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Stabilité et répartition de la température du bloc
Au cours du développement de ce protocole, nous avons testé la linéarité et la stabilité temporelle de la température à l’intérieur du bloc. Après avoir mis le système de refroidissement et le chauffage en MARCHE, le temps d’initialisation du bloc est d’environ une heure, période durant laquelle la plupart des huit capteurs de température uniformément répartis atteignent la température cible puis restent constants après un dépassement (Figure 13A). Après cette période, les températures enregistrées par les huit capteurs confirment une distribution linéaire parfaite de la température le long du bloc d’aluminium (Figure 13B).

Figure 13 : Linéarité et stabilité temporelle à l’intérieur du bloc de gradient de température. (A) la stabilité temporelle des températures à l’intérieur du bloc pendant la période d’incubation, et (B) la température enregistrée par les capteurs au moment de début de l’incubation. Veuillez cliquer ici pour voir une version agrandie de cette figurine.
Température du bloc et température du sol
Nous avons testé le temps nécessaire pour que l’échantillon de sol à l’intérieur du bloc atteigne la température enregistrée par les huit capteurs (Figure 14). Dans cette étude, nous avons mesuré la température des échantillons de sol à huit positions différentes dans le bloc, situées près des capteurs. Les capteurs, positionnés à l’intérieur du bloc, étaient pré-stabilisés à leur température cible. Suivant le protocole décrit ci-dessus, une fois les températures du bloc stables, des échantillons de sol ont été placés à l’intérieur du bloc. Pour ce test, nous avons utilisé des capteurs supplémentaires séparés du bloc. Nous avons utilisé 15 g de terre, en veillant à ce que la sonde captrice soit en contact direct avec le sol. Les échantillons de sol ont été laissés sans bouchon, et la température a été enregistrée chaque minute pendant un total de 30 minutes. Lors de ce test, le bloc était légèrement fermé pour minimiser la variation de température et reproduire autant que possible les conditions réelles d’utilisation (complètement fermé). Nous avons constaté qu’il faut environ 12 minutes pour que les échantillons de sol se stabilisent à la température cible. Nous avons jugé ce temps de stabilisation acceptable, étant donné que les incubations durent au moins 3,5 heures. De plus, nous avons évalué la linéarité de la température du sol après 12 minutes d’incubation en bloc. Les résultats indiquent que les températures du sol présentent une relation linéaire, étroitement alignée avec la linéarité observée dans les huit capteurs (Figure 15).

Figure 14 : Température du sol enregistrée incubée à différentes températures. Les échantillons A, B, C et D ont été incubés dans des fioles positionnées près des capteurs correspondants (voir Figure 10 pour référence). La température du sol était enregistrée par un thermocouple inséré directement dans les échantillons de sol. Les températures spécifiques surveillées par chaque capteur sont les suivantes : (A) Capteur 1 (S1) à 4,1 °C, (B) Capteur 2 (S2) à 12,5 °C, (C) Capteur 3 (S3) à 20,1 °C, (D) Capteur 4 (S4) à 28,1 °C, (E) Capteur 5 (S5) à 36,1 °C, (F) Capteur 6 (S6) à 43,8 °C, (G) Capteur 7 (S7) à 51,9 °C, et (H) capteur 8 (S8) à 60 °C. Après avoir placé les échantillons de sol dans le bloc, il faut environ 12 minutes pour atteindre la température cible. Veuillez cliquer ici pour voir une version agrandie de cette figurine.

Figure 15 : Forte corrélation linéaire entre la température du sol et la température du capteur. Quatre fioles contenant du sol ont été placées près des huit capteurs aux positions de bloc A, B, C et D. La température du sol était enregistrée par un thermocouple inséré directement dans les échantillons de sol. Veuillez cliquer ici pour voir une version agrandie de cette figurine.
Interaction température-humidité
Il y a une interaction inévitable entre la température et l’humidité qui doit être évaluée pendant la période d’incubation. Par exemple, des températures élevées peuvent accélérer l’évaporation, tandis que des températures basses peuvent provoquer la condensation de l’eau. Pour ce test, nous avons utilisé quatre échantillons de sol sélectionnés au hasard avec différentes textures (Tableau supplémentaire 2). Selon le protocole, chaque échantillon de sol a été placé dans la même position de bloc sur les 22 températures. Les résultats montrent qu’après un temps moyen d’incubation de 3,5 h, des températures plus élevées entraînent une perte d’humidité plus importante que des températures plus basses, quelle que soit la texture du sol (Figure 16). Les sols incubés à 60 °C ont perdu en moyenne 12 % de l’eau totale ajoutée, tandis que les sols incubés à 4,1 °C ont perdu en moyenne seulement 1,88 % de l’eau totale ajoutée. Cela signifie que pendant les 3,5 heures d’incubation en blocs, les sols ont été maintenus dans des conditions d’humidité optimales, entre 50 % et 60 % de capacité de retenue d’eau, indépendamment de la températured’incubation 44,45 (Figure supplémentaire 6).

Figure 16 : Perte relative d’humidité du sol lors de l’incubation en blocs dans quatre échantillons différents. La perte d’humidité a été calculée par rapport à la quantité totale d’eau ajoutée pour ajuster le WHC. Veuillez cliquer ici pour voir une version agrandie de cette figurine.
Mesures de concentration de CO2
Pour tester la précision et la précision de l’analyseur de gaz, nous avons effectué quatre mesures d’un gaz de référence certifié (413 ± 5 ppm CO2), pour lesquelles l’analyseur a enregistré 413,71 ± 0,60 (ppm CO2, moyenne ± DC). Cela a confirmé la grande précision et la précision des mesures de CO2 enregistrées par l’analyseur de gaz. De plus, pour respecter les spécifications du fabricant, un test annuel avec un gaz de référence certifié doit être effectué.
Compte tenu du temps de latence causé par la conduite d’injection et le kit de réduction du débit vers l’analyseur de gaz, plusieurs tests ont été effectués pour déterminer le temps optimal de mesure. Les résultats montrent que la ligne d’injection provoque un délai d’environ cinq secondes. Dans cette configuration, le temps de mesure idéal est de 20 s, ce qui permet de remplir suffisamment l’unité de détection du CO2 et d’atteindre un équilibre pendant 5 s (Figure 17). Étant donné que le kit de réduction du débit mesure à un taux de 1,17 mL/s, ce temps de mesure correspond à l’échantillonnage de 39 % de la teneur en air dans les flacons de 60 mL. De plus, nous avons observé que lorsque l’analyseur de gaz est utilisé comme un système fermé, une chute de pression se produit. Cette chute survient pendant l’intervalle d’une seconde où il n’y a pas d’injection d’air lors de l’extraction de l’aiguille du flacon. Pour tenir compte de cette baisse de pression lors du traitement des données, nous avons exclu les valeurs deCO2 légèrement inférieures (entre 3 % et 5 %) à la valeur précédente ou suivante.

Figure 17 : Temps optimal de mesure pour un échantillon individuel de sol incubé à trois températures différentes. Ce graphique montre le temps d’injection et d’extraction de l’aiguille, l’équilibre duCO2 pendant 5 s, et la chute de pression associée à la période choisie. Incubation_ID montre la position du bloc (C) et la position des flacons (5, 10 et 15). Veuillez cliquer ici pour voir une version agrandie de cette figurine.
Test du protocole complet
Pour évaluer la fonctionnalité et la reproductibilité du protocole, nous avons incubé deux échantillons différents, chacun avec quatre réplications techniques, sur 22 températures discrètes allant de 4 °C à 60 °C. Ces échantillons de sol ont été choisis pour démontrer le type de données générées avec cette installation et ses performances. Les caractéristiques spécifiques de l’échantillon se trouvent dans le Tableau Supplémentaire 2. Le bloc gradient de température capturait de manière fiable les taux de respiration du sol des différents échantillons à chaque point de température, nous permettant de visualiser la courbe de réponse à la température. De plus, les courbes de réponse thermique résultantes pour tous les réplicats étaient presque identiques, comme en témoigne le faible écart-type autour des taux respiratoires moyens à toutes les températures (Figure 18). Ces résultats démontrent une grande reproductibilité et confirment la précision du protocole.

Figure 18 : Taux de décomposition (Rs) représentatifs de la SOM pour deux sols, chacun mesuré avec quatre réplicés techniques incubés sur tout le gradient de température. Les points représentent la moyenne des taux respiratoires à chaque température, et les barres d’erreur indiquent l’écart-type parmi les répliques techniques. Veuillez cliquer ici pour voir une version agrandie de cette figurine.
Un second test a été réalisé pour démontrer l’applicabilité scientifique du protocole. Nous avons mesuré les taux de respiration du sol sur tout le gradient de température et ajusté les données à l’aide du modèle d’Arrhenius ou MMRT (Figure 19). Ces échantillons de sol ont été choisis pour démontrer la performance du système face à des courbes de réponse thermique contrastées (les caractéristiques de l’échantillon sont fournies dans le Tableau Supplémentaire 2). Les résultats montrent que les données collectées avec le bloc de gradient de température peuvent être analysées davantage en testant différentes théories sur la sensibilité à la température des taux de décomposition des SOM. Cependant, des défis surviennent lorsqu’on travaille avec un sol frais dans toute expérience. Pendant la période pré-incubation de 10 jours, nous avons observé des communautés fongiques se développer à l’intérieur de certains flacons dans des échantillons de sol, au-delà de l’ensemble des échantillons représentatifs. Malgré nos efforts pour éliminer soigneusement les communautés fongiques sans perturber le sol, cette croissance a eu un impact sur les résultats de certains échantillons (Figure 20). Par conséquent, nous avons décidé de jeter les échantillons affectés en retirant l’échantillon entier, et non seulement les fioles individuelles affectées par la croissance fongique.

Figure 19 : Résultats représentatifs et taux respiratoires (R) de quatre échantillons de sol différents incubés dans le bloc du gradient de température. La ligne rouge représente l’ajustement d’Arrhenius (A,B), et la ligne bleue représente l’ajustement MMRT (C,D). Veuillez cliquer ici pour voir une version agrandie de cette figurine.

Figure 20 : Schémas de fréquence respiratoire pour certains échantillons affectés par la croissance fongique. Ces résultats sont des exemples de (A,B) deux échantillons contaminés qui ont été exclus d’une analyse ultérieure. Veuillez cliquer ici pour voir une version agrandie de cette figurine.
Figure supplémentaire 1 : Circuit NO/NC de base. » C » peut également être étiqueté comme « COM » pour Commun. Veuillez cliquer ici pour télécharger ce fichier.
Figure 2 complémentaire : Panneau de contrôle du système de refroidissement. Veuillez cliquer ici pour télécharger ce fichier.
Figure 3 complémentaire : Interrupteur du système et clignotant lumineux. (A) Interrupteur du système de contrôle du bloc par gradient de température ; et (B) un voyant vert indiquant que les capteurs et le système de chauffage sont ALLUMÉS. Veuillez cliquer ici pour télécharger ce fichier.
Figure 4 complémentaire : Contrôle du bloc de chauffage par gradient de température dans l’interface en ligne. Veuillez cliquer ici pour télécharger ce fichier.
Figure 5 complémentaire : Section diagnostique de l’analyseur de gaz. Tout est vert, cela signifie que l’instrument est prêt pour les mesures. Veuillez cliquer ici pour télécharger ce fichier.
Figure complémentaire 6 : Capacité de retenue d’eau des sols incubés à différentes températures, mesures enregistrées après 3,5 h d’incubation en blocs. Veuillez cliquer ici pour télécharger ce fichier.
Dossier supplémentaire 1 : Instructions de câblage détaillées. Veuillez cliquer ici pour télécharger ce fichier.
Tableau complémentaire 1 : Liste des matériaux avec la quantité requise. Veuillez cliquer ici pour télécharger ce fichier.
Tableau complémentaire 2 : Caractéristiques des échantillons de sol utilisés pour le test de perte d’humidité et le protocole complet. Ces échantillons ont été choisis pour démontrer la fonctionnalité du protocole. La classification des textures suit le système USDA, avec des particules grossières, argiles, limons et sables exprimés en pourcentages. OC fait référence à la teneur en carbone organique (g C·kg-1 sol), le pH a été mesuré dans l’eau, et CaCO3 représente la teneur en carbonate de calcium (g·kg-1 sol). Veuillez cliquer ici pour télécharger ce fichier.