Toutes les études ont été approuvées par le Comité institutionnel de soins et de traitement des animaux de l’Université médicale de Xuzhou. Les réactifs et l’équipement utilisés sont listés dans le tableau des matériaux.
1. Modèle animal
Des rats adultes mâles et femelles Sprague-Dawley (SD) pesant entre 250 et 300 g ont été achetés au Centre Expérimental des Animaux de l’Université Médicale de Xuzhou. Les rats étaient élevés dans une pièce spéciale sans agents pathogènes. Les procédures expérimentales animales, incluant le traitement, les soins et le choix des critères de finalisation, suivaient les directives « Recherche animale : Rapports d’expériences in vivo ». Des expériences animales ont été réalisées par randomisation. Les rats SD ont été regroupés en quatre groupes (n = 8 par groupe) : groupe normal (pas de chirurgie, alimentation normale) (groupe normal), groupe Sham (chirurgie simulée : incision cutanée et musculaire sans transection du ligament croisé antérieur [ACLT], suivie de la sérum saline), groupe KOA/NC (chirurgie ACLT + gavage SAL), groupe KOA/OST (chirurgie ACLT + gavage OST). Le modèle KOA du genou du rat a été construit en utilisant la méthode de la transection du ligament croisé antérieur (ACLT) comme décritprécédemment 29. Le groupe SAL a reçu une solution par gavage , et le groupe OST a reçu une OST par gavage pendant 4 semaines. La dose d’OST est de 50 mg/kg de poids corporel (dissous dans le PEG 400 et dilué avec du sérum physiologique), et la fréquence d’administration est une fois par jour pendant 4 semaines dans la sous-section des rats. Ensuite, les rats ont été euthanasiés pour analyse (selon des protocoles approuvés par l’institution). Les tissus étaient soit immédiatement congelés dans de l’azote liquide, soit fixés dans du paraformodéhyde à 4 %.
2. Culture cellulaire
La lignée cellulaire de chondrocytes humains (C28/I2) a été obtenue à partir de la collection américaine de culture de type (ATCC, Manassas, VA). Les cellules ont été cultivées selon les directives de l’ATCC et utilisées dans les 6 mois.
Conditions de culture : milieu DMEM/F-12 complété avec 10 % de sérum fœtal bovin et 1 % de pénicilline-streptomycine, incubé à 37 °C dans un incubateur humidifié à 5 % CO2 .
Traitements : Les cellules ont été ensemencées à 1 × 106 cellules par puits dans des plaques à 6 puits ; après 24 heures d’adhérence, ils étaient traités avec LPS (1 μg/mL) seul ou avec une OST (100 μM) pendant 24 heures.
3. Tests de viabilité cellulaire
Les cellules de chondrocytes ont été co-incubées avec l’OST ou le LPS en différentes concentrations dans des plaques à 96 puits. Le test CCK8 reflète la viabilité cellulaire en détectant l’absorbance (OD450 nm) à l’aide d’un lecteur de microplaques, avec des valeurs de OD plus élevées indiquant des cellules plus viables.
Gradient de concentration OST : 0, 25, 50, 100, 200, 400 μM (incubée pendant 24 h). Le test CCK8 a montré une viabilité cellulaire de >90 % à toutes les concentrations, confirmant la non-toxicité du composé.
Gradient de concentration LPS : 0, 0,1, 0,5, 1, 2 μg/mL (incubé pendant 24 heures). Le groupe LPS de 1 μg/mL avait ~50 % de viabilité cellulaire (contre le groupe Ctrl), cette concentration a donc été choisie pour les expériences ultérieures.
4. Coloration à l’hématoxyline et à l’éosine (H&E) et coloration à la Safanine O
Les tissus ont été incrustés dans la paraffine, décirés, réhydratés et colorés avec des réactifs H&E et Safranin O/Fast Green selon les instructions du fabricant. Conditions de coloration : la concentration de travail de l’AO était de 1 μg/mL ; les cellules ont été incubées à 37 °C pendant 5 minutes dans l’obscurité.
Méthode quantitative : le taux de positivité AVO a été calculé en comptant les cellules contenant des points orange dans 5 champs aléatoires (×400 de grossissement) par échantillon à l’aide du logiciel ImageJ. Ensuite, les coupes ont été capturées au microscope BX43 (grossissement ×400).
5. Cytométrie en flux
Les cellules ont été prélevées et remises en suspension dans une solution d’Annexin-V FITC/PI pour une analyse d’apoptose. Conditions d’incubation : Les cellules ont été resuspendues à 1 × 106 cellules/mL dans une solution d’Annexin-V FITC/PI (KeyGEN) et incubées à température ambiante pendant 15 minutes dans l’obscurité.
Stratégie de barrage : dispersion avant (FSC) vs. Des grilles à diffusion latérale (SSC) étaient utilisées pour exclure les débris des cellules ; Les cellules FITC⁺/PI⁻ Annexin-V ont été définies comme apoptotiques précoces, et les cellules FITC⁺/PI⁺ Annexin-V comme apoptotiques tardives. Le graphique de guidage est inclus dans le Fichier Supplémentaire 1 (données brutes de cytométrie en flux). Les cellules ont été collectées par un cytomètre en flux. Les données ont été analysées à l’aide du logiciel Flow Jo.
6. Transfection des plasmides et imitation
MiR-34a mimétique (34a-mimique), non spécifique (NC) ont été obtenus à partir d’une source commerciale. Les cellules ont été transfectées avec des plasmides à l’aide de LipofectamineTM 3000 selon les instructions du fabricant.
7. Tache orange acridine
L’autophagie était généralement évaluée par une coloration à l’acridine orange dans les cellules. Après que les cellules aient été traitées avec LPS ou OST à des concentrations spécifiques pendant 24 heures, elles ont été incubées avec de l’AO (1 μg/mL) à 37 °C pendant 5 minutes dans l’obscurité. Les images ont été capturées à l’aide d’un microscope confocal laser. Le taux de positivité AVO a été calculé en comptant les cellules contenant des points orange dans 5 champs aléatoires (×400 de grossissement) par échantillon à l’aide du logiciel ImageJ. Les données sont rapportées en moyenne ± de la DS issues de trois expériences indépendantes.
8. Observation au microscope électronique en transmission
Les échantillons ont été fixés dans 2,5 % de glutaraldéhyde et 1 % de tétroxyde d’osmium, puis déshydratés, rincés et fécondés. Après polymérisation, les échantillons ont été découpés en sections de 70 nm d’épaisseur à l’aide d’un ultramicrotome. L’ultrastructure des cellules a été observée par microscopie électronique en transmission.
9. Immunoblottage
Un anticorps monoclonal de souris (Abs) contre Bcl-2 (#68103), un anticorps polyclonal de lapin contre LC3 (#14600-1-AP), IL-6 (21865-1-AP) et un anticorps monoclonal de souris contre β-Actine (#66009-1-lg) ont été achetés chez Proteintech. Des ABS secondaires conjugués à IRDye 800CW IgG anti-Lapin (H+L) ou IRDye 800CW IgG anti-souris (H+L) pour chèvre (polyclonal) ont été obtenus commercialement. Les cellules ont été lysées dans un test de lyse cellulaire entière, séparées par électrophorèse sur gel de SDS-polyacrylamide. Les protéines ont été détectées à l’aide d’Abs primaire et d’Abs secondaire correspondant. La charge en protéines était de 30 μg par voie ; dilutions d’anticorps primaires : Bcl-2 (1:1000), LC3 (1:1500), β-tubuline (1:5000) ; des anticorps secondaires (IRDye 800CW) ont été utilisés à 1:10 000, IL-6 (1:800). Ensuite, les bandes protéiques ont été capturées par le système d’imagerie laser à chimiluminescence améliorée. Les bandes protéiques ont été quantifiées par le logiciel ImageJ.
10. Réaction en chaîne quantitative en temps réel par polymérase (qRT-PCR)
Les ARN totaux ont été isolés à partir de cellules à l’aide du réactif Trizol. Les cDNA dérivés d’ARN totaux ont été synthétisés à l’aide du kit de régents cDNA et analysés par les méthodes SYBR Green. Les cDNA dérivés de miARN ont été synthétisés à l’aide d’un kit de cDNA de première brin miRcute plus miRNA et analysés par un kit qPCR miRcute plus miRNA. Toutes les procédures étaient réalisées selon le protocole du fabricant. L’expression du transcript cible a été calculée à l’aide de la méthode 2-△△CT . GADPH et U6 étaient utilisés respectivement comme contrôle de charge pour l’ARNm et le miARN. La séquence d’amorcage est listée dans le tableau 1.
11. Analyses de journalistes sur Luciferase
Plasmide de type sauvage de repêchage psiCHECK2-Bcl-2-3′UTR (WT) et plasmide repêcheur de psiCHECK2-Bcl-2-3′UTR avec un mutant au site de liaison miR-34a (Mut). Les rapporteurs et le miMétique miR-34a ont été co-transfectés dans des cellules chondrocytaires à l’aide de LipofectamineTM 3000. Les cellules ont été prélevées et lysées après 24 heures de transfection. L’intensité de la luciférase a ensuite été mesurée à l’aide du kit Dual-LumiTM Luciferase Reporter Gene Assay selon les instructions du fabricant.
12. Tests d’analyse de la foulée
Le système MGT-PR a été utilisé pour observer les mouvements des membres courants des rats dans chaque groupe. Avant les tests, les rats ont été autorisés à s’adapter à l’environnement de la piste. Les données de marche pendant la marche libre ont été enregistrées, avec trois essais consécutifs valides de marche capturés pour chaque rat. Les paramètres analysés comprenaient la longueur du pas, la durée du balancement et la coordination entre les membres postérieurs droit et gauche.
13. Analyse statistique
Les expériences ont été réalisées en triple exemplaire et répétées indépendamment au moins trois fois. L’analyse statistique a été réalisée à l’aide du logiciel GraphPad Prism 9. Les données ont été indiquées comme une moyenne ± SD. Les différences statistiques ont été évaluées par ANOVA unidirectionnelle (test post hoc de Tukey) pour des comparaisons multiples, ou par un test Student’s à deux facettes pour deux comparaisons expérimentales de groupes. Les différences ont été acceptées comme significatives à p < 0,05.