Les protéines se lient à l'actine filamenteuse (F-actine) grâce à des modules distincts actine contraignant. Dans cette vidéo, nous démontrons la procédure de co-sédimentation actine, qui est un test in vitro couramment utilisées pour analyser les protéines ou des domaines spécifiques qui se lient F-actine.
Un abonnement JoVE est requis pour visualiser ce contenu. Connectez-vous ou commencez votre période d'essai gratuite.
Article de méthode
Co-actine sédimentation Assay; pour l'analyse des Binding Protein à F-actine
Dans cet article
Résumé
Résumé
Le cytosquelette d'actine dans la cellule est un réseau de filaments d'actine qui permet le mouvement des cellules et des processus cellulaires, et qui génère des tensions et aide à maintenir la forme cellulaire. Bien que le cytosquelette d'actine est une structure rigide, il est une structure dynamique qui est constamment remodelage. Un certain nombre de protéines peuvent se lier au cytosquelette d'actine. La liaison d'une protéine particulière à la F-actine est souvent souhaité pour soutenir la cellule observations biologiques ou pour mieux comprendre les processus dynamiques dues au remodelage du cytosquelette d'actine. L'actine co-sédimentation dosage est un dosage in vitro couramment utilisées pour analyser la liaison de protéines spécifiques ou de domaines protéiques avec F-actine. Les principes de base de l'analyse implique une incubation de la protéine d'intérêt (pleine longueur ou le domaine d') avec F-actine, étape d'ultracentrifugation à granulés de F-actine et l'analyse de la protéine co-sédimente avec F-actine. L'actine co-sédimentation dosages peuvent être conçus en conséquence de mesurer les affinités de liaison et des dosages d'actine concurrence.
Protocole
1. Préparation de l'actine
La source de l'actine utilisé dans cet essai était non-musculaires plaquettes humaines (β-actine) obtenu à partir de aliquotes Cytosquelette Stock Inc à 10 mg / ml sont conservés dans le congélateur -70 ° C. Pour le dosage, l'actine est dilué à 0,4 mg / ml dans un tampon contenant 5 mM de Tris pH 8, 0,2 mM de CaCl2, 0,2 mM d'ATP et 0,5 mM de DTT, centrifugé à 20000 g pendant 10 min à 4 º C. Le surnageant, qui est l'actine monomérique est prêt à être polymérisée. Polymérisation de l'actine est induite par le KCl 50 mM outre, ATP 1 mM et 2 mM de MgCl2. La polymérisation se produit à température ambiante pendant 1 heure.
2. Préparation de protéines
Dans ce test, nous utilisons le C-terminale de Talin, qui a été purifié comme une protéine GST-étiquetés. La protéine à être utilisé dans le dosage est soumis à une centrifugation à grande vitesse à pré-clair de granulats avant l'incubation avec la F-actine.
La protéine est filée à 100 000 g dans une ultracentrifugeuse Beekman pendant 20 minutes à 22 º C.
3. Actine-protéines d'incubation
Le montant de l'actine et de protéines dans un test varie. Dans cet exemple nous utilisons l'actine en excès. Normalement, un rapport molaire est calculé, par exemple. un rapport de 4:1 molaire de l'actine à la protéine.
Dans le test suivant, le volume final de réaction est de 150 pi. La mémoire tampon dans laquelle la protéine et la F-actine sont incubés dépendra de la protéine à tester et sur les conditions requises. Dans cet exemple, nous utilisons un tampon contenant 10 mM Tris pH 7,0, 1 mM ATP, 0,2 mM de DTT, 1 mM EGTA, 0,1 mM de CaCl2 et MgCl2 2 mM. La protéine et la F-actine sont incubés dans le tampon pendant 1 heure à température ambiante.
4. La sédimentation de F-actine
Après l'incubation, les échantillons sont centrifugés à 100 000 g à 22 º C. Nous utilisons une ultracentrifugeuse Beckman dans la vidéo. Le rotor est soigneusement enlevé afin de ne pas déranger les boulettes.
5. L'analyse des protéines co-sédimentation avec F-actine
Les surnageants sont soigneusement éliminé par pipettage dans un tube Eppendorf et 5 X tampon Laemmli SDS-PAGE de l'échantillon est ajouté. Un volume approprié de tampon Laemmli 1 X échantillon SDS-PAGE est ajouté aux pastilles restantes, pipette de haut en bas, et transférés à de nouveaux tubes Eppendorf. Les quantités relatives de protéines dans les pastilles et les surnageants sont analysés suivant leur séparation par SDS-PAGE et coloration au bleu de Coomassie du gel ou Western Blot.
Afin de déterminer la spécificité de l'interaction des protéines avec l'actine, l'actine dépendante de la concentration de co-sédimentations peut être effectuée. Pour ce genre d'expérience, d'un montant fixe de la protéine et une série de quantités croissantes de l'actine sont incubés, et l'analyse est effectuée comme décrit ci-dessus.
Accès restreint. Veuillez vous connecter ou commencer un essai pour afficher ce contenu.
Discussion
L'actine co-sédimentation est un simple test in vitro pour analyser les protéines se liant à specfic F-actine. Dans cette vidéo, nous démontrons un exemple de comment une simple co-actine de sédimentation peut être effectuée. Nous montrons comment préparer la F-actine, préparer la protéine à tester et à la procédure de l'actine de co-sédimentation. Un certain nombre de points doivent être considérés lors de la réalisation d'actine co-sédimentation des dosages. Par exemple, les composants du tampon pour l'incubation peut vari...
Accès restreint. Veuillez vous connecter ou commencer un essai pour afficher ce contenu.
Remerciements
Merci au Dr Praveen Kumar dans le laboratoire de Wittman à l'UCSF pour le film de l'actine dans des cellules HaCaT.
Accès restreint. Veuillez vous connecter ou commencer un essai pour afficher ce contenu.
Références
- Senetar, M. A., Foster, S. J., McCann, R. O. Intrasteric inhibition mediates the interaction of the I/LWEQ module proteins Talin1, Talin2, Hip1, and Hip12 with actin. Biochemistry. 14, 15418-15428 (2004).
- Goldmann, W. H., Hess, D., Isenberg, G. The effect of intact talin and talin tail fragment on actin filament dynamics and structure depends on pH and ionic strength. Eur J Biochem. 260, 439-445 (1999).
- Lee, H., Bellin, R. M., Walker, D. L., Patel, B., Powers, P., Liu, H., Garcia-Alvarez, B., de Pereda, J., Liddington, R. C., Volkmann, N., Hanein, D., Critchley, D. R., Robson, R. M. Characterization of an Actin-binding Site within the Talin FERM Domain. J Mol Biol. 22, 771-784 (2004).
Accès restreint. Veuillez vous connecter ou commencer un essai pour afficher ce contenu.
Réimpressions et autorisations
