Nous avons développé un système transwell ex vivo humain capable d’évaluer les modifications inflammatoires aiguës, infectieuses et structurelles du synovium.
Article de méthode
Nous avons développé un système transwell ex vivo humain capable d’évaluer les modifications inflammatoires aiguës, infectieuses et structurelles du synovium.
L’arthrite est un état inflammatoire au sein des articulations entraînant des lésions du cartilage, de la douleur et une perte de mobilité. Les avancées récentes en recherche sur l’arthrite démontrent spécifiquement que la capsule articulaire (par exemple, la synovium) est une source importante de cette inflammation, mais il n’existe aucun modèle humain reproduisant l’architecture synoviale essentielle. Pour y remédier, le Joint Space Analysis System, ou JSAS, a été créé. Un synovium antérieur a été obtenu en perpétuation chirurgicale chez des patients subissant une arthroplastie totale du genou (ATG). Le synovium a été disséqué et sectionné en cœurs de biopsie de 3 mm. Les carottes étaient placées dans le puits supérieur d’un puits de 5 μm ou 0,4 μm avec 300 μl de DMEM et 10 % de FBS. Dans le puits du fond, 600 μL de média ont été ajoutés, et échangés tous les 2 à 3 jours. La viabilité a été évaluée jusqu’à 7 jours dans les conditions d’incubation hyperoxyque (50 %), atmosphériques/standard (~21 %) et physiologiques (5 %). Les stimuli dans le puits du fond comprenaient la protéine chimioattractive monocytaire 1 (MCP-1/CCL2), le lipopolysaccharide (LPS), la N-acétylcystéine, S. aureus et B. burgdorferi. Un milieu était stocké pour l’ELISA, et le tissu était stocké pour l’analyse de la paraffine fixe au formol (FFPE). Dans des conditions normales, la synovium est restée pleinement viable pendant 3 jours. Le stimulus a modifié la structure et la fonction des cellules synoviales intimes et sous-couchantes, incluant la perte de la bordure macrophage résidente, l’expansion de la sous-membrane, la régulation à la hausse des fibroblastes pathogènes, ainsi que la production des cytokines IL-1β et TNFα. Les cellules immunitaires et les fibroblastes ont migré vers la chambre inférieure (pores de 5 μm) par analyse de cytométrie en flux. Les B. burgdorferi mobiles ont migré dans les tissus à la taille des pores de 0,4 μm tandis que S. aureus non mobile ne l’a pas fait. Les cytokines pertinentes ont été exprimées en quantité suffisante pour ELISA. JSAS est un système modulaire capable d’étudier les altations aiguës du synovium humain, permettant la complexité des structures 3D dans un modèle préclinique tout en maintenant une structure et une fonction biologiquement pertinentes.
L’arthrite touche plus de 20 % de tous les adultes américains et 50 % des personnes de plus de 65 ans atteintes de maladieschroniques 1. C’est aussi une cause majeure de handicap dans lemonde 2. L’arthrite inclut non seulement des lésions cartilagineuses, mais aussi l’inflammation de la capsule articulaire ou du synovium (par exemple, la synovite). La synobine chronique est probablement une source majeure de cytokines pro-inflammatoires qui potentialisent les dommages osseux et cartilagineux dans l’arthrose et la polyarthriterhumatoïde 3,4
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Le consentement du patient et le protocole de traitement des tissus ont été approuvés par le comité d’examen institutionnel local (IRB). Les réactifs et l’équipement utilisés sont listés dans le tableau des matériaux.
1. Acquisition tissulaire et biopsie
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Optimisation des conditions de culture d’oxygène
La perfusion physiologique des tissus est d’environ 6 % à 8 % d’oxygène, tandis que les conditions d’incubation standard pour la culture cellulaire sont aux niveaux d’oxygène atmosphérique (~21 %)16. Comparativement, l’hyperoxygénation peut améliorer la viabilité des cultures cellulaires ou êtretoxique 17. Une utilisation adéquate du JSAS nécessitait une détermination précoce de la.......
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Ce travail a démontré les capacités du JSAS, en particulier le maintien du tissu synovial vivant avec une architecture synoviale intacte et fonctionnellement réactive. La mort cellulaire était minimale sur 72 heures de culture dans la plupart des conditions d’incubation. Pour évaluer les changements microscopiques de la structure synoviale, un système de mesure histologique unique a été décrit, quantifiant les altérations structurelles de l’IntL et du SubL. De tels changements sont indic.......
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Il n’y a pas de conflits d’intérêts.
Ce protocole ne serait pas possible sans la générosité des patients qui ont fait don de leur tissu, et la compétence de nos collègues en chirurgie orthopédique, qui sont prêts à acquérir des tissus en toute sécurité pour le compte du travail. K.I.C. est soutenu par NIAMS K08 AR084605, et C.P.P. est soutenu par le Veterans Affairs Career Development Program [IK2BX004532]. Ce groupe reconnaît l’utilisation du Centre de Recherche en Microscopie de l’Université de l’Iowa, une ressource centrale soutenue par le vice-président à la recherche de l’Université de l’Iowa, et le Carver College of Medicine. Les données de cytométrie en flux ont é....
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| Nom | Entreprise | Numéro de catalogue | Commentaires |
|---|---|---|---|
| 10 cm Petri dishes | Corning | CLS430167 | |
| 23srRNA RNAscope probe | ACD/Biotechne | 468211 | |
| 24 well plates | Life Sciences | 3524 | |
| 3 mm biopsy punches | Integra | 12460406 | |
| 50 mL conicals | N/A | ||
| 70% ethanol (pour la stérilisation) | N/A | ||
| Borrelia burgdorferi | ATCC | 35210 | doit être utilisé dans la phase exponentielle tardive pour une pathogénicité maximale |
| BSK-H | Sigma-Aldrich | B8291 | |
| Anticorps CD68 | Invitrogen | 14-0688-82 | 1:1000 |
| Cuve CO2 (conditions standard) | N/A | ||
| Dulbecco's Phosphate buffered saline (Ca-/Mg-) | Thermofisher | 14190144 | |
| sérum bovin foetal | Biotechne | S11150 | Chauffé et inactivé Lot: F22100 |
| Forceps (sans dents) | N/A | ||
| Pince hémostatique | N/A | ||
| Incubateur cellulaire humidifié (conditions standard) | N/A | ||
| Incubateur hypoxique | N/A | ||
| Cuve hypoxique (5% O2, 5% CO2, reste N2, conditions physiologiques) | N/A | ||
| Anticorps IL-4 | Thermofisher | MA5-42470 | 1:100 |
| Anticorps iNOS | Thermofisher | PA1-036 | 1:100 |
| Ciseaux Iris | N/A | ||
| Lipopolysaccharide | Sigma-Aldrich | L2630 | |
| DMEM à faible teneur en glucose (+ pyruvate de sodium, + L-glutamine) | Life Technologies | 11885084 | |
| Anticorps MMP9 | Thermofisher | MA5-32705 | 1:1000 |
| Chambre d'incubateur modulaire (conditions hyperoxiques) | Emrbient, Inc | MIC-101 | |
| Protéine chimiotactique des monocytes 1 | Peptrotech | 300-04-20UG | |
| N-acétyl cystéine | Sigma-Aldrich | A9165 | Doit être préparée fraîche pour chaque expérience et mise en tampon dans du bicarbonate de sodium equimolaire à un pH de 7 à 7,4 |
| ELISA OPG | Millipore | RAB0484 | Dilution 1:1 |
| Cuve d'oxygène avec régulateur de débit en litres par minute | N/A | ||
| Anticorps PDPN | Invitrogen | 14-9381-82 | 1:100 |
| Iodure de Propidium | Thermofisher | J66764.MC | |
| Essai RNAscope multiplex fluorescent V2 | ACD/Biotechne | 323100 | |
| ELISA sRANKL | MyBioSource | MBS262624 | Dilution 1:1 |
| Staphylococcus aureus USA 300 MRSA | ATCC | BAA-1717 | |
| SYBR Green | Thermofisher | S7563 | Stock 10 000X |
| Anticorps TNF | Thermofisher | PA5-19810 | 1:100 |
| Inserts transwell - 0,4 µm | Millicell | PICM01250 | |
| Inserts transwell - 5 µm | Corning | CLS3421 |
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