Article de méthode

Modèle de consommation excessive intermittente chez la souris

DOI :

10.3791/67560

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10 janvier 2025

 ,  ,  ,  ,  , 
1Department of Physiology, Faculty of Medicine, Universidad Nacional Autónoma de México (UNAM)

Dans cet article

Résumé

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Un modèle de frénésie alimentaire a été établi chez la souris en utilisant un accès intermittent à des M&M’s (un aliment très appétissant composé de graisse et de sucre). Les souris ayant un accès intermittent à cet aliment riche en graisses et en sucre ont montré des comportements similaires au stress, un apport calorique accru et une préférence pour cet aliment par rapport à la nourriture standard par rapport aux souris ayant un accès continu ou inexistant à la nourriture.

Résumé

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

L’obésité touche une personne sur huit dans le monde. La suralimentation, en particulier les aliments riches en calories, joue un rôle important dans l’obésité. L’hyperphagie boulimique (BED) est une maladie complexe causée par une combinaison de facteurs biologiques, psychologiques et sociaux. Il implique une consommation excessive d’aliments riches en calories sur une courte période et est souvent lié à l’anxiété et aux fringales.

Ici, nous présentons un protocole utilisant l’accès continu et intermittent à un nouvel aliment hautement appétissant (HPF) - M&M’s - pour développer un modèle murin pour étudier le trouble de l’hyperphagie boulimique (BED). Le HPF, choisi pour sa teneur élevée en matières grasses et en sucres, représente une source alimentaire optimale à étudier en raison de sa forte appétence, ce qui le rend particulièrement adapté à l’examen des comportements alimentaires compulsifs. En utilisant des souris C57BL/6, nous avons fourni un accès continu ou intermittent aux M&M’s tout en permettant un accès illimité à la nourriture standard et à l’eau. Au 8ejour, les souris du groupe d’accès intermittent présentaient des comportements prononcés de frénésie alimentaire, qui ont persisté jusqu’au 26ejour. Ces souris ont également consommé beaucoup plus de calories - principalement de la confiserie - que celles des groupes d’accès continu et de contrôle. Le contraste entre l’accès continu et intermittent souligne le rôle essentiel des horaires d’alimentation dans la promotion de la surconsommation d’aliments appétissants.

De plus, les évaluations comportementales ont révélé un accès intermittent aux comportements anxiogènes induits par le HPF, mettant en évidence l’impact psychologique des modèles d’accès sur le comportement alimentaire et les états émotionnels. En intégrant ces deux paradigmes d’alimentation distincts, cette étude offre des informations précieuses sur la façon dont la disponibilité d’aliments très appétissants peut exacerber les tendances à l’hyperphagie boulimique. Ce modèle offre une approche plus réaliste de l’étude des comportements d’hyperphagie boulimique et de leurs conséquences métaboliques. Il souligne l’importance des modèles standardisés dans la recherche biomédicale. Nos résultats offrent un aperçu des mécanismes physiologiques et neuronaux sous-jacents au BED, ce qui pourrait ouvrir la voie au développement d’interventions thérapeutiques efficaces pour le BED et l’obésité.

Introduction

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Selon les données de l’Organisation mondiale de la santé1, une personne sur huit dans le monde est obèse. Bien que l’alimentation soit une nécessité physiologique, la suralimentation sans besoin physiologique est connue pour être un facteur associé au surpoids et à l’obésité2. Il est bien connu que les humains préfèrent les aliments appétissants riches en calories, tels que les graisses et les sucres, aux aliments plus sains3.

Du point de vue de la science de la complexité, les troubles de l’alimentation, en particulier l’hyperphagie boulimique, sont des phénomènes à multiples facettes qui émergent de l’interaction de divers facteurs biologiques, psychologiques et sociaux présentant des comportements émergents tels que des modèles de frénésie cyclique, des comportements compensatoires complexes et des relations interpersonnelles dysfonctionnelles4. Le BED se caractérise par la consommation excessive d’aliments riches en calories dans un court laps de temps, environ 2 heures, selon le Manuel diagnostique et statistique des troubles mentaux, 5e éd.5 (DSM-V). De plus, le BED est associé à des comorbidités comportementales telles que l’anxiété et les enviesde fumer 6,7. La complexité de ces troubles nécessite de meilleurs modèles expérimentaux capables de saisir cette interaction de facteurs et de fournir une compréhension plus complète du comportement de l’hyperphagie boulimique et de ses implications pour l’obésité.

Les modèles les plus utilisés pour le comportement de frénésie dans la recherche fondamentale ont principalement été les rats. Ces modèles utilisent généralement un accès limité et intermittent à des aliments riches en graisses ou en sucre pour induire des comportements de frénésiealimentaire 8,9,10. Une autre approche consiste à fournir des aliments appétissants pendant une courte période (2 h) tous les 8 jours, ce qu’on appelle un modèle cyclique, à l’aide d’une pâte alimentaire hautement appétissante (HPF) contenant un mélange de graisses et de sucres11. Une autre méthode présente le HPF sous forme de cookies de manière imprévisible12. Dans les modèles murins, les comportements de frénésie sont souvent étudiés à l’aide du même modèle cyclique13. Une autre étude sur des souris utilise un accès limité au saccharose pour induire des comportements de frénésie14.

Malgré des recherches approfondies sur les comportements d’hyperphagie boulimique chez les rats, les modèles d’hyperphagie boulimique chez la souris restent limités. Cette étude vise à proposer un modèle d’hyperphagie boulimique utilisant les M&M’s (ci-après dénommés « HPF ») comme HPF selon les critères nutritionnels de HPF proposés par Fazzino et ses collègues15. De plus, nous visons à évaluer les propriétés gratifiantes du HPF selon qu’elles sont présentées en continu ou par intermittence. Dans notre recherche, nous avons cherché à observer des similitudes entre des critères diagnostiques spécifiques du DSM-V pour l’hyperphagie boulimique chez l’homme dans un modèle murin : consommer de la nourriture dans un court laps de temps (2 h), ingérer une grande quantité de nourriture que d’habitude, manger une quantité substantielle malgré un état de satiété et avoir des épisodes de frénésie au moins deux fois par semaine.

L’utilisation de modèles de souris de laboratoire est un outil inestimable dans la recherche biomédicale, en particulier pour l’étude des maladies humaines, car les souris partagent 99 % de leurs gènes avec les humains16. L’utilisation de souris offre également des avantages significatifs dans la compréhension de l’information transcriptomique et la modification des cibles thérapeutiques liées aux fonctions cellulaires et aux circuits neuronaux associés à diverses maladies17.

Par conséquent, cette étude propose un modèle d’accès continu et intermittent aux M&M’s (un HPF composé de graisse et de sucre) pour observer la frénésie alimentaire chez les souris C57BL/6 sans consommation standard de nourriture ou de privation d’eau. Ce modèle est nouveau et nécessaire pour la recherche biomédicale, car il représente une meilleure approche pour étudier ces problèmes complexes. La standardisation des modèles animaux est essentielle pour obtenir des résultats reproductibles et comparables, ce qui est fondamental pour faire progresser la recherche translationnelle et développer des interventions thérapeutiques efficaces pour le BED et l’obésité. L’approche décrite ici élargira la portée de la recherche sur le comportement alimentaire de type frénésie dans les études futures, facilitant ainsi l’essai de divers médicaments comme cibles thérapeutiques potentielles pour le BED. La mise en œuvre de modèles plus réalistes et standardisés chez la souris permettra de mieux comprendre les dynamiques complexes impliquées dans les troubles du comportement alimentaire et leurs conséquences métaboliques, offrant ainsi de nouvelles alternatives pour le traitement et la prévention du BED.

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Protocole

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Toutes les expériences ont été menées conformément à la norme officielle mexicaine de spécifications techniques pour la production et l’utilisation d’animaux de laboratoire (NOM-062-ZOO-1999) et dans le plein respect des directives établies par le Comité interne pour le soin et l’utilisation des animaux de laboratoire (CICUAL) de l’Université nationale autonome du Mexique (UNAM).

1. Animaux

  1. Pour suivre ce protocole, hébergez individuellement 27 souris mâles C57BLC/6, âgées de 1 mois et pesant 16-20 g, dans des cages dans des conditions environnementales contrôlées : un cycle lumière-obscurité de 12-12 h (06:00 allumé, 18:00 éteint), en maintenant la température à 21 ± 22 °C et les niveaux d’humidité à 70 ± 10 %.
    REMARQUE : Dans cette étude, nous avons utilisé exclusivement des souris mâles pour éliminer les effets des hormones féminines lors d’une consommation excessive de type frénésie. Cependant, dans une autre étude18, nous avons appliqué le même modèle à des souris femelles et n’avons observé aucune différence dans la consommation excessive de cigarettes.

2. Habituation

  1. Fournissez aux souris de 30 jours un accès ad libitum à de la nourriture et de l’eau standard. Placez-les dans des cages individuelles pour faciliter la mesure de la consommation d’eau et de nourriture.
  2. Fournir un environnement enrichi, y compris un tube de papier, à toutes les souris et fournir des copeaux de bois comme litière.
  3. Mesurez le poids corporel, la consommation de nourriture et d’eau toutes les 24 heures pendant 7 jours.

3. Modèle de frénésie alimentaire

  1. Au 7e jour de la période d’habituation, répartissez au hasard les rongeurs (N = 27) dans l’un des trois groupes suivants.
  2. Fournir à tous les sujets l’accès au HPF (contenu nutritionnel pour 100 : 480 kcal, 19g de lipides, 70 g de glucides, 5,1 g de protéines, 0,13 g de sel) pendant 2 h (de 16h00 à 18h00) pour minimiser la néophobie envers le HPF.
  3. Continuez à appliquer les conditions d’alimentation spécifiées pour chaque groupe de façon constante pendant une période de 26 jours.
    1. Groupe Chow (CG) n = 9 : fournir un accès ad libitum à la nourriture standard et à l’eau.
    2. Groupe continu (CdG) n = 9 ; fournir un accès dlibitum à la nourriture standard, au HPF et à l’eau.
    3. Groupe intermittent (IG) n = 9 : fournir un accès ad libitum à la nourriture standard et à l’eau, mais ne leur donner du HPF que certains jours (1, 3, 5, 8, 10, 12, 15, 17, 19, 22, 24 et 26) pendant 2 h (de 16h00 à 18h00).
  4. De la première séance à la séance 26, mesurez le poids corporel, l’apport alimentaire standard, l’apport alimentaire appétissant et la consommation d’eau pour tous les sujets à 16h00 et à nouveau à 18h00.

4. Instructions spécifiques

  1. Placez la nourriture standard sur les supports de cage et le HPF dans de petits récipients en plastique. Dans chaque séance, placez au hasard ces récipients aux coins des cages (postérieur gauche, postérieur droit, antérieur droit et antérieur gauche).
  2. Faites le plein d’eau (280-300 ml) et de nourriture standard (10-15 g) les lundis, mercredis et vendredis.
  3. Remplacez le HPF (4-4,5 g) par jour par le CdG. Pour l’IG, placez le HPF (4-4,5 g) les lundis, mercredis et vendredis à 16h00. Répartissez aléatoirement le HPF par couleur (marron, bleu, rouge, orange, vert et jaune), sans préférence observée pour aucune couleur.
  4. Au 7e jour de l’habituation, donnez le HPF aux souris assignées au groupe CoG à 16h00. Mesurez tous les animaux pour la consommation de nourriture standard, le poids corporel et la consommation d’eau.

5. Analyse des données

  1. Pour les mesures d’admission sur 24 heures, notez les valeurs à 16h00 la veille et à 16h00 le jour en cours. Par exemple, pour évaluer la consommation du jour 2, soustrayez les valeurs de la nourriture standard, du HPF, de l’eau et du poids corporel du jour 1 de celles du jour 2 pour les mêmes paramètres.
  2. Pour les mesures d’admission sur 2 h, enregistrez les valeurs à 16h00 et 18h00 le même jour. Par exemple, soustrayez les valeurs de la nourriture standard, du HPF, de l’eau et du poids corporel à 16:00 h de celles de 18:00 h pour les mêmes paramètres.
  3. Collectez toutes les données quotidiennement à deux moments (16h00 et 18h00), saisissez-les dans une feuille de calcul et effectuez des calculs de kcal.
    1. Pour calculer le kcal, convertissez les grammes consommés de nourriture standard et de HPF en kcal en fonction de la valeur énergétique de chaque aliment en utilisant une proportion (p. ex., nourriture standard : 3,02 kcal/g ; HPF : 4,80 kcal/g).
  4. Analysez et tracez les données à l’aide du logiciel de votre choix.
    1. Pour l’analyse statistique, utilisez les tests U de Kruskal-Wallis et de Mann-Whitney.

6. Test en champ ouvert

REMARQUE : Un test en plein champ de 22 jours, 14:00 h, a été effectué selon le protocole décrit par Kraeuter et ses collègues19. Ce protocole consiste à placer les animaux au centre d’une boîte en feuille acrylique noire. Le sol de l’arène était blanc et la grille était noire. Le comportement a été enregistré et quantifié à l’aide d’un système de suivi vidéo. Le système enregistrait la distance, la vitesse et le temps que les animaux passaient au centre ou à la périphérie de l’arène.

  1. Préparation de la salle d’essai et de l’appareil en plein champ
    1. Pour l’arène, utilisez une chambre carrée de 60 cm (longueur) x 60 cm (largeur) x 20 cm (hauteur) en plastique noir non poreux.
    2. Nettoyez l’appareil avant et entre les utilisations avec de l’éthanol à 70 % vol/vol pour éliminer les signaux d’odeur.
    3. Placez la caméra au-dessus de l’appareil pour une vue d’exploration optimale.
    4. Pour minimiser le stress, maintenez la température et l’humidité comme les conditions normales du logement. Si les souris sont déplacées d’une pièce à une autre pour l’expérience, acclimatez-les à la nouvelle pièce pendant au moins 1 h chaque jour avant de les utiliser.
  2. Réalisation de l’essai en plein champ
    1. Pour retirer une seule souris de la cage, saisissez doucement sa queue et placez-la au centre du labyrinthe en plein champ. Activez le logiciel de suivi vidéo à l’aide de la fonction de démarrage automatique, qui détecte l’enquêteur et commence à enregistrer dès que l’enquêteur n’est plus au point sur la caméra.
    2. Laissez la souris se déplacer librement dans le labyrinthe pendant 5 min. Pendant ce temps, le logiciel de suivi enregistrera le mouvement.
    3. À la fin de la période d’essai, retirez l’animal de l’arène et remettez-le dans sa cage d’origine.
    4. Avant de nettoyer le labyrinthe, comptez visuellement les excréments déposés et notez-les pour une analyse ultérieure.
    5. Retirez toutes les boulettes fécales et nettoyez les taches d’urine. Vaporisez le sol et les murs de l’appareil avec de l’éthanol à 70 %, puis essuyez-le avec une serviette en papier propre. Laissez la solution d’éthanol sécher complètement.
    6. Après avoir testé tous les animaux, retournez au vivarium, nettoyez l’arène et organisez tous les matériaux utilisés.
  3. Analyse des données
    REMARQUE : Le logiciel de suivi vidéo facilite l’extraction d’une série de données, telles que la vitesse moyenne des animaux, la distance parcourue et le temps passé au centre et à la périphérie de l’appareil.
    1. Sélectionnez la distance parcourue et le temps passé par les animaux au centre et à la périphérie de l’appareil.
    2. Exportez les données du logiciel de suivi dans une feuille de calcul ou un autre format préféré pour une analyse statistique plus approfondie.
    3. Analysez les données avec le logiciel de votre choix.

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Résultats

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En utilisant HPF, nous avons réussi à établir un modèle de frénésie alimentaire chez les souris C57BL/6. Au jour 8, le comportement d’hyperphagie boulimique (consommation excessive de nourriture pendant 2 heures) était fermement établi et maintenu jusqu’au jour 26 (Figure 1A). Au cours des séances intermittentes, le groupe IG a présenté une consommation totale de kcal significativement plus élevée (à la fois pour la nourriture standard et le HPF que pour les groupes CG et CoG) (

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Discussion

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Nous avons utilisé le modèle de frénésie alimentaire proposé par Corwin en 2006 comme base pour développer ce protocole. Cependant, la présente étude a modifié la variable de fourniture d’aliments appétissants pendant 2 h pour le CoG8. Au lieu de cela, nous avons offert de la nourriture appétissante ad libitum à CoG, car elle simule mieux une réalité où nous avons accès 24 heures sur 24 à n’importe quelle nourriture. Nous avons également utilisé les M&M’s...

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Déclarations de divulgation

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Les auteurs n’ont aucun conflit d’intérêts à déclarer.

Remerciements

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Nous tenons à exprimer notre gratitude au programme de doctorat en sciences biomédicales de l’Université nationale autonome du Mexique et au soutien fourni par le Consejo Nacional de Humanidades, Ciencias y Tecnologías (CONAHCYT), No. CVU : 11025222. Ce travail a été partiellement financé par la subvention UNAM-DGAPA-PAPIIT IN207423. Nous remercions Andrea Mondragón García et José Enrique Ramírez Sánchez pour leur soutien technique.

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Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
Logiciel de suivi vidéo ANY-mazeStoelting Co.4.73 version
C270 HD WebcamLogitechC270 HDIl n’est pas nécessaire d’utiliser un enregistreur vidéo spécifique, n’importe quelle webcam ou caméscope avec une qualité d’image et une résolution satisfaisantes suffira.
Gants Ambiderm (noir)Ambiderm7.50222E+12
GraphPad Prism 9GraphPad
Laboratoire Rongeurs Diet 5001LabDiet1320https://di.facmed.unam.mx/comisiones/Composici%C3%B3n%20del%20alimento%20Laboratory%20Rodent%20Diet%205001.pdf
M& Ms 43.8g (Emballage brun)M& M&aigu ; s  ;Contenu nutritionnel pour 100 : 480 kcal, 19g de matières grasses, 70 g de glucides, 5,1 g de protéines, 0,13 g de selIngrédients :  ; sucre, pâte de cacao, écrémé lait  ; poudre, beurre de cacao,  ; lactose, amidon,  ; lait  ; matières grasses, graisses de palme, sirop de glucose, graisses de karité, stabilisants (gomme arabique), dextrines, agents d’enrobage (cire d’abeille, cire de carnauba), colorants (E100, carmin, E132, E133, E150a, E150c, E150d, E153, E160a, E160e, E162, E163, E170), concentré de betterave, émulsifiants (soja  ; lécithine, E445), sel, arômes, huile de palmiste, antioxydant (E306). (Peut contenir :  ; cacahuète, noisette, amande). Le chocolat au lait contient 14 % de solides du lait minimum. Le chocolat au lait contient des graisses végétales en plus du beurre de cacao.
Labyrinthe à champ ouvert  ;
Polypropylène Souris CageOrchidée ScientificSMP 01
Abreuvoirs pour rongeursSunnypetSP-3656
Uline Balanza-220 g x 0.01 gunike.mxH-9884
UniMask4Uniseal
Bouteilles en plastiqueunike.mxS-14487
Lit sanitaire, sciure de bois pour animauxBIOINVERTIN° 10kg

Références

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  1. Obesity and overweight. , World Health Organization. https://www.who.int/news-room/fact-sheets/detail/obesity-and-overweight (2022).
  2. McCuen-Wurst, C., et al. Disordered eating and obesity: between binge-eating disorder, night-eating syndrome, and weight-related comorbidities. Ann N Y Acad Sci. 1411 (1), 96-105 (2018).
  3. Veling, H., et al. Stop signals decrease choices for palatable foods through decreased food evaluation. Front Psychol. 4, 875(2013).
  4. Pascual-Ausique, D., Sánchez-Carracedo, M. A complex systems approach to eating disorders: Towards a better understanding of heterogeneity and treatment. Appetite. 107, 152-161 (2016).
  5. Diagnostic and statistical manual of mental disorders. , 5th ed, American Psychiatric Association. (2013).
  6. Torres, S., et al. Emotion-focused cognitive behavioral therapy in comorbid obesity with binge eating disorder: A pilot study of feasibility and long-term outcomes. Front Psychol. 11, 343(2020).
  7. Pipe, A., et al. Binge eating disorder is hidden behind a wall of anxiety disorders. J Psychiatry Neurosci. 46 (2), E208-E209 (2021).
  8. Corwin, R. L. Bingeing rats: a model of intermittent excessive behavior. Appetite. 46 (1), 11-15 (2006).
  9. Lardeux, S., et al. Intermittent-access binge consumption of sweet high-fat liquid does not require opioid or dopamine receptors in the nucleus accumbens. Behav Brain Res. 292, 194-208 (2015).
  10. Kreisler, A. D., et al. Extended vs. brief intermittent access to palatable food differently promote binge-like intake, rejection of less preferred food, and weight cycling in female rats. Physiol Behav. 177, 305-316 (2017).
  11. Romano, A., et al. Oleoylethanolamide decreases frustration stress-induced binge-like eating in female rats: a novel potential treatment for binge eating disorder. Neuropsychopharmacology. 45 (11), 1931-1941 (2020).
  12. Ormaechea, P., Boakes, R. A. Unpredictability of access to a high fat/high sugar food can increase rats´intake. Physiol Behav. 266, 114182(2023).
  13. Hildebrandt, B. A., Ahmari, S. E. Breaking it down: Investigation of binge eating components in animal models to enhance translation. Front Psychiatry. 12, 728535(2021).
  14. Yasoshima, Y., Shimura, T. A mouse model for binge-like sucrose overconsumption: Contribution of enhanced motivation for sweetener consumption. Physiol Behav. 138, 154-164 (2015).
  15. Fazzino, T. L., et al. Hyper-palatable foods: Development of a quantitative definition and application to the US Food System database. Obesity (Silver Spring). 27 (11), 1761-1768 (2019).
  16. Rosenthal, N., Brown, S. The mouse ascending: perspectives for human-disease models. Nat Cell Biol. 9 (9), 993-999 (2007).
  17. Yao, Z., et al. A high-resolution transcriptomic and spatial atlas of cell types in the whole mouse brain. Nature. 624 (7991), 317-332 (2023).
  18. Barrera, E., et al. Sex differences of C57BL/6 mice affect the binge-eating model. Neuroscience. , Chicago IL. https://www.researchgate.net/publication/385378968_Sex_differerences_of_C57BL6_mice_affect_the_binge-eating_model (2024).
  19. Kraeuter, A. K., Guest, P. C., Sarnyai, Z. The open field test for measuring locomotor activity and anxiety-like behavior. Methods Mol Biol. 1916, 99-103 (2019).
  20. Avena, N., et al. Evidence for sugar addiction: behavioral and neurochemical effects of intermittent, excessive sugar intake. Neurosci Biobehav Rev. 32 (1), 20-39 (2008).
  21. Czyzyk, T. A., et al. A model of binge-like eating behavior in mice that does not require food deprivation or stress. Obesity (Silver Spring). 18 (9), 1710-1717 (2010).
  22. Mukherjee, A., et al. The impact of binge-like palatable food intake on the endogenous glucagon-like peptide-1 system in female rats. Behav Brain Res. 428, 113869(2022).
  23. Sidlo, J., Zaviacic, M., Kvasnicka, P. Night and day differences in the food-intake of laboratory rats Wistar and Koletsky strains. Bratisl Lek Listy. 96 (12), 655-657 (1995).
  24. Corwin, R. L., Wojnicki, H. E. Binge eating in rats with limited access to vegetable shortening. Curr Protoc Neurosci. Chapter 9 (Unit9.23B), (2006).
  25. Bailoo, J. D., et al. Effects of cage enrichment on behavior, welfare and outcome variability in female mice. Front Behav Neurosci. 12, 232(2018).
  26. Neff, E. P. A point on thermoneutrality for mice. Lab Animal. 49, 169(2020).
  27. Osorio, M. J., et al. Not feeling the heat? Effects of dietary protein on satiation and satiety in mice are not due to its impact on body temperature. Appetite. 200, 107421(2024).
  28. Qian, S., et al. A temperature-regulated circuit for feeding behavior. Nat Commun. 13, 4229(2022).
  29. Russo, S. J., Nestler, E. J. The brain reward circuitry in mood disorders. Nat Rev Neurosci. 14 (9), 609-625 (2013).
  30. Su, J., et al. Involvement of the nucleus accumbens in chocolate-induced cataplexy. Sci Rep. 10 (1), 4958(2020).
  31. Smail-Crevier, R. L., et al. Binge-like intake of sucrose reduces the rewarding value of sucrose in adult rats. Physiol Behav. 194, 420-429 (2018).
  32. Sharma, S., Fulton, S. Diet-induced obesity promotes depressive-like behavior that is associated with neural adaptations in brain reward circuitry. Int J Obesity. 37 (3), 382-389 (2013).
  33. Hu, H., et al. Alternate-day fasting ameliorated anxiety-like behavior in high-fat diet-induced obese mice. J Nutr Biochem. 1241, 09526(2024).
  34. Gainey, S. J., et al. Short-term high-fat diet (HFD) induced anxiety-like behaviors and cognitive impairment are improved with treatment by glyburide. Front Behav Neurosci. 10, 156(2016).
  35. Bahi, A., Dreyer, J. L. Effects of chronic psychosocial stress on 'binge-like' sucrose intake in mice. Prog Neuropsychopharmacol Biol Psychiatry. 120, 110625(2023).
  36. Blanco-Gandía, M. C., Miñarro, J., Rodríguez-Arias, M. Behavioral profile of intermittent vs continuous access to a high fat diet during adolescence. Behav Brain Res. 368, s111891(2019).
  37. Leffa, D. D., et al. Effects of palatable cafeteria diet on cognitive and noncognitive behaviors and brain neurotrophins' levels in mice. Metab Brain Dis. 30 (4), 1073-1082 (2015).
  38. Awad, G. Altered reward processing following sucrose bingeing in male and female mice. Nutr Neurosci. 27 (11), 1269-1282 (2024).
  39. Chen, L., et al. Ventral tegmental area GABAergic neurons induce anxiety-like behaviors and promote palatable food intake. Neuropharmacology. 173, 108114(2020).
  40. Passeri, A., et al. Linking drug and food addiction: an overview of the shared neural circuits and behavioral phenotype. Front Behav Neurosci. 17, 1240748(2023).

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