Cell-free dot blot en tant que plateforme d’immunodosage pratique et adaptable pour la détection de la réponse anticorps dans les sérums humains et animaux

Résumé

Nous décrivons une plateforme d’immunoessais récemment développée basée sur les principes de la biologie synthétique acellulaire et la technique dot-blot pour la détection personnalisable de la réponse anticorps dans les sérums humains et animaux.

Résumé

La série d’épidémies pathogènes mondiales au cours des deux dernières décennies a mis en évidence l’importance des stratégies de sérosurveillance. Les plateformes d’immunodosage qui servent à détecter les anticorps spécifiques de la maladie dans le sérum des patients sont au cœur de la sérosurveillance. Les exemples courants incluent les tests immuno-enzymatiques et les tests à flux latéral ; Cependant, bien qu’il s’agisse de méthodes de référence, elles nécessitent des consommables spécifiques aux agents pathogènes et des équipements spécialisés, ce qui limite leur utilisation en dehors des laboratoires disposant de ressources suffisantes.

Nous avons récemment mis au point une nouvelle plateforme d’immunodosage appelée Cell-Free Dot-Blot (CFDB) et l’avons validée à l’aide de sérums humains et animaux contre le SRAS-CoV-2. Contrairement aux immunoessais conventionnels, les échantillons de sérum de patients CFDB sont immobilisés dans une phase solide (membrane de nitrocellulose), tandis que l’antigène cible est en suspension dans la phase mobile du test. Pour améliorer l’accès aux capacités de sérosurveillance, les antigènes CFDB sont produits à la demande et avec une infrastructure à faible charge en utilisant l’expression in vitro des protéines. Ici, l’antigène est fusionné avec une étiquette peptidique qui peut être détectée à l’aide d’une seule protéine rapporteuse universelle pour tout test CFDB. Par conséquent, la CFDB n’a pas besoin d’avoir accès à un lecteur de plaques multipuits ou à des composants d’essai moléculaire commerciaux purifiés. Grâce à ces considérations de conception, CFDB comble les lacunes des plateformes d’immunoessais existantes en offrant l’accessibilité aux laboratoires non centralisés, l’adaptabilité aux agents pathogènes émergents et l’abordabilité aux communautés à faible revenu.

Dans le présent article, nous fournirons un protocole étape par étape pour préparer et effectuer un dosage immunologique CFDB. En utilisant nos récents travaux sur le SARS-CoV-2 CFDB à titre d’exemple, nous couvrirons la conception de l’ADN antigénique pour la production acellulaire à la demande, suivie de la préparation de la protéine rapporteure CFDB, de l’immobilisation d’échantillons de sérum sur la phase solide, et enfin, des étapes de liaison et de détection de l’antigène du test. Nous prévoyons qu’en suivant ces instructions, les chercheurs seront en mesure d’adapter le test CFDB pour détecter les réponses immunitaires dans les sérums humains et animaux à n’importe quel agent pathogène donné.

Introduction

La pandémie de COVID-19 a révélé le besoin critique d’outils de diagnostic abordables et évolutifs, en particulier pour les milieux à faibles ressources¹. Les immunotests conventionnels tels que les tests immuno-enzymatiques (ELISA) se sont avérés essentiels pour détecter les réponses immunitaires ^2,3. Cependant, leur coût élevé, leur dépendance à l’égard de réactifs complexes et leur dépendance à l’égard d’équipements spécialisés limitent leur accessibilité, en particulier pendant les crises sanitaires mondiales. En réponse à ces défis, nous avons développé le Cell-Free Dot Blot (CFDB), une plateforme d’immunodosage adaptable et peu coûteuse conçue pour la détection d’anticorps anti-SRAS-CoV-2 dans les sérums humains et animaux.

La CFDB tire parti de la biologie synthétique acellulaire pour la production rapide et à la demande d’antigènes viraux à l’aide de modèles d’ADN linéaires ^4,5. Cela élimine le besoin de processus traditionnels de clonage, d’expression et de purification basés sur les cellules, accélérant considérablement la production d’antigènes tout en réduisant les coûts. La méthode CFDB simplifie la détection des anticorps en utilisant un format de transfert de points, où les sérums sont directement repérés sur les membranes de nitrocellulose. Ce système évite d’avoir besoin de plaques multipuits coûteuses et d’équipements de laboratoire spécialisés, ce qui permet un flux de travail simple pour les étapes d’incubation et de lavage. La plate-forme utilise également un système SpyCatcher-SpyTag, où une chimère de peroxydase SpyCatcher2-Apex2 agit comme un réactif de détection secondaire universel ^5,6. Celui-ci est produit à l’aide de l’expression standard basée sur Escherichia coli, ce qui élimine la dépendance aux conjugués d’anticorps commerciaux coûteux. En conséquence, le système CFDB peut effectuer des tests sérologiques avec des performances comparables à celles des ELISA à un coût nettement inférieur - environ 3 USD par test de 96 échantillons contre plus de 300 USD pour un kit ELISA^{commercial 5}.

Pour démontrer l’efficacité de la CFDB, nous avons testé sa capacité à détecter les anticorps dans des sérums humains et animaux précaractérisés. Nos résultats sont étroitement corrélés à l’ELISA pour l’identification des échantillons positifs et négatifs au COVID-19. En plus du diagnostic humain, nous avons évalué l’utilité de la CFDB dans des modèles animaux, en testant des sérums de hamsters infectés par le SRAS-CoV-2 et de ceux vaccinés avec la protéine recombinante de la nucléocapside. Ces tests ont confirmé le potentiel d’utilisation de CFDB dans les diagnostics humains et vétérinaires, ce qui en fait un outil polyvalent pour surveiller les réponses immunitaires de toutes les espèces. L’un des principaux avantages de la CFDB est sa flexibilité. En modifiant simplement la matrice d’ADN codant pour l’antigène d’intérêt, la plateforme peut être rapidement adaptée pour détecter les anticorps contre différents agents pathogènes, ce qui la rend précieuse pour la préparation aux futures pandémies. Son faible coût, son flux de travail simple et ses exigences minimales en matière d’infrastructure le rendent particulièrement adapté aux laboratoires décentralisés et aux environnements à faibles ressources, où l’accès aux diagnostics commerciaux est limité.

Dans ce travail, nous fournirons des instructions étape par étape pour la préparation et la réalisation d’un test CFDB. Tout d’abord, nous couvrons la conception et la synthèse de matrices d’ADN linéaires pour la production acellulaire d’antigènes, qui sont les principaux réactifs de détection du test. Nous décrivons ensuite les étapes de préparation du réactif de détection secondaire du test SpyCatcher2-Apex2. Ensuite, nous fournissons des instructions pour la production acellulaire et le contrôle de la qualité des antigènes eux-mêmes. Enfin, nous décrivons en détail le processus de réalisation d’un test CFDB sur des échantillons de sérum humain ou animal.

Protocole

Toutes les expériences sur les hamsters ont été réalisées au Laboratoire national de microbiologie (LNM) de l’Agence de la santé publique du Canada, avec l’approbation du Centre scientifique canadien de santé humaine et animale et conformément aux lignes directrices du Conseil canadien de protection des animaux. Tous les échantillons de sérum et de plasma humains ont été obtenus commercialement pour des analyses à l’interne ou fournis par des collaborateurs cliniques au LNM pour des analyses indépendantes au LNM.

1. Conception et préparation de modèles d’expression linéaire d’antigènes (LETs)

1. Concevoir les LET d’expression acellulaire de l’antigène cible en se basant sur les instructions de Norouzi et ^al.7 et contenant un SpyTag N/C-terminal comme décrit dans Norouzi et ^al.5.
   REMARQUE : Nous fournissons ici des détails pour la préparation de la protéine de nucléocapside du SRAS-CoV-2 (NP, acides aminés 2-419).
   1. Assurez-vous que le LET pour le NP du SARS-CoV-2 (figure 1 et fichier supplémentaire 1) contient des sites Ter 5' et 3' avec une séquence tampon de 50 paires de bases avant le promoteur T7 et après le codon stop.
   2. Marquez la protéine NP sur l’extrémité N-terminale avec His 6-SpyTag-TEV.
   3. Obtenez la séquence protéique de la base de données UniProt (code d’accès P0DTC9) et optimisez-la pour l’expression basée sur E. coli à l’aide de l’outil d’optimisation des codons IDT⁸. Commandez cette séquence pour la synthèse commerciale sous la forme d’un fragment d’ADN simple brin remis en suspension dans l’eau à 10 ng/μL.
      REMARQUE : Le site de clivage de la protéase TEV et la balise His₆ ne sont pas des caractéristiques essentielles dans la conception du LET.
2. La PCR amplifie le fragment d’ADN avec le Ter FW universel (GGCTCCGAATAAGTATGTTGTAACTAAAGTGCGGCC
   ACGATGCGTCCGGCGTAGAGGATCG) et Ter RV (CCGAGGCAATAAGTATGTTGTAACTAAAGTGCTCAG
   CTTCCTTTCGGGCTTTGTTAGCAGCC) à l’aide du kit d’ADN polymérase haute fidélité (voir le tableau des matériaux)
   1. Mettre en place une réaction de 100 μL comme suit : 75 μL d’eau exempte de nucléases, 20 μL de tampon d’ADN polymérase 5x, 2 μL de 10 mM de dNTPs (concentration finale de 200 μM), 0,5 μL d’amorce Ter-FW de 100 μM, 0,5 μL d’amorce Ter-RV de 100 μM, 1 μL de LET simple brin de 10 ng/μL, 1 μL(2U) d’ADN polymérase.
   2. Utiliser les paramètres PCR suivants : dénaturation initiale à 98 °C pendant 30 s ; 35 cycles : 98 °C pendant 6 s, 60 °C pendant 15 s, 72 °C pendant 90 s ; maintenir à 4 °C.
3. Purifiez le produit PCR à l’aide d’un kit de purification PCR commercial, vérifiez sa qualité en analysant un échantillon sur un gel d’agarose à 1 % et mesurez sa concentration sur un spectrophotomètre UV-Vis.
   REMARQUE : Les produits PCR bruts peuvent également être utilisés directement pour l’expression acellulaire. Cependant, la purification permet une procédure plus standardisée.

Figure 1 : Modèle d’expression linéaire pour le SARS-CoV-2-NP. Un schéma représentant les caractéristiques de la matrice d’ADN linéaire His-SpyTag-SARS-CoV-2 NP. Les éléments clés du modèle d’ADN sont étiquetés. La séquence codante de la protéine d’intérêt, ici la NP, est placée sous le contrôle transcriptionnel d’un promoteur T7 pour une expression efficace. À l’extrémité N-terminale, la protéine NP est ajoutée à un SpyTag pour une détection spécifique à l’aide du réactif de détection SpyCatcher2-Apex2. Les sites de protéase x6His-tag et TEV, bien qu’inclus dans la conception générale du LET, sont superflus aux fins de la CFDB. Aux extrémités de la matrice d’ADN linéaire, les sites Ter « en amont » et « en aval », chacun précédé de séquences tampons respectives de 50 paires de bases, sont inclus pour la protection médiée par Tus contre la dégradation de l’ADN exonucléolytique dans le lysat acellulaire. Abréviations : NP = protéine de nucléocapside ; LET = modèle d’expression linéaire ; TEV = virus de la gravure du tabac ; CFDB = tache de point acellulaire. Veuillez cliquer ici pour voir une version agrandie de cette figure.

2. Purification de la protéine rapporteure SpyCatcher2-Apex2

1. Utilisez le plasmide pET24b-SpyCatcher2-Apex2, construit à l’origine dans Norouzi et ^al.5 (séquence complète dans le fichier supplémentaire 2 et carte du plasmide dans la figure supplémentaire S1) pour préparer la protéine rapporteure SpyCatcher2-Apex-2.
2. Préparez des plaques de gélose et un bouillon de lysogénie (LB) contenant 50 μg/mL de kanamycine. Transformez les cellules E . coli BL21 (DE3) avec le plasmide pET24b-SpyCatcher2-Apex2. Inoculer une seule colonie dans une culture de démarrage LB de 15 mL et cultiver pendant la nuit à 37 °C en agitant à 250 tr/min.
3. Le lendemain, ajouter 10 mL de la culture de démarrage dans 500 mL de milieu frais contenant 50 μg/mL de kanamycine. Incuber à 37 °C avec agitation à 250 tr/min jusqu’à ce que la culture atteigne une densité optique à 600 nm de 0,6-0,8 (~3 h).
4. Induire l’expression de SpyCatcher2-Apex2 en complétant la culture avec 0,5 mM d’isopropyl-β-D-1-thiogalactopyranoside et 1 mM de chlorhydrate d’acide 5-aminolévulinique. Réduire la température de croissance à 30 °C et laisser la culture incuber pendant encore 4 h.
5. Récoltez les bactéries par centrifugation à 8 000 × g pendant 15 min. Procédez à la lyse cellulaire ou stockez la pastille à -80 °C jusqu’à ce qu’elle soit utilisée.
6. Remettre la pastille en suspension dans 20 mL de tampon de lyse contenant 50 mM de Tris-HCl (pH 7,8), 300 mM de NaCl, 1 mg/mL de lysozyme, un comprimé d’inhibiteur de protéase sans EDTA et 1 mM de dithiothréitol (DTT). Lyse les cellules par sonication à 50 % d’amplitude avec des intervalles de 5 s ON et 10 s OFF pour un temps ON total de 3 min.
7. Clarifier le lysat par centrifugation à 20 000 × g pendant 1 h à 4 °C. Passez le surnageant à travers un filtre à seringue de 0,2 μm.
8. Ajouter du chlorure d’hémine à une concentration finale de 250 μM dans le lysat clarifié et incuber pendant une nuit à 4 °C. Procéder à la purification des protéines.
   REMARQUE : L’incubation avec du chlorure d’hémine maximise l’incorporation de l’hème dans la peroxydase Apex-2 pour une activité enzymatique optimale.
9. Ajouter 2,5 mL de résine de Ni dans le lysat clarifié et incuber à 4 °C en agitant doucement pendant 45 min. Appliquez le mélange sur une colonne d’écoulement par gravité et lavez la résine avec 50 mL de tampon Tris (50 mM de Tris-HCl (pH 7,8), 300 mM de NaCl et 1 mM de DTT).
10. Éluer la protéine SpyCatcher2-Apex2 dans 25 mL de tampon Tris contenant 400 mM d’imidazole. Le concentré et le tampon échangent l’éluat dans le tampon Tris à l’aide d’une unité de filtration centrifuge, en visant un volume final de 0,5 à 1,0 mL.
11. Utilisez le coefficient d’extinction molaire de SpyCatcher2-Apex2 (27 390 ^{M-1 cm-1}) pour déterminer la concentration en protéines sur un spectrophotomètre UV-Vis. Ajouter le glycérol à une concentration finale de 40 % et stocker les aliquotes à -20 °C.
    REMARQUE : Ce protocole devrait produire environ 40 mg de SpyCatcher2-Apex2 hautement pur et actif, ce qui est suffisant pour 400 analyses CFDB sur une taille de transfert standard de 96 échantillons.
12. Pour la détection des protéines marquées SpyTagged à l’aide du western blot⁹ conventionnel et pour les expériences CFDB, toujours bloquer les membranes dans du lait écrémé en poudre à 5 % dans 1 solution saline tamponnée au Tris contenant 0,05 % de Tween-20 (TBST). Utilisez la protéine SpyCatcher2-Apex2 à une concentration finale de 10 μg/mL dans une solution bloquante.
    REMARQUE : Le rapporteur SpyCatcher2-Apex2 nécessite une solution de chimiluminescence améliorée (ECL) pour le développement du signal. La solution ECL peut être obtenue dans le commerce ou préparée en interne selon les instructions de Mruk et ^al.10. La solution finale d’ECL se compose ici de 0,4 mM d’acide p-coumarique, de 2,5 mM de luminol et de 0,015 % de H₂O₂ dans 100 mM de Tris-HCl (pH 8,6).

3. Production acellulaire et contrôle de la qualité des antigènes

1. Préparez et assemblez un lysat d’expression acellulaire d’E . coli BL21 et des composants de réaction en suivant les instructions de Levine et ^al.11 et Norouzi et ^al.5. Compléter le mélange réactionnel final avec 5 μM de protéine Tus et 1,2 μM d’ARN polymérase T7 comme suit pour une réaction représentative de 100 μL : 14,6 μL de solution A, 14 μL de solution B, 33,3 μL de lysat d’E. coli BL21, 2,5 μL de protéine Tus 200 mM, 1,2 μL d’ARN polymérase 100 mM T7, 1 μL de matrice d’ADN linéaire de 1,5 μM, 33,4 μL d’eau sans nucléases.
   REMARQUE : Voir le fichier supplémentaire 3 pour des instructions clés sur la préparation d’un lysat acellulaire d’E . coli BL21 et le tableau supplémentaire S1 pour une recette détaillée des solutions A et B. Le système d’expression acellulaire d’E . coli peut également être préparé à l’aide d’autres protocoles ou obtenu commercialement, à condition que la réaction soit complétée par de l’ARN polymérase Tus et T7.
2. Effectuez un test d’expression initial à l’échelle de 5 μL en ajoutant 10 % (v/v) de produit PCR brut à la réaction acellulaire dans un tube de PCR. Incuber sans agiter à 30 °C pendant 15 h.
3. Vérifiez la qualité d’expression de l’antigène NP en chargeant 1 μL de la réaction acellulaire sur un gel de polyacrylamide de dodécylsulfate de sodium à 12 % (SDS-PAGE), puis en le transférant sur une membrane de nitrocellulose pour le transfert Western, comme décrit à l’étape 2.12. Utilisez la protéine rapporteure SpyCatcher2-Apex2 pour le marquage par transfert via le SpyTag, et éventuellement, un anticorps commercial spécifique (ici un anti-SARS-CoV-2-NP) contre l’antigène cible.
4. Assembler une réaction acellulaire à l’échelle de 1 mL avec un produit LET purifié de 15 nM à utiliser pour le test CFDB. Incuber le mélange d’expression dans un tube conique de 15 mL en agitant à 80 tr/min pendant 15 h à 30 °C. Vérifier la qualité de l’expression à l’aide du transfert Western et stocker les aliquotes de 50 μL à -20 °C.

4. Échantillons de sérum

1. Obtenir des échantillons de sérum (ou de plasma) humain/animal auprès de sources commerciales, de collaborateurs cliniques ou à l’interne en utilisant les procédures standard et en suivant les lignes directrices du comité d’éthique de la recherche humaine de l’établissement ou du comité sur le soin et l’utilisation des animaux. S’assurer que des mesures appropriées de prétraitement des échantillons ont été prises pour atténuer les risques de contamination.
   REMARQUE : Les mesures de prétraitement peuvent inclure un traitement au solvant-détergent, l’inactivation de la chaleur et l’analyse des marqueurs de virus transmissibles par le sang. Il existe un protocole utile pour l’isolement du sérum et du plasma à partir du sang total¹². Comme pour d’autres plateformes d’immunoessais, les échantillons de sérum prélevés tôt (<3 semaines) après l’infection initiale ou le début de la maladie ne devraient pas contenir des niveaux adéquats de réponse anticorps et leurs résultats doivent être traités avec prudence.
2. Pour la vérification de la qualité des réactifs SARS-CoV-2 NP CFDB, utilisez le panel de référence international de l’Organisation mondiale de la santé (OMS) du National Institute for Biological Standards and Control (NIBSC) pour l’immunoglobuline anti-SARS-CoV-2, qui contient x1 échantillon pré-COVID-19 et x4 échantillons positifs au SARS-CoV-2 avec des niveaux variables d’immunoglobulines anti-NP¹³. Alternativement, utilisez des échantillons de sérum sains et positifs précaractérisés provenant d’autres sources.
3. Pour les expériences CFDB, obtenir ou préparer un échantillon de contrôle négatif en regroupant plusieurs (>3) échantillons de sérum sain afin d’augmenter la précision et de faciliter l’analyse et l’interprétation des résultats.

5. Procédure de transfert de points acellulaire (CFDB)

1. Téléchargez et imprimez le fichier image de la grille maîtresse (figure supplémentaire S2). La grille maîtresse est un motif de 6 x 6 cm contenant 12 x 12 cercles de 2 mm de diamètre chacun et offre une capacité de repérage similaire à celle d’une plaque à 96 puits.
2. Placez la grille en sandwich entre deux couches de film d’étanchéité adhésif pour plaque PCR et coupez-la sur mesure le long des bords extérieurs de la grille. À l’aide d’un poinçon de biopsie de 2 mm, vous pouvez creuser chaque cercle marqué.
   REMARQUE : Cette grille maîtresse peut être réutilisée plusieurs fois après avoir été essuyée avec de l’éthanol à 70 %.
3. Coupez un morceau de membrane nitrocellulosique de 6,5 x 6,5 cm et placez-le sous la grille maîtresse sur une surface propre, en fixant l’installation à l’aide de ruban adhésif, comme illustré à la figure 2 et à la figure supplémentaire S3. À l’aide d’un marqueur, marquez les positions des cercles les plus externes sur la membrane de nitrocellulose afin de les guider pour couper la membrane après le repérage de l’échantillon.
4. Diluer les échantillons de sérum 1/10 dans 1x solution saline tamponnée au phosphate (pH 7,4). À l’aide d’une micropipette, versez des volumes triples de 0,4 μL de chaque échantillon sur la membrane de nitrocellulose à des positions de grille prédéterminées. Il faudra environ 15 s par point pour distribuer.
   REMARQUE : Assurez-vous d’inclure des échantillons de contrôle négatifs et positifs avec chaque essai, car cela sera nécessaire pour l’analyse des résultats.
5. Attendez 10 min à température ambiante pour que les échantillons repérés se lient et sèchent. À l’aide d’une pince à épiler, récupérez soigneusement la membrane de nitrocellulose et coupez le long des cercles extérieurs marqués.
6. Bloquer la membrane dans 10 mL de solution bloquante (5 % de lait écrémé en poudre dans du TBST) dans une boîte de Pétri de 10 cm pendant 30 min à température ambiante, en agitant doucement à 100 tr/min.
7. Décongeler et ajouter une aliquote de 50 μL du mélange d’expression d’antigène acellulaire à 5 mL de solution bloquante dans une boîte de Pétri de 10 cm. Transférez la membrane directement dans cette solution contenant de l’antigène et incubez à température ambiante pendant 1 h, en agitant à 100 tr/min.
   REMARQUE : Il s’agit de l’étape de détection primaire au cours de laquelle l’antigène SpyTagged se liera aux positions ponctuelles contenant des anticorps, le cas échéant.
8. Rincez la membrane, lavez-la pendant 5 minutes et rincez-la à nouveau au TBST avant de passer à l’étape de détection secondaire.
9. Incuber la membrane dans 10 mL de tampon de blocage contenant 10 μg/mL de protéine SpyCatcher2-Apex2 purifiée, pendant 1 h tout en agitant à 100 tr/min.
10. Rincez la membrane et lavez 2 x 5 min en TBST, avec un rinçage final en TBS.
11. Collez et fixez un morceau de parafilm sur une zone de travail propre près de l’instrument d’imagerie par transfert. Retirez l’excès de liquide en tapotant la membrane à l’aide d’une pince à épiler et placez la membrane sur le parafilm.
12. Ajouter immédiatement 3 ml (100 μL/cm²) de solution ECL sur la membrane et incuber à température ambiante pendant exactement 90 s.
13. Séchez immédiatement la membrane par tapotement et transférez-la dans un instrument d’imagerie compatible avec la chimiluminescence pour la visualisation des résultats.
    REMARQUE : Le temps d’imagerie optimal peut varier selon les instruments. Il est recommandé d’utiliser les paramètres de temps d’acquisition automatique par défaut de l’instrument et, en cas d’absence, d’utiliser des échantillons de sérum précaractérisés pour optimiser le temps d’acquisition de l’image.
14. Utilisez la fonction d’analyse d’images de l’instrument pour obtenir des intensités ponctuelles, y compris pour trois positions blanches (arrière-plan) sur la membrane de nitrocellulose ; Maintenir un volume de mesure constant par point. Exportez les données vers une feuille de calcul, en n’oubliant pas d’étiqueter correctement chaque position de spot.
15. Calculez la moyenne et l’écart-type (ET) des intensités ponctuelles triples. Ensuite, soustrayez le fond de la membrane de nitrocellulose de tous les échantillons.
16. Utilisez l’équation suivante pour obtenir une valeur seuil pour l’interprétation des résultats -/+ :
    (Moyenne des témoins négatifs) + (3 x écart-type des témoins négatifs). Considérons les échantillons positifs si leur intensité moyenne est supérieure à la valeur seuil et négatifs si leur intensité moyenne est inférieure à la valeur seuil.
    REMARQUE : Un schéma de la procédure CFDB est fourni à la figure 3.

Figure 2 : Assemblage de la CFDB. Schéma de la configuration de la grille maîtresse CFDB et de l’assemblage de la membrane CN. La grille maîtresse est superposée sur la membrane NC pour fournir un motif régulier et adressable pour le repérage et l’immobilisation des échantillons de sérum. Abréviations : CFDB = tache de point acellulaire ; NC = nitrocellulose. Veuillez cliquer ici pour voir une version agrandie de cette figure.

Figure 3 : Représentation schématique du flux de travail CFDB. Dans un test CFDB, une petite quantité (<0,4 μL) d’échantillons de sérum 10x dilués est distribuée manuellement sur une membrane de nitrocellulose prédécoupée (panneau de gauche) à des endroits discrets et adressables (panneau du milieu). Déposer un échantillon de sérum par point en trois taches et immobiliser le contenu protéique, y compris le réservoir total d’anticorps du sérum, sur le substrat NC solide (taches beiges dans le panneau central). Dans cet exemple, les anticorps anti-NP contenus dans les échantillons de sérum peuvent être d’abord liés par le réactif de détection primaire CFDB SpyTag-NP et enfin détectés par le réactif de détection secondaire CFDB SpyCatcher2-Apex2 (bulle agrandie dans le panneau de droite). Cette figure est tirée de Norouzi et ^al.5. Abréviations : CFDB = tache de point acellulaire ; NP = protéine de nucléocapside ; LET = modèle d’expression linéaire. Veuillez cliquer ici pour voir une version agrandie de cette figure.

Résultats

Amplification par PCR du modèle d’expression linéaire de l’antigène cible
Pour amplifier par PCR le SARS-CoV-2 NP LET, des amorces Ter directes et inverses universelles ont été utilisées comme décrit dans la section 1.2 du protocole et 1 μL du produit a été vérifié sur un gel d’agarose (Figure 4) avant de procéder à la purification du produit PCR.

Discussion

La COVID-19 a mis en évidence l’importance de diagnostics accessibles et robustes pour contrôler les épidémies d’infection et optimiser les stratégies de santé mondiale. Les tests sérologiques qui détectent les anticorps protecteurs se sont avérés essentiels pour suivre les profils de transmissibilité des nouveaux variants, identifier les points chauds, guider la mise au point d’un vaccin, trier les cas suspects et protéger les populations vulnérables¹⁴. La pandém...

Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article

Nom	Entreprise	Numéro de catalogue	Commentaires
Échelle d’ADN de 1 kb	NEB	N3232	Utilisé comme marqueur de taille pour les gels d’agarose
20 Acides aminés	Sigma-Aldrich	LAA21-1KT	Un composant de la réaction acellulaire Solution B
Biopoinçon de biopsie de 2 mm  ;	Integra Miltex  ;	33-31-P/25	Pour la préparation de la grille maîtresse CFDB
Chlorhydrate d’acide 5-aminolévulinique  ;	Sigma-Aldrich	A3785	Précurseur de l’hème pour l’induction de la poudre d’agarose SpyCatcher2-Apex2
	BioShop	AGA002	Pour l’analyse électrophorétique de l’anticorps
anti-ADN anti-SARS-CoV2-Nucleocapside	Sinobiological	40588-T62	Pour la détection WB de l’antigène NP produit sans cellule
Bio-Rad ChemiDoc  ; XRS+	Bio-Rad	N/A	Instrument imageur gel
Concentrateurs centrifuges	Cytiva	28-9323-60	Pour la concentration et l’échange tampon de protéines
Centrifugeuse	Eppendorf	EP022628257	Pour la récolte de la culture bactérienne
Coenzyme  ; Un hydrate de sel de sodium (CoA)	Sigma-Aldrich	C3144	Un composant de la réaction acellulaire Solution Un
étalon protéique pré-coloré en couleur (large gamme)	NEB	P7719	Utilisé comme marqueur de taille pour les gels SDS-PAGE Panneau de
sérum Covid-19	RayBiotech	CoV-PosSet	Sérums pré-caractérisés pour la vérification et l’optimisation des réactifs/conditions
CFDBD-(&minus ;)-Sel disodique de l’acide 3-phosphoglycérique (3-PGA)	Sigma-Aldrich	P8877	Composant A de la réaction acellulaire Solution B
Dithiothréitol (DTT)	Sigma-Aldrich	10197777001	Composant des tampons
E. coli 5-alpha	NEB	C2987  ;	pour la préparation de plasmides
E. coli BL21  ;	ONÉ	C2530	Pour la préparation de lysats acellulaires
E. coli BL21 (DE3)	NEB	C2527  ;	Pour l’expression de SpyCatcher2-Apex2
Comprimé inhibiteur de protéase sans EDTA	Sigma-Aldrich	11836153001	un composant du tampon de lyse E. coli
Eppendorf  ; Nouveau-Brunswick ; Innova 43/43R Incubateur Agitateur	Eppendorf	EPM1320	Incubateur pour la croissance de cellules E. coli pour l’expression de protéines et la préparation de lysats acellulaires
Acide folinique	Sigma-Aldrich	47612	Un composant de la réaction acellulaire Solution A
Glycérol	Sigma-Aldrich	G9012	Composant de SpyCatcher2-Apex2 tampon de stockage
Chlorure d’hémine  ;	Sigma-Aldrich	H9039  ;	Pour la supplémentation hémique de SpyCatcher2-Apex2
Peroxyde d’hydrogène 30 %	Sigma-Aldrich	H1009	Pour la fabrication du réactif ECL
Logiciel de laboratoire d’image	Bio-Rad	1709690	pour l’instrument d’imagerie ChemiDoc gel  ;
Isopropyl-b-D-1-thiogalactopyranoside  ;	Bioshop	IPT001	Pour l’induction de SpyCatcher2-Apex2 expressikon
Kanamycin Sulfate	Sigma-Aldrich	60615	Pour la préparation de SpyCatcher2-Apex2 culture bactérienne
LB agar	BioShop	LBL406	Pour la croissance d’E. coli
LB bouillon	BioShop	LBL407	Pour la croissance d’E. coli
luminol  ;	Sigma-Aldrich	A4685	Pour la fabrication du réactif ECL
Lysozyme	Sigma-Aldrich	L6876	Pour la lyse des cellules bactériennes
Acétate de magnésium	Sigma-Aldrich	M5661	Un composant de la réaction acellulaire Solution B
NEBExpress Ni résine  ;	NEB	S1428S	Pour la purification du lait écrémé en poudre SpyCatcher2-Apex2
	Bioshop	SKI400	Pour le blocage des membranes WB et CFDB
Parafilm	Bemis	2099-1337410	Pour l’incubation ECL de CFDB blots d’acide
p-coumarique  ;	Sigma-Aldrich	C9008	Pour la fabrication du réactif ECL
pET24b-SpyCatcher2-Apex2	Laboratoire Pardee Laboratoire	N/A	Utilisé pour l’expression de la protéine SpyCatcher2-Apex2
Boîte de Pétri	Fisherbrand	FB0875712	Conteneur pour l’incubation membranaire WB et CFDB  ;
Solution saline tamponnée au phosphate 10 %	BioShop	PBS405	Composant des tampons
Glutamate de potassium	Sigma-Aldrich	G1501	Un composant de la réaction acellulaire Solution B
Oxalate de potassium monohydraté (acide oxalique)	Sigma-Aldrich	223425	Un composant de la réaction acellulaire Solution A
Gel préfabriqué SDS-PAGE	BioRad	4561036EDU	Pour l’analyse électrophorétique de l’ADN
polymérase haute fidélité de la protéine Q5	ONÉ	M0491	Pour l’amplification PCR des LET
QIAquick PCR purification kit  ;	Qiagen	28106	Pour la purification des LET
Ribonucléotide Solution Set	NEB	N0450S	Un composant de la réaction acellulaire Solution A
Lait écrémé en poudre	BioShop	SKI400	Utilisé comme agent bloquant pour le Western blot et le CFDB
Chlorure de sodium	Sigma-Aldrich	S9625	Un composant des tampons de purification des protéines
Sonicator	Qsonica	Q500	Pour la lyse des cellules bactériennes
Spermidine	Sigma-Aldrich	S2626	Un composant de la réaction acellulaire Solution Un
filtre à seringue	Sigma-Aldrich	SLGSR33SS	Pour la stérilisation des tampons et des solutions
Thermocycleur	BioRad	T100	Instrument pour l’incubation des réactions PCR
ARN de transfert (ARNt)	Sigma-Aldrich	R8759	Un composant de la réaction acellulaire Solution Une
solution saline tamponnée Tris	Thermo Scientific	J60764. K2	Composant du tampon de lavage WB et CFDB
Base Trizma	Sigma-Aldrich	T1503	Pour la fabrication du tampon tris
Tunair SS-5012 Demi-déflecteur Shake Flask, 2,5 L	Cole-Parmer	RK-01835-39	Récipient pour la croissance des cellules E. coli pour l’expression des protéines et la préparation de lysat acellulaire
Tween-20	BioShop	TWN510	Composant du tampon de lavage WB et CFDB
Pince à épiler	Almedic	7728-A10-100	Pour la manipulation du
spectrophotomètre UV-Vis	Thermo Scientific	13400518	Utilisé pour la mesure de la concentration en acides nucléiques et de l’ADN et la culture bactérienne OD
Groupe international de référence de l’OMS pour l’immunoglubuline anti-SARS-CoV-2	NISBC	20/268	Sérums pré-caractérisés pour la vérification et l’optimisation des réactifs/conditions
CFDB&bêta ;-Nicotinamide adénine dinucléotide hydraté (NAD)	Sigma-Aldrich	10127965001	un composant de la réaction acellulaire Solution A