phylogénétique construit du New Jersey, les quatre espèces étaient regroupées dans des clades distincts, et que le P. praeruptorum en tant qu’exogroupe était séparé des clades Angelica . Les séquences d’épissage ont été regroupées avec le clade A . sinensis OR879715.1, et la valeur de support du clade (bootstrap) était de 100, puis les deux autres espèces, A. dahurica et A. cartilaginomarginata ont été regroupées dans un clade distinct, prouvant ainsi que les séquences d’épissage étaient A. sinensis (Figure 4).

figure-results-1
Figure 1 : Organigramme d’identification des espèces de plantes médicinales. (A) Usine de traitement, extraction de l’ADN et séquençage des plantes médicinales, (B) comparaison des séquences d’espèces à l’aide de bases de données, et (C) utilisation d’arbres phylogénétiques pour la validation taxonomique afin de confirmer les relations phylogénétiques entre les espèces. Veuillez cliquer ici pour voir une version agrandie de cette figure.

figure-results-2
Figure 2 : Flux de travail d’extraction de l’ADN des plantes médicinales. (A) Au total, 6 étapes sont impliquées dans l’extraction de l’ADN des plantes médicinales. (B) Amplification de l’instrument PCR et processus de cyclage PCR. (C) Électrophorèse. (D) Le séquençage de Sanger et le chromatogramme de séquençage. Veuillez cliquer ici pour voir une version agrandie de cette figure.

figure-results-3
Figure 3 : Électrophorèse sur gel d’Angelica sinensis (Oliv.) Diels. En utilisant le marqueur d’ADN DL5000 comme marqueur moléculaire, AS-1, AS-2 et AS-3 sont utilisés comme échantillons, et 0 comme groupe témoin. Une électrophorèse sur gel a été réalisée et les résultats ont montré que les échantillons AS-1, AS-2 et AS-3 avaient tous des bandes à 500 pb, tandis que le témoin n’en présentait aucune. Veuillez cliquer ici pour voir une version agrandie de cette figure.

figure-results-4
Figure 4 : Arbre phylogénétique Neighbor-Joining créé à partir de 13 séquences. Au total, 10 séquences de quatre espèces végétales ont été téléchargées à partir de la base de données du NCBI, et les séquences d’épissage ont été comparées pour analyser et comparer la variation des séquences intraspécifiques et interspécifiques et pour construire des arbres phylogénétiques reliant les voisins. Veuillez cliquer ici pour voir une version agrandie de cette figure.

Nom du matériau/de l’équipementdose
Polyvinyle pyrrolidone10 grammes
Tris-HCl1 M 50 mL
Acide éthylènediaminetétraacétique0,5 M 20 mL
NaCl20,45 grammes
β-mercaptoéthanol10 ml
Eau déminéralisée stérilisée500 ml

Tableau 1 : Réactifs de formulation du tampon d’isolement nucléaire.

Code-barresAmorceSéquence d’amorçage (5'-3')Séquençage par amplification PCR
ITS2R :3RGACGCTTCTCCAGACTACAAT94°C5 minutes
94°CAnnées 3040cycles
56°CAnnées 30
F :2FATGCGATACTTGGTGTGAAT72°C45 secondes
72°C10 minutes

Tableau 2 : Amorces de code-barres d’ADN et conditions de réaction PCR.

ÉchantillonsExtraction de l’ADN (ng/μL)OD260/OD280
AS-11241.84
AS-21841.81
AS-31641.82

Tableau 3 : Angelica sinensis (Oliv.) Diels a extrait la qualité de l’ADN.

ÉchantillonsLongueur de la séquence alignée (bp)Séquence d’épissage Longueur (bp)GC(%)NCBI :Pourcentage de BLAST(%)GPGD :Pourcentage d’identification des espèces (%)
AS-1500 points de base229 points de base55.50%100%100%
AS-2504 pb229 points de base55.50%100%100%
AS-3499 points de base229 points de base55.50%100%100%

Tableau 4 : Comparaison des résultats de séquençage dans les bases de données.

Discussion

La technologie d’identification moléculaire est plus facile à apprendre et à maîtriser que les méthodes d’identification traditionnelles. Il surmonte les limites de l’identification traditionnelle des plantes médicinales, car il n’est pas affecté par le stade de croissance de la plante et ne repose pas sur un jugement subjectif ou l’accumulation d’une expertise spécialisée35. D’autres espèces sont confondues avec A. sinensis en raison de sa morphologie et de ses parties médicinales similaires, mais avec l’utilisation du code-barres de l’ADN, il peut être définitivement identifié36.

Les étapes clés de ce protocole impliquent plusieurs considérations essentielles. Tout d’abord, il est essentiel d’éviter la contamination lors de la manipulation des herbes et de l’extraction de l’ADN pour éviter que l’ADN étranger ou les impuretés ne compromettent les résultats. Un nettoyage approprié des échantillons est nécessaire pour éliminer les contaminants externes, tandis qu’une pulvérisation complète améliore l’extraction de l’ADN en augmentant la surface d’interaction des réactifs. Il est également important d’utiliser une quantité appropriée d’échantillon pour assurer un mélange efficace avec les réactifs, ce qui permet une meilleure cytolyse et une meilleure libération de l’ADN. Enfin, le contrôle du temps du bain-marie est crucial, car un chauffage excessif peut entraîner une dégradation de l’ADN, affectant la qualité de l’ADN extrait. Ensemble, ces étapes garantissent l’extraction réussie d’un ADN de haute qualité pour l’analyse.

Les plantes médicinales contiennent des polysaccharides et des polyphénols qui affectent l’extraction et l’amplification de l’ADN. L’utilisation d’un tampon d’isolement nucléaire réduit l’effet de ces substances et permet la lyse des noyaux, ce qui permet une meilleure extraction de l’ADNg de haute pureté 28,29,30. Actuellement, il existe trois méthodes principales d’extraction de l’ADN : la méthode de la colonne centrifuge, la méthode CTAB et la méthode SDS. Cependant, cette étude a choisi la méthode de la colonne centrifuge pour les expériences en raison de sa stabilité, de sa simplicité, de son efficacité et de sa capacité à extraire de fortes concentrations d’ADN37, et le chauffage du tampon d’élution peut aider à éluer l’ADN avec une meilleure qualité. Ici, cette étude a choisi des amorces spécifiques à ITS217,38, la séquence courte ITS2 sert d’étiquette de séquence taxonomique efficace par rapport aux autres amorces39, qui ont une forte variation interspécifique et une gamme plus large d’identifications. La raison possible de l’échec de l’amplification est la dégradation de l’ADN dans certains échantillons ; une autre possibilité est que la paire d’amorces universelles ITS2 utilisée peut ne pas fonctionner pour certaines espèces ou en utilisant l’ensemble alternatif d’amorces universelles40. Le résultat BLAST a été déterminé à l’aide du score d’identité en pourcentage le plus élevé et de la valeur e la plus faible. L’identification des espèces a été considérée comme réussie lorsque le pourcentage maximal d’identité le plus élevé incluait une seule espèce et a obtenu un score de >99 %40,41, pour le score ≤99 %, vérifiez la qualité du fichier de séquençage ou si le produit PCR est contaminé.

En résumé, le codage à barres de l’ADN devrait jouer un rôle clé dans le contrôle de la qualité de la phytothérapie traditionnelle et du commerce international des herbes. Cet article fournit quelques informations sur l’extraction de l’ADN des plantes et un guide détaillé sur l’utilisation de la technologie de codage à barres de l’ADN pour identifier les plantes médicinales. Il met en évidence les points clés à noter lors du processus expérimental. Ainsi, cet article fournit des références pour l’identification de base des plantes et aide davantage de personnes à maîtriser rapidement la technologie. Cependant, dans des cas particuliers où l’efficacité de l’identification par code-barres à locus unique est insuffisante, cela dépend de la bibliothèque de référence. La construction d’une bibliothèque de référence avec une couverture élevée des espèces serait une étape majeure vers l’identification des espèces à l’aide de codes-barres d’ADN42, et de nombreux chercheurs ont proposé que la technologie de codage à barres multi-locus puisse améliorer l’efficacité 43,44. De plus, avec le développement de la technologie moléculaire, Zheng et al. ont combiné la technologie de codage à barres de l’ADN avec la technologie d’amplification isotherme de l’ADN et la détection RPA-LFD pour authentifier rapidement les plantes toxiques45 et certains kits prêts à l’emploi ont également été développés46. La base de données de codes-barres ADN s’améliore constamment, ce qui joue un rôle important dans la promotion de la généralisation, de la normalisation et de l’internationalisation des méthodes d’identification de la phytothérapie.

Déclarations de divulgation

Les auteurs déclarent que la recherche a été menée en l’absence de toute relation commerciale ou financière qui pourrait être interprétée comme un conflit d’intérêts potentiel.

Remerciements

Ce travail a été soutenu par la personne talentueuse recherche scientifique commencer fonds projet de subvention de l’Université de médecine traditionnelle chinoise de Chengdu (030040015).

Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
CTAB Kit d’extraction rapide d’ADN génomique végétalShanghai Huiling Biotechnology Co.NG411MConvient pour l’extraction rapide d’ADN génomique de haute qualité à partir de différents tissus d’une large gamme de plantes
DL5000 Marqueurd’ADN Nanjing vazyme Bio-technology Co.MD102-02Produit prêt à l’emploi, prélever une quantité appropriée de ce produit directement pour l’électrophorèse lors de l’application du gel.
ÉlectrophorèseBeijing Liuyi Biotechnology Co.DYY-6CAdoptez la conception de l’écran tactile, peut afficher la tension définie, le courant défini en même temps, la sortie parallèle
Acide éthylènediaminetétraacétiqueBeijingpsaitongBiotechnologyCo., LtdE70015-100Gréactifs de formulation de tampon d’isolation nucléaire.
Coloration au gel d’acide nucléique Goldview (10 000&fois ;)Yisheng Biotechnology (Shanghai) Co., Ltd10201ES03Lors de l’utilisation de l’électrophorèse sur gel d’agarose pour détecter l’ADN, celui-ci se lie à l’ADN et produit un fort signal fluorescent.
Centrifugeuse de table à grande vitesseChangsha Zone de développement industriel de haute technologie Xiangyi Centrifuge Instrument Co.H1650Pour une séparation rapide et efficace des échantillons, cette centrifugeuse compacte et légère offre une sécurité fiable
Broyeur de tissus à haut débitShanghai Jingxin Industrial Development Co.Tiss-48Un instrument de vibration à haute fréquence pour le broyage
d’échantillons http://www.gpgenome.com/Institut de matière médicale chinoise, Académie chinoise des sciences médicales chinoises-HerbLabase de données comprend des séquences génomiques, des ensembles de gènes, des génomes d’organites, des données génomiques à faible couverture et des séquences de codes-barres d’ADN.
https://www.ncbi.nlm.nih.gov/Bibliothèque nationale de médecine des États-Unis-Le National Center for Biotechnology Information fait progresser la science et la santé en fournissant un accès à des informations biomédicales et génomiques.
Kylin-BellHaimen Qilinbel Instrument Manufacturing Co.VORTEX-5Mélange rapide sous la forme d’un vortex à grande vitesse, vitesse de mélange, uniformité, minutie
LifeTouchHangzhou BORI Technology Co.TC-96/G/H(b)BAdoption de la technologie de réfrigération thermoélectrique avancée et de la technologie TAS nouvellement créée pour améliorer ses performances globales
Système d’analyse d’images de gel multifonctionnelCentre d’opérations du sud-ouest de Shanghai Tianneng Life Science Co.Tanon-Mini Space 2000Effectue des expériences rapides d’amplification génique avec une fonction de gradient pour cartographier les conditions d’amplification et une plage de température de gradient allant jusqu’à 30° ; C
NaClBeijing Solarbio Science& Technology Co., Ltd.S8210-100Réactifs de formulation de tampon d’isolement nucléaire.
Nanodrop OneGenes Ltd.Quantifiezdes échantillons d’ADN, d’ARN et de protéines en quelques secondes avec seulement 1-2 & micro ; L de l’échantillon Polyvinyle
pyrrolidoneShanghai yuanye Bio-Technology Co., LtdS30268-500gréactifs de formulation de tampon d’isolement nucléaire.
Machine à glaçons en flocon de neigeShanghai Zhixin Experimental Instrument Technology Co.ZX-60XAdoption de la méthode de fabrication de glace par extrusion rotative, vitesse de fabrication de glace rapide et haute efficacité de la production de glace
Perles en acier inoxydable pour homogénéisateur de tissusBeyotime Biotechnology.  ;F6623Équipement pour le broyage et le mélange de tissus et d’autres échantillons par vibration
Tampon Tris Acétate-EDTABeyotime Biotech IncST716TAE est un tampon couramment utilisé pour l’électrophorèse de l’ADN, fréquemment utilisé dans l’électrophorèse sur gel d’agarose.
Tris-HClBeijing Solarbio Science& Technology Co., Ltd.T8230Réactifs de formulation de tampon d’isolement nucléaire.
Bouilloire à bain d’eauShanghai Senxin Experimental Instrument Co.DK-8DThermostat précis et régulation de la température, contrôle précis et fiable de la température
&beta ;-mercaptoethanolShanghai Eon Chemical Technology Co.R054186-100ml  ;   ;Réactifs de formulation de tampon d’isolement nucléaire.

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