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L’ensemble de l’expérience a été menée au Centre expérimental de l’École de médecine fondamentale de l’Université de médecine traditionnelle chinoise de Chengdu. Toutes les procédures de bien-être animal et expérimentales ont été approuvées par le Comité d’éthique du bien-être animal de laboratoire de l’Université de médecine traditionnelle chinoise de Chengdu (n° d’éthique 2024078). Les expériences ont été réalisées en suivant strictement le NIH Guide for the Care and Use of Laboratory Animals (révision 1986, publication 86-23).
Animaux et régime alimentaire
Les rats Wistar mâles et femelles sans agents pathogènes spécifiques (SPF), âgés de 6 à 8 semaines, pesaient 200 ± 20 g. Tous les rats étaient logés dans des pièces bien ventilées avec un cycle clair-obscur de 12 heures et avaient un accès libre à la nourriture et à l’eau.
Modèles et groupes
Les modèles animaux ont été induits en se référant à l’expérience de rechercheantérieure 10. Après une période d’acclimatation de 7 jours, 21 rats Wistar (répartition mâle/femelle à 50 %) ont été répartis aléatoirement dans trois groupes expérimentaux (n = 7/groupe) à l’aide du générateur de nombres aléatoires dans Excel, le nombre de rats mâles et femelles dans chaque groupe étant maintenu à peu près équilibré afin de minimiser l’impact du sexe sur lesrésultats 11. Contrôle normal (NC) : Reçu une dose quotidienne de gavage gastrique (1 mL/100 g) d’eau purifiée. Modèle à haute teneur en sel (HS) et intervention EA (EA) : Solution de NaCl à 12 % (1 mL/100 g) administrée par une injection quotidienne. Toutes les interventions ont été maintenues pendant 30 jours consécutifs.
Traitement EA
Le traitement a été initié le lendemain de la modélisation réussie. L’EA a été choisie plutôt que l’acupuncture manuelle pour ses paramètres de stimulation standardisés et quantifiables, qui réduisent la variabilité dépendante de l’opérateur et améliorent la reproductibilité des résultats. Les emplacements de BL23 (Shenshu, méridien de la vessie) et KI3 (Taixi, méridien rénal) ont été déterminés en fonction des critères de localisation des points d’acupuncture chez les rats de la Chinese Acupunctureand Moxibustion Society 12. BL23 est située à 6 mm latéralement par rapport à la ligne médiane dorsale, inférieure à la deuxième vertèbre lombaire. KI3 se trouvait à la dépression médiane entre le point le plus élevé du malléol médian et la bordure postérieure du tendon d’Achille. Les poils locaux aux points d’acupuncture ont été retirés et stérilisés. Des aiguilles d’acupuncture stériles jetables (0,18 mm × 13 mm) étaient utilisées pour perforer verticalement les points d’acupuncture, avec des profondeurs d’insertion de 4 à 6 mm pour BL23 et 3 à 5 mm pour KI3. Le clip d’électrode positif de l’appareil d’électroacupuncture était relié à la poignée de l’aiguille de l’aiguille d’acupuncture à BL23 d’un côté, et le clip d’électrode négatif à celui de KI3 du même côté. Paramètres du dispositif d’électroacupuncture : Forme d’onde : onde dense-clairsemée (10/50 Hz) ; Fréquence : 5 s pour les ondes clairsemées, 10 s pour les ondes denses ; Intensité : 1-2 mA, ajustée selon les réactions convulsives et douloureuses des rats (cris, comportements de résistance) ; Largeur de pouls : ≤ 1 MS. Protocole de stimulation : L’intervention a été réalisée quotidiennement de 17h00 à 19h00 (heure de Pékin), durant 20 minutes à chaque fois. Cycle : Un cycle de traitement comprenait 7 jours, avec un total de 4 cycles et 1 jour de repos entre chaque cycle. Le processus spécifique est montré à la Figure 2 (Créée avec BioGDP.com13).

Figure 2 : Chronologie expérimentale. Veuillez cliquer ici pour voir une version agrandie de cette figurine.
Collecte et préparation des échantillons
Un mois après le va-et-à-corps, du sang veineux orbitaire a été prélevé sur des rats avant l’intervention de l’EA. Des échantillons de plasma ont été extraits par centrifugation à 1 000 × g pendant 15 minutes à 4 °C. À la fin du traitement, des excréments frais ont été prélevés sur chaque groupe de rats. Les rats ont été anesthésés avec 10 % d’isoflurane émulsifié (30 mg/kg) et euthanasiés. La cavité abdominale a été ouverte, et environ 5 mL de sang ont été prélevés sur l’aorte abdominale pour mesurer la viscosité du taux de cisaillement du sang total (WBSRV) en moins de 4 heures. Des tissus de l’aorte abdominale ont été prélevés pour une analyse histopathologique. Tous les échantillons étaient stockés à -80 °C pour une utilisation ultérieure.
Test WBSRV
Après la modélisation, environ 4 à 5 mL de sang total ont été prélevés sur l’aorte abdominale des rats à l’aide d’une aiguille de collecte de sang et placés dans des tubes anticoagulants à l’héparine sodique. Les tubes furent doucement secoués pour assurer un mélange complet des échantillons de sang avec l’anticoagulant. En 4 heures, le WBSRV et le taux de sédimentation des érythrocytes (ESR) ont été mesurés à l’aide d’un analyseur hémorhéologique entièrement automatisé.
Histopathologie vasculaire
Les tissus vasculaires ont été fixés dans une solution de paraformaldéhyde à 4 % pendant au moins 24 heures et sectionnés à une épaisseur de 3 μm pour une coloration à l’hématoxyline-éosine (HE). Les images ont été prises à des grossissements de 100× et 400×.
Séquençage 16S rDNA
L’ADN génomique a été extrait d’échantillons fécaux de chaque groupe. Les séquences d’amorce V3-V4 (341F : 5'-CCTACGGGNGGCWGCAG-3' ; 805R : 5'-GACTACHVGGGTATCTAATCC-3') ont été utilisées pour l’amplification par PCR de l’ADN total. Le programme d’amplification PCR était le suivant : pré-dénaturation à 98 °C pendant 30 s, dénaturation à 98 °C pendant 10 s, recuit à 54 °C pendant 30 s, et extension à 72 °C pendant 45 s, avec un total de 32 cycles, suivie d’une extension finale à 72 °C pendant 10 min. Les produits PCR étaient purifiés et quantifiés. Le séquençage par extrémités jumelées (2×250 pb) était réalisé sur la plateforme de séquençage NovaSeq 6000. Les lectures à extrémités jumelées ont été fusionnées et filtrées pour obtenir des données de haute qualité. En utilisant le plugin DADA2 dans QIIME 2, le filtrage de longueur et le débruit ont été effectués. Ce processus générait des variantes de séquence d’amplicons (ASV) et des tables d’abondance ASV, suivies par la suppression des ASV singleton. Des annotations taxonomiques et un profilage d’abondance ont été réalisés à partir du fichier de séquences ASV utilisant la base de données SILVA pour étudier les différences d’espèces et la composition des communautés entre les échantillons. La diversité des espèces et les variations de l’abondance relative ont été évaluées via des analyses de α-diversité et β-diversité, et la visualisation des données a été réalisée sur ce site web (https://www.omicstudio.cn/home).
Analyses statistiques
Les analyses statistiques ont été réalisées à l’aide de SPSS 26.0. Une valeur de P < 0,05 a été considérée comme statistiquement significative. Pour les données à variances homogènes, l’ANOVA unidirectionnelle a été utilisée pour les comparaisons intergroupes, suivie de tests de différence de moindre significative (LSD) post-hoc si des différences significatives étaient trouvées. Pour les données à variances hétérogènes, l’ANOVA unidirectionnelle non paramétrique de Kruskal-Wallis par rangs a été utilisée. L’analyse du test Mann-Whitney U a été appliquée pour évaluer les changements dans la composition du microbiote intestinal et la structure de la communauté. L’analyse de corrélation par rang de Pearson a été utilisée pour évaluer les corrélations entre les bactéries intestinales à abondance différentielle et d’autres indicateurs. L’analyse de corrélation de Pearson a été employée car les données respectaient les hypothèses de normalité et de linéarité, validées par le test de Shapiro-Wilk et le test de Durbin-Watson. Des graphiques statistiques et des cartes thermiques ont été générés à l’aide de GraphPad Prism 10.