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Article de méthode

Transduction généralisée des neurones néocorticaux de souris par injection sous-arachnoïdienne d’AAV2

1.5K vues

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DOI :

10.3791/68235

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23 mai 2025

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Dans cet article

Résumé

Une nouvelle technique d’administration généralisée d’un virus adéno-associé qui utilise la perfusion de virus sous-arachnoïdien est décrite. Cette méthode assure non seulement une transduction généralisée des neurones néocorticaux de souris dans les couches superficielles, mais entraîne également une expression sélective du transgène dans les neurones pyramidaux de la couche cinq, même en utilisant un promoteur non sélectif.

Résumé

Les virus adéno-associés recombinants sont un outil flexible et puissant pour la délivrance et l’expression de divers gènes d’intérêt dans de nombreux domaines de la biologie expérimentale, en particulier en neurosciences. La méthode la plus populaire pour stimuler l’expression d’un transgène souhaité dans une zone cérébrale particulière consiste à injecter un vecteur AAV directement dans le parenchyme cérébral. Cependant, cette méthode ne permet pas la transduction neuronale généralisée qui est nécessaire pour certaines expériences in vivo . Dans cet article, nous présentons une nouvelle technique d’expression génique généralisée dans le néocortex de la souris basée sur l’infusion virale dans l’espace sous-arachnoïdien du cerveau. Cette méthode de marquage neuronal assure non seulement une transduction généralisée des neurones dans les couches néocorticales superficielles de souris adultes, mais entraîne également l’expression du transgène dans une grande population de neurones pyramidaux de couche cinq avec une spécificité élevée, même en utilisant un promoteur non sélectif fort tel que le CAG. De plus, comme la transduction cellulaire a lieu à une distance significative du site d’injection, cette méthode peut aider à préserver le tissu cérébral pour les enregistrements optiques ou électrophysiologiques ultérieurs de l’activité neuronale.

Introduction

Le cerveau des mammifères se compose de nombreuses cellules inhibitrices, excitatrices et modulatrices interconnectées en circuits par des milliards de synapses1. L’un des principaux défis des neurosciences est de décoder le rôle des différents types de cellules dans l’organisation et la fonction des circuits cérébraux et du comportement. La manipulation de cellules génétiquement définies dans le cerveau nécessite des méthodes pour introduire et exprimer des transgènes. Les systèmes d’administration de gènes basés sur des virus sont de loin la méthode la plus efficace et la plus simple pour l’administration de ....

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Protocole

Les expériences ont été réalisées sur des souris adultes C57Black/6, âgées de 2 à 4 mois, des deux sexes (Centre d’élevage de Pushchino, branche de l’Institut de chimie bioorganique Shemyakin-Ovchinnikov de l’ASR). Les souris ont été logées dans un vivarium à température contrôlée (22 °C ± 2 °C, cycle lumière/obscurité de 12 h, lumières allumées à 08h00) avec de la nourriture et de l’eau à volonté. Toutes les procédures expérimentales ont été menées conformément aux directives ARRIVE et à la directive 2010/63/UE pour l’expérimentation animale. Le protocole d’étude a été approuvé par la Commission d’éthique de l’IHNA RAS (prot....

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Résultats

Dans une série pilote d’expériences, nous avons utilisé la méthode d’injection intracorticale traditionnelle pour transduire la couche cinq neurones pyramidaux dans le néocortex de la souris par AAV2 portant le gène de la channelrhodopsine rapide (oChIEF) fusionné avec la protéine fluorescente EGFP sous le promoteur CaMKII. Conformément à la caractéristique de l’AAV212, nous avons obtenu une zone d’infection relativement petite, ne dépassant pas 1 mm de largeur (Figur.......

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Discussion

Nous avons mis au point une nouvelle méthode pour transduire les neurones néocorticaux de souris en injectant une suspension de particules virales AAV2 dans l’espace sous-arachnoïdien du cerveau. Cela permet une distribution généralisée du virus, presque quatre fois supérieure au volume tissulaire infecté lorsque la même quantité de virus est injectée directement dans le parenchyme cérébral.

L’injection de vecteurs viraux directement dans le liquide céphalo-ra.......

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Déclarations de divulgation

Les auteurs ne déclarent aucun conflit d’intérêts.

Remerciements

Les travaux ont été réalisés avec le soutien financier de la Fondation russe pour la science, subvention 20-15-00398P.

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Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
équipement
10 et micro ; L Seringue étanche au gaz Modèle 1701 RN (5 uL 75 RN Microseringue Hamilton)Compagnie HamiltonPièce/REF # 7634-01, Hamilton ou n° de cat. HAM7634-01, Merck
Aiguille 33 G RN, style de pointe 3Compagnie HamiltonPièce/REF # 7803-05, Hamilton
Microscope binoculaireNikon ou MicromedModèle MC-4 ZOOM
Microscope confocal à balayage laser basé sur CernaThorLabs
Source de lumière froideRWDModèle 76312
Leica VT1000 S Microtome à lame vibranteLeica Biosystems76001-014
Système d’anesthésie à faible débit avec kit de démarrageSociété scientifique Kent13-005-111 (Modèle SomnoSuite)
Pipette mécanique 0,1 &ndash ; 2,5 et micro ; L Eppendorf Recherche plusEppendorf3123000012
Pipette mécanique 10 &ndash ; 100 et micro ; L Eppendorf Recherche plusEppendorf3123000047
Rasoir de sourisRWDModèle CP-5200
Microperceuse avec forets (0,5 mm, rond)RWD78001, 78040
ou Desctop Instrument stéréotaxique numérique, masque d’anesthésie de souris, barres d’oreille de souris (60 degrés)RWDModèles 68027, 68665, 68306
Compresseur d’airBambiBB8
Pipette manuelle monocanal 0,5-10 & micro ; LRAINN17008649
Instrument stéréotaxique pour petits animauxKOPFModèle 962
Injecteur stéréotaxiqueStoelting10-000-004
Instruments chirurgicaux (outils)
Aiguille dentaire 30 g (Ni-pro)Biodent Co. Ltd.Pour fendre la dure-mère
Grattoir à osOutils scientifiques fins10075-16
Pince à osOutils scientifiques fins16025-14Pour enlever l’os du crâne
Spatules incurvéesUsine de fournitures médicales de MojaïskPour retirer le cerveau de la voûte crânienne
Fraise dentaireDRENDEL + ZWEILINGPour la craniotomie ; Forme : en forme de poire / cylindre à extrémité ronde / rond ; Diamètre de la pointe : 0,55-0,8 mm de diamètre
Porte-aiguille (Halsey Micro Needle Holder)Outils scientifiques fins12500-12
Suture chirurgicale en polypropylène ou suture chirurgicale Vicryl (5-0, résorbable)Produits Walter (Ethicon)S139044 (W9442)
Manche de scalpel (#3) avec lames de scalpel (#11)Outils scientifiques fins10003-12, 10011-00
Ciseaux (ciseaux extra étroits)Outils scientifiques fins14088-10pour couper la peau
Ciseaux (ciseaux fins)Outils scientifiques fins14094-11pour couper la suture
Suture chirurgicale PROLENE (Polyproptlène)Ethicon (Johnson & Johnson)
Pince à épiler (Forceps #5)Outils scientifiques fins11252-20
Pince à épiler (pince en inox poli)Outils scientifiques fins11210-20
jetables
Seringue à insuline de 1 mLSITE LIMITÉPour charger de l’huile de vaseline dans une microseringue, pour administrer des médicaments
Plaque de culture cellulaireSPL Sciences de la vie
Cotons-tiges
Lunettes de protectionFisher Scientific12-545E
Aiguille pour seringue à insuline (27 G)SITE LIMITÉPour enlever les débris d’un trou (craniotomie)
Lingettes non pelucheuses CLEANWIPERLien réseau
Lames de microscopeFisher Scientific12-550-15
Essuie-toutLuscan
ParafilmStatLab (en anglais)STLPM996
Gants chirurgicaux stérilesDermagrip
Filtre de seringue stérile (0,2 &mu ; m)Corning431229
Médicaments/Produits chimiques (réactifs)
10 % de formol tamponné ou 4 % de paraformaldéhydeProduits chimiques Thermo ScientificJ61899. AK
Solution alcoolique d’iode (5 %))Renouvellement
Pommade antibiotique Baneocin (bacitracine + néomycine)SandozAgent antibactérien à usage externe
Aqua PolymountPoly-sciences18606-20
Carbomer Eye Gel Vidisic (Gel ophtalmique)BAUSCH+LOMB (Santen)
Microsphères FluoSphere modifiées aux carboxylates (rouge)Thermo Fisher ScientificF-8801
Dexaméthasone (4 mg/mL)Ellara (KRKA)Glucocorticoïde synthétique
H2O distillé
Éthanol (70 %)
Flexoprofène 2,5 % (kétoprofène)VICAnti-inflammatoires non stéroïdiens (AINS)
Solution de glucose 5 %Solopharm
Chèvre anti-Lapin IgG (H+L) Adsorbée Croisée, Alexa Fluor 546Thermo Fisher ScientificA-11010
L’isofluraneKarizoo
solution de lidocaïne (2 % / 4 %)Solopharm
Sérum de chèvre normal (NGS)AbcamAB7481
Saline tamponnée au phosphate (PBS)Eco-servis
Anticorps anti-parvalbumine de lapinMerck MilliporeAB15736
Anticorps monoclonal anti-calbindine recombinant de lapinAbcamAB108404
Saline (0,9 % de NaCl dans H2O)Solopharm
Triton X-100Sigma-Aldrich50-178-1844
Huile de vaselineGenel

Références

  1. Luo, L., Callaway, E. M., Svoboda, K. Genetic dissection of neural circuits. Neuron. 57 (5), 634-660 (2008).
  2. Sena-Esteves, M., Gao, G. Introducing Genes into Mammalian Cells: Viral Vectors. Cold Spring Harb Protoc. 2020 (8), (2020).
  3. Kootstra, N. A., Verma, I. M.

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Réimpressions et autorisations

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