L’ubiquitination, une modification post-traductionnelle, est un régulateur critique de la fonction intracellulaire des protéines. L’ubiquitination module les fonctions des protéines en favorisant la dégradation protéosomale ou en modifiant la localisation subcellulaire via un signalement dépendant de la chaîne de l’ubiquitine. Ici, nous décrivons deux méthodes de lyse cellulaire pour détecter les niveaux d’ubiquitination de SMAD2 dans HEK293T cellules et comparons leur efficacité dans l’analyse des niveaux d’ubiquitination des protéines. La surexpression des protéines dans les cellules a été induite par transfection transitoire. Les plasmides (HA-Ub, FLAG-SMAD2 et MYC-SMURF2) et les réactifs de transfection ont été ajoutés séparément au milieu basal, mélangés, puis le mélange a été ajouté aux cellules. Avant la récolte, la MG132 a été ajoutée pour inhiber la dégradation protéosomale et améliorer l’accumulation ubiquitinée des protéines. La principale divergence entre les deux approches expérimentales réside dans leurs méthodes de lyse cellulaire — la méthode du bain de glace (réalisée à 4 °C) et la méthode de traitement thermique (impliquant l’incubation à 95 °C), qui affectent considérablement l’efficacité de la lyse des protéines. Après la lyse cellulaire, le lysat cellulaire, les billes d’agarose et l’anticorps FLAG ont été mélangés et incubés à 4 °C pendant la nuit. Les protéines ubiquitinées ont ensuite été détectées par analyse western blot. Avant la détection de protéines ubiquitinées, un anticorps à chaîne légère était utilisé pour l’incubation secondaire des anticorps. Ensuite, des bandes d’ubiquitination ont été détectées. Les résultats montrent que la méthode du bain de glace et la méthode de traitement thermique peuvent être utilisées pour détecter les niveaux d’ubiquitination, tandis que la méthode de traitement thermique peut faciliter la détection de l’ubiquitination de SMAD2. Cette étude décrit et compare deux méthodes de lyse cellulaire pour mesurer les niveaux d’ubiquitination dans les cellules de mammifères, en utilisant SMURF2/SMAD2 comme modèle, afin d’aider les chercheurs à sélectionner des méthodes plus appropriées pour détecter les niveaux d’ubiquitination des protéines du substrat.