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Article de méthode

Établissement d’organoïdes tumoraux, de fibroblastes associés au carcinome et de fibroblastes équivalents provenant du même patient atteint de cancer de l’œsophage

579 vues

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DOI :

10.3791/69548

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3 avril 2026

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Dans cet article

Résumé

Ce protocole décrit une méthode permettant d’isoler simultanément les organoïdes cancéreux, les fibroblastes associés au carcinome (CAF) et les fibroblastes (CF) non associés à la tumeur chez le même patient atteint d’un carcinome épidermoïde œsophagien (ESCC). L’utilisation de ces documents correspondant aux patients pourrait éviter les problèmes liés à la variabilité entre patients et offrir une plateforme expérimentale appropriée pour la recherche sur les CCES.

Résumé

Dans le carcinome épidermoïde œsophagien (ECCC), l’acquisition de la résistance au traitement et la récidive tumorale restent des défis cliniques majeurs. Les fibroblastes associés au carcinome (CAF), composants clés du microenvironnement tumoral, sont connus pour influencer la progression de l’ECC et la réponse thérapeutique. Cependant, de nombreux aspects du rôle des CF dans la malignité tumorale restent inconnus, vraisemblablement en raison de la variabilité inter-patients chez les patients ESCC. Diverses lignées cellulaires humaines d’ESCC disponibles pour la recherche sont considérées comme imitant partiellement la nature du carcinome humain. Ils sont également propagés in vitro pendant des années et des décennies dans une boîte de Petri, ce qui entraîne une adaptation aux conditions de culture. De plus, les lignées cellulaires humaines d’ESCC présentent diverses altérations génétiques et épigénétiques distinctes parmi les patients originaux, entraînant une variabilité entre patients. Néanmoins, des lignées cellulaires cancéreuses cultivées à long terme ont été utilisées dans la plupart des études antérieures pour expérimenter des CAF mal adaptés aux patients. La variabilité inter-patients au sein de chaque lignée cellulaire cancéreuse et entre cellules cancéreuses et CAFs pourrait donc entraîner une réduction de la reproductibilité et de la fiabilité des résultats. Pour éliminer la variabilité inter-patients, trois types cellulaires distincts ont été isolés sur le même patient : organoïdes cancéreux et CAF provenant d’une région ESCC disséquée chirurgicalement, et des fibroblastes (CF) équivalents d’une région non tumorale adjacente comme témoins spécifiques aux patients pour les CAF. Un protocole détaillé est présenté permettant l’isolement simultané des organoïdes cancéreux, des CAF et des CF. Les organoïdes cancéreux ont bien grandi dans des conditions tridimensionnelles. Les CAF et les FQ ont été colorés positivement pour la vimentine, l’un des marqueurs fibroblastiques, soutenant l’enrichissement de ces cellules dans les lignées fibroblastiques. Le protocole décrit nous permet d’établir des organoïdes ESCC et des fibroblastes compatibles avec les patients, fournissant une plateforme expérimentale précieuse qui exclut la variabilité inter-patients dans l’étude des interactions tumeur-stromal.

Introduction

Le cancer de l’œsophage est associé à des taux d’incidence et de mortalité élevés dans lemonde 1. Il est globalement classé en deux principaux sous-types histologiques : le carcinome épidermoïde œsophagien (ECCC) et l’adénocarcinome œsophagien (CAE)2. L’ESCC est plus répandue que l’EAC, avec une incidence particulièrement plus élevée en Asie de l’Est eten Afrique 3. Les stratégies de traitement de l’ECC sont relativement bienétablies 4,5. Pour les lésions à un stade précoce confinées à la couche muqueuse, ....

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Protocole

Toutes les procédures impliquant des tissus humains doivent être réalisées sous les approbations institutionnelles appropriées de biosécurité et dans un cabinet de sécurité biologique certifié. Le patient a fourni un consentement éclairé écrit, et le projet a été approuvé par le Comité d’éthique de la recherche de la Faculté de médecine de l’Université Juntendo. Un aperçu de la procédure des protocoles 2 à 6 est présenté à la Figure 1. La composition et les concentrations de chaque composant dans le milieu organoïde ESCC (Eso_v1) ont été déterminées sur la base de Kijima et al.14 e....

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Résultats

Des échantillons de tissu ont été prélevés dans la région tumorale et une région adjacente non tumorale située à 3 cm de la tumeur, excisés chirurgicalement chez un patient atteint d’ESCC qui n’avait pas reçu de chimiothérapie néoadjuvante. Les organoïdes cancéreux et les CAFs ont été isolés de la région tumorale, tandis que les FQ ont été isolés de la région non tumorale. Les tissus chirurgicaux ont été hachés en morceaux d’environ 0,5 mm (Figure 2A), puis .......

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Discussion

Les rapports précédents utilisaient des organoïdes atteints de cancer et des CAF appariés par les patients pour étudier le rôle des CAF dans la prolifération et la résistance aux médicaments chez les cancers humains du côlon, du sein, du pancréas, ainsi que de la tête et du couchez les patients 20,21,22,23,24. Ces études ont d.......

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Déclarations de divulgation

Les auteurs n’ont aucun conflit d’intérêts à divulguer.

Remerciements

Ce travail a été soutenu par le prix Juntendo University Young Investigator Award (2024 et 2025) accordé à P. Z. et par des subventions pour la recherche scientifique du ministère de l’Éducation, de la Culture, du Sport, des Sciences et de la Technologie du Japon (23K07362, 21K08693). Nous tenons à remercier tous les membres des départements de pathologie et d’oncologie, ainsi que de chirurgie œsophagienne et gastroentérologique.

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Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
Antenne de 100 mmTPP93100
100x Pénicilline-Streptomycine (PS)Nacalai26253-84
Tube de 15 mlFastGeneFG2001
Plaque de culture cellulaire à 24 puitsTPP92024
Plaque de culture cellulaire à 48 puitsTPP92448
Tube de 50 mlFastGeneFG2004
Antenne de 60 mmTPP93060
Plaque de culture cellulaire à 6 puitsTPP92006
A83-01Les îles Caïmans9001799
DMEM avancé/F12  ;Gibco12634010Milieu basal organoïde = DMEM avancé/F12 + GlutaMAX + 1x PS
Alexa488 anti-souris IgGInvitrogenA11029
Amphotéricine BThermoFisher15290018
Anticorps anti-Vimentine (V9)Santa CruzSC-6260Dilution 1/500 pour usage
B-27ThermoFisher17504044
Filtre à bout de bouteilleSartorius180F15
Filtre cellulaire, 100 & micro ; m poreBD Falcon352360
Collagénase, type ISIGMAC0130
Dishe enrobé de collagène de 60 mmIWAKI4010-010
Diméthyl Sulfoxyde (DMSO)Wako043-07216
Dispase IGODO SHUSEI386-02271
Eagle Medium Modifié (DMEM) de DulbeccoNacalai08459-64
ECLIPSE Ti2Nicon
Sérum fœtal bovin (FBS)SERANAS-FBS-CO-015
Milieu de croissance des fibroblastes 2PromoCellC-23020Milieu fibroblastique-1 = Milieu de croissance fibroblastique 2
G418InvivogenANT-GN-1
GlutaMAX  ;Gibco35050061
HFDM-1KSK87-160Milieu fibroblastique-2 = HFDM-1 + 1 % FBS + 1 x PS
Hoechst33342  ;Nacalai04929-82
HygromycineInvivogenANT-HG-1
Système IncuCyteEssen BioScience
Cellules L-WRNATCCCRL-3276
MatrigelCorning354234Matrice membranaire du socle = Matrigel
N2ThermoFisher17502048
N-acétyl-L-cystéineWako017-05131
NicotinamideTCIN0078
Solution physiologique tamponnée au phosphate (PBS)Nacalai14249-24
PrimocinInvivogenant-pm-05
EGF humain recombinantPEPROTECHAF-100-15
FGF-10 humain recombinantPEPROTECHPEP-100-26
SB202190SelleckS1077
Scalpel, n° 11Feather8-3086-02
STEMFULLBakélite de sumitomoMS-90150Tube à faible attachement de 15 mL = STEMFULL
TrypLE ExpressGibco12605028Trypsine pour organoïde = TrypLE Express
TrypsineNacalai35556-44
Y-27632SelleckS1049

Références

  1. Sung, H., et al. Global Cancer Statistics 2020: GLOBOCAN estimates of incidence and mortality worldwide for 36 cancers in 185 countries. CA Cancer J Clin. 71 (3), 209-249 (2021).
  2. Abbas, G., Krasna, M. Overview of esophageal cancer. Ann Ca....

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Réimpressions et autorisations

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