Cet article explique un nouveau modèle animal conçu pour tester les matériaux de greffe sous-urétrale. Dans ce modèle, une bande en maille est implantée à travers une incision vaginale chez les brebis, et les animaux sont observés sur une période de trois mois. Ce modèle est essentiel car il jette les bases de la recherche expérimentale sur les greffons.
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Article de méthode
Une nouvelle technique chirurgicale dans un modèle de mouton pour l’implantation d’une greffe sous-urétrale
Dans cet article
Résumé
Résumé
Les bandes en maille de polypropylène sous-urétrale pour les femmes ont d’abord été introduites dans la pratique clinique pour le traitement de l’incontinence urinaire à l’effort sans être testées sur un modèle animal approprié. L’objectif de ce travail a été d’établir et d’évaluer un modèle animal approprié pour l’évaluation des greffes de bande sous-urétrale. En tenant compte des similitudes anatomiques entre les brebis et les femmes et en reconnaissant les différences inévitables de posture, mais en reconnaissant les travaux antérieurs, ce rapport présente une description étape par étape de la chirurgie impliquée dans un modèle animal qui simule l’implantation de matériaux de support pour traiter l’incontinence urinaire à l’effort chez les femmes. Sept brebis d’un poids moyen de 27,7 écart-type 5,1 kg ont été opérées. Dans la position de lithotomie, une incision ventrale de la paroi vaginale a été pratiquée. Chez cinq animaux, à l’aide d’un introducteur, un implant en polyuréthane a été placé sous l’urètre et fixé avec des sutures résorbables. L’incision a été fermée et une compresse vaginale à la bétadine a été placée après 24 heures. Deux animaux ont reçu un treillis transvaginal en polypropylène en utilisant des étapes chirurgicales similaires, mais sans sutures de fixation. Après l’opération, tous les animaux ont uriné librement et ont eu des selles régulières. Aucun animal n’a montré de signes d’érosion vaginale ou d’infection du greffon au cours du suivi de trois mois. Ce grand modèle animal reproduit fidèlement la technique chirurgicale utilisée chez les femmes, fournissant ainsi une plate-forme précieuse pour l’évaluation de nouveaux matériaux pour le traitement de l’incontinence urinaire à l’effort.
Introduction
L’incontinence urinaire à l’effort (IUE) touche 26 % des femmes dans une étude de prévalence aux États-Unis. De plus, 16 % plus de femmes souffrent à la fois d’incontinence d’effort et d’incontinence d’urgence1. La bande vaginale sans tension a évolué comme un traitement chirurgical moins morbide pour l’IUE associé à un taux de réussite comparable et à une récupération plus rapide que la colposuspension de référence 2,3. Cependant, les rubans en polypropylène (PP) sous-urétral ont été introduits sans test dans un modèle animal pertinent, ce qui a entraîné des réactions indésirables 4,5. Au cours des dernières années, des complications importantes ont été signalées à la suite de l’utilisation de polypropylène qui ne sont pas liées à la technique chirurgicale et que l’on pense être liées à une réaction tissulaire au matériau lui-même, y compris l’érosion du maillage par le vagin, la douleur chronique et l’infection6. Les complications chirurgicales les plus fréquemment signalées comprenaient la perforation de la vessie, la rétention urinaire et les saignements 6,7.
Près de 100 produits ont été développés pour l’application d’implantation chirurgicale génito-urinaire8. Des préoccupations majeures ont été identifiées concernant l’implantation de treillis pour le traitement du prolapsus des organes pelviens 6,7. Il y a une forte incidence de prolapsus spontané du plancher pelvien chez les brebis et, sur cette base, un modèle de mouton pour le prolapsus des organes pelviens chez les femmes a été préconisé et a démontré une érosion du greffon 9,10,11. Des travaux scientifiques fondamentaux récents ont renforcé la suggestion selon laquelle la réaction tissulaire au polypropylène pourrait jouer un rôle important dans le développement de complications indésirables avec ce matériau12. Des études animales génériques ont examiné la réaction tissulaire de la paroi abdominale de petits animaux à un treillis en PP après l’implantation13,14. Parce que ces modèles ne reproduisent pas l’environnement anatomique de l’implantation du treillis en chirurgie humaine, un modèle de mouton - présentant des parallèles anatomiques avec la chirurgie humaine - a été évalué. Ce modèle s’est avéré efficace dans l’évaluation de nouveaux matériaux d’implants pour la chirurgie du prolapsus des organes pelviens, en plaçant le greffon entre le rectum et le vagin 9,10,11.
Plus récemment, des travaux contemporains reproduisant la technique rétropubienne transvaginale utilisée dans la chirurgie de l’IUE humaine ont rapporté une approche descendante pour l’insertion de ruban chez trois brebis15. Un rapport récent des auteurs a mis en évidence la polyvalence de ce modèle, démontrant qu’il convient à la fois à une approche d’insertion rétrograde (ascendante) à l’aide du dispositif TVT et à une approche descendante pour l’insertion de polypropylène avec le dispositif TVT et un nouveau matériau fabriqué à partir de polyuréthane16. Cet article accompagné d’une vidéo décrit en détail la préparation et l’utilisation de ce modèle de mouton pour l’insertion à la fois du polypropylène à l’aide du dispositif TVT et du nouveau matériau innovant en utilisant l’approche ascendante. La technique d’insertion TVT est, comme indiqué précédemment,3. Le polyuréthane est inséré monté sur un introducteur d’aiguille et passé d’une incision de la paroi vaginale antérieure vers le haut dans l’espace rétropubien, reproduisant le chemin de bas en haut utilisé pour l’insertion de TVT.
Pour valider le modèle, la faisabilité de la création d’un plan chirurgical entre l’urètre et le vagin a été évaluée, avec une attention particulière pour éviter de blesser l’une ou l’autre structure. Les complications pelviennes et intra-abdominales potentielles associées au passage du ruban guidé par aiguille ont également été évaluées. De plus, cette étude examine une nouvelle greffe de polyuréthane électrofilée, qui n’avait jamais été testée auparavant pour l’implantation sous-urétrale, et compare sa réponse tissulaire et sa biocompatibilité à celles d’un treillis en polypropylène conventionnel trois mois après l’opération.
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Protocole
Le comité d’examen institutionnel (CEI) de l’hôpital et le comité de protection et d’utilisation des animaux ont examiné et approuvé le protocole (numéro d’approbation éthique : 2230017). Cette approbation est conforme aux principes internationalement acceptés des techniques expérimentales sans cruauté. Toutes les procédures et les soins postopératoires ont été effectués dans un établissement accrédité par l’Association for Assessment and Accreditation of Laboratory Animal Care (AAALAC).
Assurez-vous que des vétérinaires qualifiés effectuent toujours la prise en charge médicale et l’anesthésie.
1. Préparation des animaux et anesthésie
- Dans la salle préopératoire, administrez une fois au sulfate d’atropine de mouton 0,02-0,05 mg/kg I.M. pour l’induction de l’anesthésie.
- Administrer l’analgésique carprofène à une dose de 2-5 mg/kg SC.
- Rasez la peau autour du bas-ventre et de l’intérieur des cuisses à l’aide d’une tondeuse à cheveux.
- Induire l’anesthésie à l’aide de propofol 2-4 mg/kg IV au besoin et de kétamine 10-12 mg/kg I.M. une fois.
- Insérez une sonde endotrachéale de 7 mm de diamètre sous vision directe à l’aide d’un laryngoscope et connectez la sonde à un ventilateur mécanique. Utilisez une anesthésie par inhalation d’oxygène et d’isoflurane, 5 % pour l’induction et 2 à 3 % pour l’entretien tout au long de la procédure. Vérifiez le bon placement de la sonde endotrachéale, auscultez la poitrine et l’abdomen pendant l’inspiration et observez le mouvement de la paroi thoracique.
- Placez un oxymètre de pouls sous la surface de la langue et fixez-le avec du ruban adhésif.
- Observez le tonus de la mâchoire pour détecter la flaccidité afin de surveiller la profondeur de l’anesthésie. La flaccidité complète signifie une anesthésie profonde, et la spasticité de la mâchoire signifie que l’animal se réveille. Surveillez l’appareil d’anesthésie pour détecter les changements de fréquence du pouls et de saturation en oxygène par rapport à la ligne de base.
REMARQUE : Une augmentation de 10 % du pouls ou une baisse de la saturation en oxygène suggèrent que l’animal se ranime après une anesthésie profonde, ce qui nécessite un ajustement de la posologie de l’anesthésique. Vérifiez les réflexes profonds toutes les 15 minutes en pinçant l’oreille. Augmentez la dose d’anesthésique lors de la récupération d’une anesthésie profonde.
2. Préparation de la peau et drapage
- Effectuer toutes les interventions chirurgicales dans des conditions stériles.
- Placez l’animal en décubitus dorsal. Frottez la peau de la paroi abdominale inférieure, du périnée et du vagin avec une solution à 7,5 % de povidone iodée. Ensuite, séchez la peau avec une serviette absorbante stérile.
- Administrer la céfazoline sodique 25 mg/kg IV au moment de l’induction de l’anesthésie. Ensuite, drapez l’animal avec des champs chirurgicaux stériles, exposant le périnée.
- Insérez un cathéter de Foley urétral 12 français pour le drainage de la vessie. (Figure 1A).
3. Implantation d’un treillis en polyuréthane électrofilé
- Inciser la paroi vaginale ventrale longitudinalement (Figure 1B). Développer l’espace entre la paroi vaginale et l’urètre par dissection latérale à l’aide des ciseaux Metzenbaum16.
- À travers l’incision de la paroi vaginale antérieure, insérez les lames de ciseaux fermées, dirigez-les vers la paroi latérale pelvienne d’un côté, ouvrez les lames, puis retirez-les.
- Répétez la procédure plusieurs fois jusqu’à ce que l’espace créé puisse admettre l’index dans l’espace rétropubien (Figure 1C, D). Répétez la dissection du côté opposé16.
- Utilisez l’implant en polyuréthane électrofilé chez cinq brebis adultes multipares en bonne santé. (Table des matériaux).
- Enfilez une suture monofilament en polypropylène sur une aiguille arrondie à pointe conique de 36 mm à travers le trou de suture latéral aux deux extrémités de l’implant.
- Passer les sutures par voie crânienne à travers les tissus rétropubiens à l’aide d’une aiguille introductrice (Figure 1E)16.
- Identifiez l’extrémité de l’introducteur au niveau de la paroi abdominale antérieure, faites-la sortir par une incision transversale de cinq mm de la paroi abdominale antérieure et retirez la suture.
- Placez deux sutures résorbables supplémentaires à travers les deux trous latéraux de l’implant pour le fixer en position (Figure 1F)16. Tirez l’implant par voie crânienne avec les sutures en polypropylène, placez-le sous l’urètre et attachez les sutures (Figure 1G)16. Attachez les extrémités abdominales des sutures en polypropylène ensemble et fermez la peau sur les extrémités à l’aide de sutures résorbables 3-0.
- Fermez la paroi vaginale antérieure à l’aide de sutures résorbables 2-0 (Figure 1H)16. Utilisez des sutures interrompues et la technique du nœud chirurgical.
- Retirez le cathéter. Placez une compresse vaginale de bétadine et retirez-la après 24 heures.
4. Implantation de bande de polypropylène
- Utilisez un implant de ruban transvaginal en polypropylène dans le deuxième groupe d’animaux, composé de deux brebis adultes multipares en bonne santé (Table des matériaux).
- Inciser la paroi vaginale ventrale longitudinalement. Développer l’espace entre la paroi vaginale et l’urètre avec dissection latérale rétropubienne.
- Fixez le ruban adhésif et sa gaine de protection à l’introducteur dédié au produit. Passez l’introducteur par voie crânienne via les tissus rétropubiens (Figure 2A). Identifiez l’extrémité de l’introducteur au niveau de la paroi abdominale antérieure et faites-la sortir par une incision transversale de cinq mm de la paroi abdominale antérieure. Livrez le ruban en polypropylène.
- Tirez le ruban vers le crâne et laissez-le reposer sous l’urètre (Figure 2B). Coupez le repère central du ruban adhésif pour libérer les gaines de protection. Retirez les gaines de protection de l’extrémité abdominale et jetez-les. Ne fixez pas le ruban avec des sutures, car il est auto-fixant. Coupez les extrémités abdominales du ruban et couvrez-les avec un fermoir cutané.
- Fermez la paroi vaginale antérieure avec des sutures résorbables 2-0. Utilisez des sutures interrompues et la technique du nœud chirurgical.
5. Protocole postopératoire
- En postopératoire, observez les animaux pour détecter les douleurs et les complications et laissez-leur accéder à l’eau et à la nourriture à volonté.
- Administrer des analgésiques à partir de huit heures après la dose préopératoire : carprofène 2-5 mg/kg SC toutes les 8 à 12 heures au besoin pendant trois jours postopératoires.
- Une fois complètement rétablis, hébergez les moutons ensemble et laissez-les se déplacer librement. Observez les animaux quotidiennement, traitez tout signe de douleur ou de détresse ou procédez à l’euthanasie.
6. Point final
- Suivez les animaux pendant trois mois et effectuez un prélèvement de tissus sous anesthésie générale pour une analyse histopathologique.
- Examinez le vagin sous anesthésie générale à l’aide d’un écarteur auto-rétentif pour rechercher des signes d’érosion ou de déformation anatomique grossière.
- Identifiez et excisez le greffon avec les tissus environnants et conservez-le dans du formol à 10 % pour l’examen histopathologique.
- Sous anesthésie générale, administrer une dose suffisante d’anesthésique IV pour l’euthanasie ou suivre la méthode d’euthanasie approuvée dans le protocole animal par l’établissement.
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Résultats
Sept brebis d’un poids moyen de 27,7 ET 5,1 kg ont subi une intervention chirurgicale (tableau 1). Les figures 1 et 2 montrent l’intervention chirurgicale. Il n’y a eu aucune complication ou morbidité directement attribuable à l’intervention chirurgicale. Tous les animaux ont toléré la chirurgie et ont présenté un comportement alimentaire normal, des selles et des mictions dans les jours postopératoires suivants. Il n’y a pas eu de saignement vaginal après le retrait du paquet. Tous les ...
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Discussion
L’étape critique de l’étude actuelle consiste à disséquer un plan entre le vagin et l’urètre, à développer un passage rétropubien, à guider un greffon monté sur un trocart crânien à travers ce plan et à poser le greffon en position sous-urétrale. Ce modèle animal simule efficacement l’implantation d’un treillis sous-urétral chez les femmes, ce qui en fait un outil unique pour l’expérimentation chirurgicale 2,16. Bien qu’il y ait ...
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Déclarations de divulgation
Les auteurs ne déclarent aucun conflit d’intérêts en relation avec cette publication.
Remerciements
Les auteurs remercient Mme Sahar Salem, assistante de recherche, pour sa précieuse participation aux procédures chirurgicales.
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Matériaux
| Nom | Entreprise | Numéro de catalogue | Commentaires |
|---|---|---|---|
| Advantage Fit Blue System (ruban en polypropylène) | Boston Scientific Corporation 300 Boston Scientific Way Marlborough, MA 01752 | M0068502120 ; | Diamètre de l’aiguille : 2,7 mm, Épaisseur de la maille : 0,66 mm, Taille des pores : 1182 &mu ; m, Taille de la fibre (diamètre) : 0,15 mm |
| COVIDIEN Nellcor MAXA | Covidien Medtronic, Siège opérationnel 710 Medtronic Parkway, Minneapolis, MN 55432-5640 États-Unis | Oxymètre de pouls | |
| COVIDIEN Shiley Hi-Lo Tube trachéal oral/nasal | Covidien Medtronic, Siège opérationnel 710 Medtronic Parkway, Minneapolis, MN 55432-5640 États-Unis | Tube endotriacheal 7 mm ID | |
| Drager Fabius | Draeger Arabia Co.Ltd. Case postale 365642. Riyad 11393 Royaume d’Arabie saoudite. | Appareil d’anesthésie et moniteurs, moniteur Siemens SC 7000, vaporisateurs, débitmètres pour l’oxygène, l’air et le protoxyde d’azote. | |
| Implant fascio-mimétique en polyuréthane électrofilé | Université de Sheffield, Sheffield, Royaume-Uni. | NA | Matériau greffé en forme de ruban. |
| Suture en polypropylène ; | Johnson & Johnson Medical N.V., Belgique | V8015 | 2.0 suture sur aiguille arrondie |
| Pack de procédure stérile | Arabian Medical Manufacturing Company , P.O. Box 355033, Riyadh, 11383, Arabie Saoudite | CPT-01000-022 | Plateau de povidone iodé, comprend Povidone iode 7,5 % 120 ml, Povidone iode 10 % 120 ml, éponges applicatrices, serviettes stériles. |
Références
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Réimpressions et autorisations
