Ce protocole clinique a été approuvé par le Comité d’éthique de l’Hôpital Populaire de Hengshui (Approbation n° 2019-2-013). Tous les participants ou leurs tuteurs légaux ont fourni un consentement éclairé écrit avant l’inclusion. L’étude respectait la Déclaration d’Helsinki et les directives institutionnelles pour l’éthique de la recherche humaine.
Préparation d’un nanocomposite argent-carbone (Ag-C)
Pour synthétiser le nanocomposite Ag-C, 3,0 g de tartrate de potassium sodique ont été pesés avec précision et placés dans un creuset de quartz de 50 mL à l’intérieur d’un four tubulaire. L’échantillon a été chauffé à 400 °C à un rythme de 15 °C/min et maintenu pendant 6 heures, puis laissé refroidir à température ambiante (~25 °C). Le produit a été transféré dans un bécher en verre de 250 mL et dispersé dans 80 mL d’eau déionisée (résistivité ≥18 MΩ·cm) à l’aide d’un agitateur magnétique à 400 tr/min pendant 10 minutes. La suspension a été centrifugée à 10 000 x g pendant 10 minutes à 4 °C, et le surnageant brun contenant des points quantiques de carbone (CQD) a été collecté. Le surnageant a été concentré à 20 mL à 80 °C lors de l’agitation, suivi de l’ajout de 60 mL d’acétone et de mélange vortex pendant 1 minute. Après centrifugation à 9 500 x g pendant 20 minutes à 4 °C, le surnageant jaune clair a été collecté sous forme de solution d’origine CQD. Pour préparer le réactif de Tollens, 1 mLd’AgNO 3 à 0,5 M a été mélangé avec 1,04 mL d’eau ammoniac et 0,65 mL de 3 M NaOH, suivi de l’ajout de 17,3 mL d’eau déionisée sous brassage continu. Dans une fiole à trois cols enveloppée dans du papier aluminium, 25 mL de solution CQD et 75 mL d’eau déionisée ont été combinés et brassés à 500 tr/min pendant 5 minutes. Le pH a été ajusté à environ 7,0 avec de l’eau concentrée à l’ammoniac, après quoi 1 mL de réactif de Tollens a été ajouté. Le mélange a été chauffé à 120 °C pendant 20 minutes dans des conditions sombres. Après refroidissement à température ambiante, la solution jaune d’Ag-C était obtenue et conservée à 4 °C jusqu’à utilisation.
ATTENTION : Le NaOH et l’eau à l’ammoniac sont corrosifs et libèrent des vapeurs irritantes. Gérez toutes les réactions dans une hotte chimique en portant des gants, des lunettes de protection et une blouse de laboratoire. Ne scellez pas hermétiquement les contenants chauffés pour éviter l’accumulation de pression.
Préparation de pansements antibactériens en nano-argent (NSAD)
Pour préparer le mélange de solvants, 15 mL d’eau déionisée ont été mélangés à 200 μL d’acide acétique glaciaire dans un bécher en verre de 100 mL. À cela, 0,1 mL de la solution d’Ag-C préparée (22 mg/L), 0,2 mL de glycérol et 60 mg de poloxamer ont été ajoutés et dissous complètement à 50 °C avec un brassage magnétique. Par la suite, 0,6 g de poudre de chitosan a été progressivement incorporé pour éviter les agglutinements et remué continuellement pendant 30 minutes jusqu’à ce qu’elle soit homogène. Ensuite, 2 mL de 1 M deNaHCO 3 ont été ajoutés goutte à goutte pendant le remuage pour induire une légère mousse, suivis de 10 minutes supplémentaires de mélange. Le volume total a été ajusté à 20 mL avec de l’eau déionisée, et la solution a été dégazée par ultrasons pendant 5 minutes. La solution homogène a été versée dans un moule rectangulaire (14 cm x 8 cm x 0,5 cm), scellée avec du film plastique, puis laissée à gélifier pendant 48 à 72 heures à température ambiante (20-25 °C). Après la gélification, le film était retiré et séché dans un four à air forcé à 40 °C pendant 12 à 18 heures, donnant des films NSAD d’environ 1 mm d’épaisseur. Notez la température ambiante et l’humidité lors de la gélification, car elles influencent l’uniformité du film et la résistance à la traction. Jetez tout film contenant des fissures ou des bulles visibles.
Caractérisation du nanocomposite Ag-C
Une goutte de solution diluée d’Ag-C était placée sur une grille de microscopie électronique à transmission en cuivre (TEM) recouverte de carbone et séchée sous lumière infrarouge pendant 10 minutes. Les échantillons ont été imagés à 100 kV sous un TEM. La taille des particules a été analysée à l’aide du logiciel ImageJ en mesurant au moins 200 particules sélectionnées au hasard, et les données ont été exprimées en moyenne ± SD.
Évaluation de l’activité antibactérienne
Staphylococcus aureus (ATCC 29213) et Escherichia coli (ATCC 25922) ont été cultivés dans un bouillon de soja à tryptone (TSB) pendant la nuit à 37 °C. La suspension bactérienne a été ajustée à une densité optique de600 = 0,1 (~1 x 107 UFC/mL). Les échantillons ont été divisés en trois groupes : témoins traités à l’eau déionisés, contrôles positifs traités à l’amoxicilline (10 μg/mL) et groupes d’essai traités à nanocomposites Ag-C (teneur équivalente en Ag de 10 μg/mL). Les cultures ont été incubées à 37 °C puis secouées à 150 tr/min pendant 7 jours. Chaque jour, 100 μL d’échantillons étaient prélevés, dilués en série, déposés sur de l’agar TSB, puis incubés pendant 24 heures. Les unités formant des colonies (UFC) ont été comptabilisées, et les taux d’inhibition ( %) ont été calculés comme [(N0− Nt)/N0] x 100. Chaque expérience a été réalisée en triple exemplaire, et les résultats ont été rapportés en moyenne ± DS.
ATTENTION : Manipulez toutes les cultures bactériennes dans un cabinet de biosécurité niveau II. Autoclave tous les déchets à 121 °C pendant 20 minutes avant leur élimination.
Comportement de gonflement du NSAD
Des échantillons carrés de NSAD (1 cm x 1 cm) ont été pesés pour obtenir le poids à sec (W0). Chaque échantillon a été immergé dans 10 mL de solution physiologique à 37 °C. À 1h, 6h, 12h et 24h, les échantillons étaient prélevés, tapotés avec du papier filtrant et pesés (Wt). Le rapport de gonflement ( %) a été calculé comme [(Poids − F0)/Poids 0] x 100. Toutes les mesures ont été effectuées en triple exemplaire, et les résultats ont été rapportés en moyenne ± DS.
Assemblage et application du VAC combiné avec le NSAD
Le film NSAD préparé a été découpé pour correspondre à la taille de la plaie à l’aide de ciseaux stériles et appliqué directement sur le lit de la plaie. Deux tubes de drainage stériles en silicone (épaisseur de paroi de 1 mm, micropores de 0,4 à 0,5 mm) ont été insérés sous le NSAD. L’ensemble de la plaie et 2 à 3 cm de peau intacte environnante ont été scellés avec un film de polyuréthane transparent pour assurer une couverture hermétique. Les tuyaux de drainage étaient connectés à une source continue de pression négative maintenue entre -60 kPa et -80 kPa pendant 72 heures. Le sceau était inspecté quotidiennement, et l’exsudat collecté était enregistré pour sa couleur et son volume. Les pansements étaient remplacés tous les 3 à 5 jours ou avant en cas de fuite. La thérapie VAC a été interrompue une fois que le tissu de granulation a complètement recouvert la plaie. Confirmez l’hémostasie complète avant de sceller la plaie. Si un saignement actif survient, réduisez temporairement la pression négative à -40 kPa. Surveillez l’inconfort du patient, une douleur excessive ou un dysfonctionnement de l’appareil.
Gestion des déchets
Tous les résidus contenant de l’argent et alcalins étaient collectés dans des contenants étiquetés pour leur élimination des déchets dangereux. Les solutions alcalines ont été neutralisées à un pH 7 avant l’évacuation. Les déchets biologiques étaient stérilisés par autoclavage et éliminés conformément aux réglementations hospitalières sur la biosécurité.
Patients et conception de l’étude
Un total de 300 patients diagnostiqués avec des fractures tibiales ouvertes de type I ou II (OTF) de type I ou II ont été recrutés au Département d’orthopédie traumatologique de l’Hôpital populaire de Hengshui, entre novembre 2019 et novembre 2022. Les patients ont été dépistés selon des critères d’inclusion et d’exclusion prédéfinis. Les critères d’inclusion étaient : (1) âge entre 18 et 70 ans ; (2) fracture de type Gustilo I ou II confirmée sur la base d’une évaluation clinique et radiologique ; (3) absence de lésion vasculaire ou nerveuse majeure ; et (4) capacité à fournir un consentement éclairé et à se conformer au suivi postopératoire. Les critères d’exclusion comprenaient : (1) Fractures de type Gustilo III ; (2) comorbidités sévères telles que le diabète non contrôlé, la maladie vasculaire périphérique, une infection chronique ou une déficience immunitaire ; (3) fractures pathologiques ; et (4) la grossesse ou les troubles de la coagulation. La randomisation a été réalisée à l’aide d’une séquence générée par ordinateur avec randomisation par blocs (taille du bloc = 6). La dissimulation de l’allocation a été assurée à l’aide d’enveloppes opaques scellées préparées par un statisticien indépendant. Les patients ont été répartis équitablement en trois groupes (n = 100 chacun) : le groupe 1 a reçu une réduction fermée et une fixation intramédullaire des ongles (CRINF) avec des soins conventionnels de plaie ; Le groupe 2 a reçu le CRINF combiné à la fermeture assistée par vide (VAC) ; et le groupe 3 a reçu le CRINF avec un pansement antibactérien en nanosilver (NSAD) et VAC. Toutes les interventions ont été réalisées par la même équipe chirurgicale afin de minimiser le biais de l’opérateur. Les évaluateurs de résultats étaient aveugles quant à l’allocation des traitements lors de l’évaluation des scores de cicatrisation, d’infection et de douleur. Tous les patients ont été suivis pendant 9 mois après l’opération afin d’évaluer la cicatrisation des fractures et la récupération fonctionnelle.
Plan de traitement pour les OTF de Gustilo de type I et II
Les patients ont subi une anesthésie (générale, spinale ou locale) selon la gravité de la blessure et l’état médical. Après un débridement préliminaire, les plaies ont été soigneusement irriguées avec du sérum physiologique stérile et du peroxyde d’hydrogène ; Le tissu dévitalisé a été taillé, et les bords mous ont été provisoirement suturés selon les besoins. La stabilisation de la fracture a été réalisée par réduction fermée et fixation intramédullaire de l’ongle selon des procédures orthopédiquesstandard 17. Pour le Groupe 3, un film NSAD stérile a été découpé pour correspondre aux dimensions de la plaie et appliqué sur le lit de la plaie ; Deux drains en silicone étaient placés sous le pansement. Un film de polyuréthane semi-perméable scellait la blessure, ainsi que 2 à 3 cm de peau intacte environnante. L’étanchéité à l’air et l’hémostasie ont été confirmées avant la succion ; Les voies à épingles (si présentes) étaient recouvertes de gaze stérile. Une pression négative continue était appliquée à -60 à -80 kPa et ajustée selon la taille et la profondeur de la plaie, avec un remplacement des pansements tous les 3 à 5 jours ou avant en cas de fuite/saturation. Pour les groupes 1 et 2, les blessures étaient recouvertes avec une gaze pétroliatum stérile et changées toutes les 48 à 72 heures. Les soins postopératoires comprenaient des antibiotiques prophylactiques à large spectre pendant 3 à 5 jours (céphalosporines ou fluoroquinolones), une couverture anaérobie avec du métronidazole aubesoin 18, une thérapie anti-inflammatoire et analgésique, le contrôle de l’œdème, des mesures de promotion de la circulation et un soutien nutritionnel (y compris la supplémentation en protéines). Les patients présentant une atteinte neurovasculaire ont reçu des agents neurotrophiques et anti-œdémiques/antispasmodiques lorsque cela est approprié. Un suivi en laboratoire (numération sanguine complète, taux de sédimentation des érythrocytes, protéine C-réactive) a été réalisé lors des visites postopératoires programmées pour surveiller l’infection. La rééducation a commencé par des contractions isométriques et un mouvement articulaire doux dès le troisième jour, progressant vers une amplitude active de mouvement après ~1 semaine tolérée. Le suivi radiographique a été obtenu vers 1 mois, 3 mois, 6 mois et 9 mois ; la prise de poids graduée a commencé une fois que le pont entre les callosités et la continuité avec le cortex tibial étaient visibles à la radiographie et la douleur clinique autorisée.
Indices d’observation
Les principales mesures de résultat comprenaient le temps de cicatrisation, le temps de cicatrisation des fractures, le taux de cicatrisation et le taux de cicatrisation des fractures. Les critères secondaires comprenaient l’incidence des complications postopératoires (infection de surface, infection profonde, union retardée, embolie graisseuse, infection du tube aiguilleux et non-union infectée), la durée de l’hospitalisation, les coûts médicaux totaux et l’intensité de la douleur postopératoire. L’intensité de la douleur a été évaluée à l’aide d’une échelle d’évaluation numérique (NRS) de 0 (pas de douleur) à 10 (pire douleur imaginable). La cicatrisation des plaies était définie comme une épithélialisation complète sans exsudat, tandis que la cicatrisation de la fracture était confirmée radiographiquement en reliant les callosités à au moins trois cortexs. Les évaluations de suivi ont été effectuées à 1 mois, 3 mois, 6 mois et 9 mois après l’opération, incluant l’évaluation clinique et la radiographie.
Analyse statistique
Les analyses statistiques ont été réalisées à l’aide de la version 20.0 de SPSS. Les variables continues ont été testées pour la normalité et exprimées en moyenne ± écart-type (DS). Les différences entre les trois groupes ont été analysées à l’aide d’ANOVA unidirectionnelle, puis du test post-hoc de Tukey pour comparaisons multiples. Les données distribuées de manière non normale ont été analysées à l’aide du test de Kruskal-Wallis. Les variables catégorielles étaient exprimées en comptages et pourcentages, puis analysées à l’aide du test du chi carré (χ²) ou du test exact de Fisher lorsque cela était approprié. Les intervalles de confiance (IC) à 95 % ont été calculés pour des paramètres clés. La signification statistique a été fixée à p < 0,05. Toutes les analyses ont été réalisées par un biostatisticien indépendant, aveuglé à l’allocation des groupes.