Ce protocole a été approuvé par le Comité de bien-être animal et d’éthique du département des sciences des animaux de laboratoire de l’Université Fudan (Approbation n° : 2019 Huashan Hospital JS-008).
Établissement du modèle du rat
Blessure par rupture du tronc supérieur du côté gauche
La température ambiante était maintenue entre 23 et 25 °C. Les rats Sprague-Dawley ont été anesthésés avec un pentobarbital sodique intrapéritonéal à 1 % (0,4 mL/100 g de poids corporel). Après l’induction de l’anesthésie, le rat était placé en position couchée sur la planche d’opération, les membres antérieurs étant enlevés à 90° du tronc. Le cou, la poitrine, l’aisselle et, chez les animaux NG uniquement, les deux membres postérieurs ont été rasés. La peau a été désinfectée avec de l’iode povidone. Une incision cervicale de 3 cm de la ligne médiane a été réalisée du cartilage cricoïde jusqu’à la bordure supérieure du manubrium sterni. Au microscope opératoire, les tissus sous-cutanés et les fascias profonds ont été disséqués couche par couche pour exposer les muscles sternohyoïdien, sternomastoïdien, pectoral majeur et pectoral mineur. Ces quatre muscles étaient rétractés à l’aide de rétracteurs stériles et faits sur mesure. Les extrémités distales des écarteurs étaient fixées à la planche d’opération avec des élastiques, et la tension était ajustée pour obtenir une exposition optimale tout en protégeant la veine jugulaire interne. Les muscles scalène antérieur et moyen ont été identifiés, et la portion supraclaviculaire du plexus brachial dans l’espace interscalène a été exposée (Figure 1A). Les racines C5 et C6 ont été sectionnées 5 mm distalement à leurs forames intervertébraux respectifs, puis un segment de 5 mm a été réséqué pour créer un espace défini (Figure 1B). Dans le groupe NT, les moignons proximaux de C5 et C6 ont été suturés aux tissus mous adjacents afin d’empêcher les axones régénérants d’entrer dans la voie distale.
Établissement du modèle NG
Une incision en forme de L a été réalisée le long de la face dorsolatérale de la patte arrière, à travers la malléole latérale, et le long de la face latérale de la jambe inférieure. Au microscope opératoire, le tissu sous-cutané et le fascia profond ont été disséqués couche par couche, en prenant soin de protéger la petite veine saphénine, puis le nerf sural a été exposé et prélevé. Les nerfs suraux bilatéraux donnaient une longueur totale de 8 cm. Après avoir coupé le tissu conjonctif périneural, chaque nerf a été divisé en huit segments de 1 cm. Le nerf suprascapulaire était sectionné à son origine depuis le tronc supérieur. Un greffon a été utilisé pour faire le pont entre C5 et le nerf suprascapulaire ; trois greffons de C5 et quatre greffons de C6 sur le tronc supérieur (Figure 1C).
Établissement du modèle NT
L’incision cervicale de la ligne médiane était étendue d’environ 2,5 cm distalement vers le haut du bras. Au point où émerge la branche cutanée pectorale latérale, le muscle pectoral majeur a été incisé le long de la direction des fibres entre le pectoral majeur et le biceps. Le petit pectoral profond a été disséqué de façon brutale pour exposer les cordons du plexus brachial passant sous le grand pectoral. Le nerf ulnaire prend naissance dans la moelle médiale et parcourt le plus médian à l’intérieur du segment du cordon (Figure 1D). Le nerf musculocutané prend naissance dans la moelle latérale, passe sous la bordure inférieure du conte majeur jusqu’au bras, puis pénètre enfin dans le ventre du biceps brachien, s’étendant le plus latéralement dans le segment du cordon (Figure 1D). Le nerf radial prend naissance dans la moelle postérieure, passe sous le bord inférieur du tendon du grand dorsal jusqu’au bras postérieur, et produit trois branches alimentant les têtes longue, médiale et latérale du triceps. Le nerf axillaire prend également naissance à partir de la moelle postérieure, traverse l’espace quadrangulaire et se divise en branches antérieure et postérieure qui innervent le muscle deltoïde.
Transfert du nerf accessoire spinal vers le nerf suprascapulaire
Le muscle sternocléidomastoïdien a été rétracté dans l’incision cervicale médiane pour exposer le nerf accessoire spinal. Le nerf émerge sous le muscle digastrique, atteint le tiers moyen de la bordure médiale sternocléidomastoïdienne, dégage la branche sternocléidomastoïdienne, continue le long de la bordure postérieure de ce muscle et descend latéralement dans le cou pour innerver le trapèze. La branche sternocléidomastoïdienne a été transsectée pour éliminer la traction sur le nerf accessoire qui aurait pu perturber le site de coaptation après le transfert. La branche du trapèze était divisée à son entrée en muscle. Le nerf suprascapulaire était sectionné à son origine distalement par rapport au tronc supérieur. La branche trapèze du nerf accessoire a été coaptée au nerf suprascapulaire par une seule suture synthétique 10-0 en polypropylène (Figure 1E).
Transfert du fascicule du nerf ulnaire vers la branche biceps-motrice du nerf musculocutané (procédure d’Oberlin)
Le tronc principal du nerf musculocutané était mobilisé distalement jusqu’à ce que toute la branche motrice du biceps soit complètement exposée. Au niveau du tiers moyen de la branche motrice du biceps, un fascicule de 6 mm provenant de la face latérale du nerf ulnaire a été prélevé, et son extrémité distale a été fortement sectionnée. La branche motrice du biceps a été sectionnée à son origine à partir du tronc nerveux musculocuté. Le fascicule ulnaire mobilisé a été relié à la branche motrice du biceps avec une seule suture synthétique en polypropylène 10-0. L’exposition complète de la branche motrice du biceps a deux objectifs : (1) identifier le site exact de prélèvement du fascicule du nerf ulnaire, et (2) assurer une coaptation sans tension après transfert (Figure 1F).
Transfert de la branche radiale du triceps à tête longue vers la branche antérieure du nerf axillaire (procédure de Leechavengvong)
Le rat a été repositionné en position couchée avec le membre antérieur enlevé à 90° du tronc. La face dorsale du bras supérieur gauche a été rasée et désinfectée. Une incision longitudinale de 3,5 cm a été réalisée sur la face dorsale du bras supérieur gauche, s’étendant de l’articulation de l’épaule jusqu’au niveau médio-huméral. Sous le microscope opératoire, les tissus sous-cutanés et les fascias profonds ont été disséqués couche par couche. Le muscle deltoïdien a été rétracté pour exposer l’espace quadrangulaire sous-jacent, où le tronc principal du nerf axillaire et les vaisseaux huméraux circumflexes postérieurs étaient visibles sortant de cet espace. Le nerf axillaire était mobilisé distalement jusqu’à ce que les divisions antérieure et postérieure soient entièrement exposées juste avant d’entrer dans le ventre du muscle deltoïdien. Dans la même incision, le tronc principal du nerf radial a été identifié entre les têtes longues et latérales du triceps. Le nerf radial a été mobilisé distalement jusqu’à ce que toute la branche motrice menant à la longue tête du triceps soit clairement visualisée (Figure 1G). La branche du triceps à longue tête était tranchée à son entrée dans le muscle, et elle se réfléchissait proximalement pour approcher la branche antérieure du nerf axillaire. La branche antérieure du nerf axillaire était tranchée à son origine depuis le tronc principal, et elle était réfléchie distalement. La branche du triceps à tête longue vers la branche antérieure du nerf axillaire a été rejointe avec une seule suture synthétique en polypropylène 10-0 (Figure 1H).
Après l’achèvement de toutes les reconstructions nerveuses, chaque champ chirurgical a été irrigué avec du sérum physiologique stérile, et chaque site de coaptation a été minutieusement inspecté pour en vérifier l’intégrité. Toutes les incisions étaient fermées en couches : le muscle pectoral majeur était approximé par des sutures de soie 5-0 non absorbables (requises uniquement dans l’incision cervicale du groupe NT), suivies du fascia sous-cutané et de la peau. Comme chaque coaptation nerveuse a été réalisée sans tension, l’immobilisation post-opératoire des membres supérieurs était inutile.
Évaluation comportementale
Ochiai score13
Le rat fut soulevé par la queue de sorte que son corps soit suspendu à 30 cm au-dessus de la table, et la posture des deux membres antérieurs fut observée. Le rat a été placé sur une piste confinée (50 cm de long × 10 cm de large) sur la table pour observer la démarche de ses membres antérieurs en marchant. Toute la piste était recouverte de papier blanc, et le départ était humidifié à l’encre noire. Au fur et à mesure que le rat avance, des empreintes claires sont obtenues. 0 points – lorsqu’ils sont suspendus, les deux membres antérieurs pendent droit vers le sol de manière détendue (Figure 2A-1) ; pendant la marche, aucun des membres antérieurs n’est traîné (Figure 2A-2). 1 point – lorsqu’il est suspendu, le membre antérieur affecté est légèrement adduit et fléchi (Figure 2B-1) ; en marchant, on observe un léger traînement dû à une flexion limitée des coudes (Figure 2B-2). 2 points – lorsqu’il est suspendu, le membre antérieur affecté est entièrement fléchi et adduit (Figure 2C-1) ; lors de la marche, un traînage sévère est visible (Figure 2C-2).
Test de la faute du pied de Barth13
Une grille métallique horizontale (50 cm × 38 cm) était préparée surélevée de 11 cm au-dessus de la table ; chaque carré de grille mesure 1,5 cm. Le rat a été placé sur la grille ; chaque fois que le membre antérieur affecté glisse à travers une ouverture de grille, il est enregistré comme une « faille du pied » (Figure 3). Le nombre de fautes du pied causées par le membre affecté en 2 minutes a été compté.
Test de toilettage Terzis14
Le rat a été placé dans une boîte d’observation transparente ouverte. Environ 1 à 3 mL de solution saline normale a été pulvérisée sur le museau et le visage du rat, et ses tentatives d’élimination des gouttelettes d’eau ont été observées.
Grade 0 – aucune réponse du membre affecté.
Grade 1 – le membre affecté se fléchit au niveau du coude et atteint la bouche, mais ne peut pas atteindre le nez (Figure 4A).
Grade 2 – le membre affecté atteint le nez (Figure 4B).
Grade 3 – le membre affecté dépasse le nez mais ne peut pas atteindre l’œil (Figure 4C).
Grade 4 – le membre affecté atteint l’œil mais ne peut pas atteindre l’oreille (Figure 4D).
Grade 5 – le membre affecté atteint l’oreille ou l’arrière (Figure 4E).
Potentiel d’action musculaire composé (CMAP)
Le rat a été anesthésié, immobilisé et préparé comme décrit précédemment dans le protocole, et la portion supraclaviculaire ainsi que le segment du cordon du plexus brachial ont été exposés. L’électrode noire à aiguille d’enregistrement était insérée dans le ventre du muscle cible (biceps brachial, deltoïde ou infraspinat). L’électrode rouge d’enregistrement était insérée dans la jonction tendine-muscle du même muscle. L’électrode de référence verte était placée entre les électrodes noire et rouge (Figure 5). Toutes les électrodes sont insérées à une profondeur de 2 mm, et des sites d’insertion identiques sont utilisés des deux côtés. Le nerf a été doucement surélevé avec l’électrode stimulante pour les tests. Une impulsion d’onde carrée unique d’une intensité de 0,5 mA et d’une durée de 0,2 ms a été délivrée ; La latence et l’amplitude du CMAP ont été enregistrées. Le côté controlatéral (sain) a été utilisé comme référence (avec une valeur de 1). Le taux de délai de latence ([latence du côté affecté/latence du côté sain] × 100 %) et le taux de récupération d’amplitude ([amplitude du côté affecté/amplitude du côté sain] × 100 %) ont été calculés.
Coloration par immunofluorescence
Les fibres myélinisées ont été marquées avec l’anti-neurofilament 200 (NF200) ; parmi elles, les fibres myélinisées motorisées se distinguaient par co-marquage avec l’acétyltransférase anticholine (ChAT). Les fibres positives pour NF200 mais négatives pour la CHAT ont donc été classées comme fibres myéliniséessensorielles 15.
Pour le groupe greffe nerveuse, le tronc principal des nerfs musculocuté, axillaire et suprascapulaire a été prélevé distalement jusqu’au second site de suture sur le membre affecté. Pour le groupe de transfert nerveux, la branche biceps du nerf musculocutané, la branche antérieure du nerf axillaire et le nerf suprascapulaire ont été pris distalement par rapport à leurs sites de coaptation respectifs. Un segment de 3 mm de chaque nerf était immergé dans du paraformoldéhyde à 4 % et fixé à 4 °C pendant 24 heures.
Les spécimens étaient orientés perpendiculairement à l’axe longitudinal, encastrés dans la paraffine, et sectionnés en série à 3 μm. Après la déparaffinisation, la récupération de l’antigène a été réalisée dans un tampon EDTA de 0,01 M (pH 8,0) à l’aide d’un four micro-ondes. Les sections ont été incubées toute la nuit à 4 °C avec des anticorps primaires dilués dans le PBS (ChAT, 1:200 ; NF200, 1:500), suivies de lavages PBS et d’incubation de 50 minutes à température ambiante avec des anticorps secondaires (anti-lapin conjugué Cy3, 1:300 ; Alexa Fluor 488-anti-bouc conjugué pour la souris, 1:400) protégée de la lumière. Les noyaux étaient contre-colorés par DAPI. Des coupes transversales entières de chaque nerf ont été photographiées sous un microscope à fluorescence équipé d’un scanner de lames.
NF200 a été visualisé avec une fluorescence verte et ChAT avec une fluorescence rouge ; Les profils NF200 positifs/ChAT négatifs ont été comptés comme fibres myélinisées sensorielles. Cinq sections sélectionnées au hasard de chaque nerf ont été analysées avec ImageJ. Le nombre total de fibres myélinisées sensorielles dans toute la section transversale a été compté pour chaque section, et la valeur moyenne des cinq sections a été prise comme décompte final pour cet échantillon nerveux.
Analyse statistique
La taille de l’échantillon (n = 8 par groupe) a été calculée prospectivement avec G*Power en utilisant la taille de l’effet pilote du nombre d’axons sensoriels (d de Cohen = 2,31) pour obtenir ≥ 80 % de puissance à α = 0,05. Toutes les analyses statistiques ont été réalisées à l’aide de GraphPad Prism. Les données sont présentées sous forme de médiane (plage interquartile) [M (p25–p75)]. Des comparaisons entre groupes ont été réalisées avec le test U de Mann-Whitney. Une valeur P < 0,05 était considérée comme statistiquement significative.