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L’étude a été menée conformément à la Déclaration d’Helsinki et approuvée par le Comité d’éthique institutionnelle de l’Hôpital central populaire de Huizhou (Approbation n° 2022-015). Cette étude n’a pas été enregistrée comme essai clinique en raison de sa conception rétrospective. Le consentement éclairé a été renoncé en raison du caractère rétrospectif de l’analyse, et toutes les données des patients ont été désidentifiées. Les régents et l’équipement utilisé sont listés dans le tableau des matériaux.
1. Conception de l’étude et sélection des patients
En tant qu’étude rétrospective multicentrique, nous reconnaissons le potentiel de biais de sélection. Pour atténuer cela, l’identification des patients suivait un protocole d’inscription consécutif issu des registres prospectifs d’AVC de chaque centre participant. Tous les patients présentant un infarctus cérébral aigu durant la période de l’étude (janvier 2022 à janvier 2025) ont été dépistés pour leur éligibilité, et ceux répondant aux critères d’inclusion ont été recrutés séquentiellement. Les données ont été regroupées par trois institutions : l’hôpital populaire Shaoxin Shangyu, l’hôpital Run Run Shaw et l’hôpital populaire central de Huizhou. Des accords de partage de données ont été établis entre tous les centres participants afin d’assurer une supervision adéquate et un accès aux données.
Pour gérer les données manquantes, une approche d’imputation multiple a été mise en œuvre en utilisant des équations enchaînées pour des variables présentant <5 % de manque. Pour les variables avec >5 % de données manquantes, une analyse complète du cas a été employée, avec un rapport transparent des schémas manquants. Les variables critiques, dont CYP2C19 génotype, le NIHSS de base et le mRS à 3 mois, disposaient de données complètes pour tous les participants. Les confusions potentielles ont été traitées par un ajustement multivarié dans nos modèles statistiques, incluant des facteurs pronostiques connus tels que l’âge, la gravité initiale de l’AVC, les facteurs de risque vasculaire et les médicaments concomitants. Plus précisément, des données sur les médicaments concomitants (antiplaquettaires, statines, antihypertenseurs) ont été collectées et ajustées lors des analyses.
- Critères d’inclusion
Les critères d’inclusion étaient les suivants : (1) Diagnostic d’infarctus cérébral aigu confirmé par des critères d’imagerie et cliniques selon les Directives chinoises pour le diagnostic et le traitement de l’AVC ischémique aigu ; (2) Toute première nage avec un temps d’entrée à admission <72 h ; (3) Traitement au butylphtalide (0,1 g par capsule) à une dose de 0,2 g trois fois par jour à jeun, initié dans les 24 heures suivant l’admission ; (4) Pas de traitement thrombolytique ou anticoagulant préalable.
- Critères d’exclusion
Les critères d’exclusion étaient les suivants : (1) troubles psychiatriques comorbides ou déficience cognitive ; (2) Dysfonctionnement hépatique, rénal ou cardiaque sévère ; (3) Hypersensibilité au médicament étudié ; (4) Maladies inflammatoires ou auto-immunes systémiques. Les patients ont été stratifiés en groupes à bon pronostic (mRS ≤2) et à mauvais pronostic (mRS ≥3) sur la base de scores de7 sur l’échelle de Rankin modifiée à 3 mois. Le processus d’inclusion des patients est illustré à la Figure 1.
L’adhésion des patients à la thérapie au butylphtalalide a été suivie par observation directe de l’administration des médicaments lors de l’hospitalisation, le comptage de comprimés et la revue du journal médicamenteux lors des visites de suivi, des entretiens téléphoniques structurés toutes les deux semaines pour évaluer l’adhésion et les effets indésirables, ainsi que la revue des dossiers de renouvellement de pharmacie pour les consultations externes. Les patients présentant une adhésion de <80 % ont été exclus de l’analyse (n=7). Le critère de suivi à 3 mois a été sélectionné sur la base des normes établies de recherche sur les résultats d’AVC, car la RSM à 90 jours après l’AVC est largement acceptée comme un critère principal pour la période critique de récupération.
2. Collecte de données cliniques
Les données ont été collectées de manière systématique à l’aide de formulaires électroniques de rapports de cas couvrant cinq domaines : caractéristiques démographiques (âge, sexe, indice de masse corporelle, tableau 1), facteurs de risque vasculaires (hypertension, diabète sucré, antécédents de tabagisme, antécédents de consommation d’alcool), présentation clinique (site d’infarctus, score initial NIHSS), paramètres de laboratoire et détails du traitement. Les biomarqueurs sanguins ont été mesurés comme suit :
- Profil lipidique (TC, TG, LDL-C, HDL-C)
Analysé à l’aide d’un analyseur biochimique automatisé, avec une plage d’essai de 0 à 20 mmol/L pour le TC, 0 à 10 mmol/L pour TG, 0 à 15 mmol/L pour le LDL-C, et 0,5 à 2,0 mmol/L pour le HDL-C.
- Homocystéine sérique (Hcy)
Mesuré par ELISA (plage de détection 5–50 μmol/L, coefficient de variation <5 %). Les échantillons ont été stockés à -80 °C dans les 2 heures suivant la collecte pour éviter la dégradation.
3. CYP2C19 génotypage
- Collecte d’échantillons et extraction d’ADN
Du sang veineux à jeun (5 mL) a été prélevé dans la veine cubitale médiane le matin. Après 30 minutes de coagulation à température ambiante, les échantillons étaient centrifugés à 1 600 × g pendant 10 minutes à 4 °C à l’aide d’une centrifugeuse à grande vitesse pour isoler le sérum. L’ADN génomique a été extrait de 300 μL de sérum selon le protocole du fabricant. En résumé, des échantillons ont été incubés avec un tampon de lyse de 300 μL à 56 °C pendant 10 minutes, suivi de l’ajout d’un éthanol absolu de 100 μL. Le mélange a été transféré dans des colonnes de purification et centrifugé à 12 000 × g pendant 1 minute à température ambiante. L’ADN a été élué avec un tampon d’élution préchauffé de 50 μL (70 °C) après deux étapes de lavage avec un tampon de lavage de 500 μL chacune, avec centrifugation à 12 000 × g pendant 1 minute après chaque lavage. La concentration finale d’ADN a été ajustée à 50–100 ng/μL à l’aide d’un spectrophotomètre et stockée à -20 °C.
- Génotypage PCR en temps réel
CYP2C19 génotypage a été réalisé par PCR en temps réel. Le mélange réactionnel de 20 μL comprenait 10 μL de mélange maître TaqMan 2× 1 μL, 1 μL de mélange amorce-sonde, un gabarit d’ADN de 2 μL et 7 μL d’eau sans nucléase. Les conditions de cycle thermique étaient fixées comme suit : dénaturation initiale à 95 °C pendant 30 secondes, suivie de 40 cycles de dénaturation à 95 °C pendant 5 secondes et recuit/extension combinée à 60 °C pendant 34 secondes. Les données de fluorescence ont été collectées lors de l’étape de recuit/extension.
- Confirmation du génotype et contrôle qualité
Les appels de génotype ont été confirmés grâce au séquençage Hi-SNP de deuxième génération avec une couverture de 100 ×. Pour des résultats discordants (n=3), une analyse de polymorphisme de longueur de fragment de restriction a été utilisée comme méthode de secours : un produit PCR de 20 μL a été incubé avec 1 μL d’enzyme de restriction HpyCH4V et un tampon correspondant de 4 μL à 37 °C pendant 1 heure, suivi d’une séparation par électrophorèse en gel d’agarose à 2 % à 100 V pendant 45 minutes.
Des mesures rigoureuses de contrôle qualité ont été mises en place. Tous les échantillons ont été traités en double avec des tests de réplication aveugles ; des contrôles internes (génotypes connus) étaient inclus dans chaque test PCR ; la concordance entre les résultats de séquençage PCR en temps réel et Hi-SNP était de 100 % ; Des échantillons sélectionnés au hasard (10 %) ont été envoyés à un laboratoire indépendant pour validation, atteignant une concordance de 100 % ; les taux d’appels ont dépassé 99,5 % avec un score minimum de qualité génotypique de 30e semaines.
- Classification du phénotype métabolique
Les phénotypes métaboliques ont été catégorisés selon CYP2C19 génotype comme suit : métabolisateurs faibles (*2/*2, *2/*3, *3/*3) ; Métabolisateurs intermédiaires (*3/*17, *2/*17, *1/*2, *1/*3) ; Métabolisateurs rapides (*1/*1). Ce schéma de classification à trois niveaux était utilisé pour assurer la cohérence avec les pratiques régionales de laboratoire clinique. La fréquence de l’allèle *17 et la distribution des génotypes au sein du groupe IM sont détaillées dans la section Résultats.
4. Analyse statistique
Les analyses statistiques ont été réalisées à l’aide de la version 25.0 de SPSS. Les données catégorielles ont été exprimées comme [n ( %)] et comparées via des tests χ2 (avec correction de Yates pour de petits échantillons). Les variables continues ont été testées pour la normalité à l’aide du test de Shapiro-Wilk ; les données normalement distribuées étaient présentées comme moyenne ± écart-type et analysées avec des tests t indépendants, tandis que les données non normales étaient analysées avec des tests Mann-Whitney U.
La multicolinéarité a été évaluée à l’aide de tolérance (≥0,1) et du facteur d’inflation de variance (VIF <10). L’analyse de régression logistique (utilisant le menu Analyze → Regression → Binary Logistic path dans SPSS) a été utilisée pour identifier des facteurs pronostiques indépendants, avec des critères d’entrée et de sortie fixés respectivement à P <0,05 et P >0,10. Les variables saisies dans le modèle comprenaient les niveaux de Hcy (continus), le score NIHSS de base (continu), l’hypertension (catégorique) et CYP2C19 phénotype métabolique (catégorique, avec un métabolisateur rapide comme référence). Le test de bonté de l’ajustement Hosmer-Lemeshow a été réalisé pour évaluer l’étalonnage du modèle. Un P à deux bras <0,05 était considéré comme statistiquement significatif.
Les tailles d’effet ont été calculées comme suit : pour les variables continues, le d de Cohen a été calculé à l’aide de la fonction T Test Analyze < Compare MeansIndependent-Samples avec un calcul supplémentaire de taille d’effet activé ; pour les variables catégorielles, le coefficient phi a été obtenu à partir du résultat du test χ2 sous Analyse des tableaux croisés de statistiques descriptives avec Phi et V de Cramer sélectionnés dans les options Statistiques.