Un abonnement JoVE est requis pour visualiser ce contenu. Connectez-vous ou commencez votre période d'essai gratuite.

Rapport de cas

Prise en main clinique et résultats de la pneumonie à Chlamydia pneumoniae diagnostiquée par séquençage ciblé de nouvelle génération : rapport de cas et analyses

370 vues

⸱

DOI :

10.3791/70368

⸱

10 avril 2026

 , 

* These authors contributed equally

Dans cet article

Résumé

Ce rapport décrit un diagnostic précis ciblé de la pneumonie de C. pneumoniae activé par NGS chez un adolescent, facilitant la thérapie efficace par macrolides et soulignant son utilité dans les infections respiratoires atypiques.

Résumé

Chlamydia pneumoniae est une cause importante de pneumonie acquise dans la communauté, mais son diagnostic reste difficile en raison de symptômes non spécifiques et des limites des méthodes traditionnelles comme la sérologie, qui peuvent entraîner des retards. Nous présentons le cas d’une jeune fille de 14 ans admise avec de la toux et des douleurs thoraciques du côté droit. Les premiers tests de laboratoire étaient sans remarquables, à l’exception d’un résultat positif à C. pneumoniae IgM. Un scanner thoracique a révélé des infiltrations dans le lobe supérieur droit. Malgré l’azithromycine empirique, son amélioration a été limitée. Une bronchoscopie a été réalisée, et le liquide de lavage bronchoalvéolaire a été analysé par un séquençage de nouvelle génération ciblé (tNGS), qui a identifié C. pneumoniae comme l’agent pathogène dominant avec un nombre élevé de séquences (9886), fournissant des preuves solides de l’étiologie. La thérapie ciblée par macrolides a été poursuivie (transition vers la doxycycline orale), conduisant à une amélioration clinique marquée en moins de 72 heures. Le suivi longitudinal en laboratoire a révélé une transaminite auto-résoluble et une augmentation du sérum Amyloïde A après le traitement. Ce cas suggère que le tNGS peut servir d’outil complémentaire précieux pour fournir un diagnostic étiologique rapide et indépendant de la culture des pneumonies atypiques, aidant à orienter une thérapie efficace chez certains patients atteints d’infections respiratoires complexes.

Introduction

La pneumonie acquise dans la communauté (PAC) représente un fardeau sanitaire mondial important, avec un spectre complexe et diversifié d’agents pathogènes causaux qui compliquent le traitementempirique 1. Parmi les bactéries atypiques, Chlamydia pneumoniae est un agent étiologique bien établi, responsable d’environ 10 % à 15 % des cas de PAC dans tous les groupesd’âge 2. Depuis son identification comme espèce distincte en 1986, C. pneumoniae a été reconnue non seulement pour provoquer des infections respiratoires aiguës, mais aussi pour ses liens épidémiologiques potentiels avec des maladies chroniques telles que l’asthme et l’athérosclérose 3,4.

Malgré son importance clinique, le diagnostic précis et opportun de la pneumonie de C. pneumoniae reste un défi de taille pour les cliniciens. La méthode sérologique historiquement établie, la microimmunofluorescence (MIF), nécessite une paire de sérum aigu et convalescente, empêchant un diagnostic précoce, et souffre d’une mauvaise standardisation ainsi que d’une réactivité croisée significative parmi les espèces de Chlamydia 5,6. Bien que des études fondamentales aient réussi à isoler C. pneumoniae à partir d’échantillons des voies respiratoires inférieures tels que le liquide de lavage bronchoalvéolaire7, la culture de ce pathogène intracellulaire obligatoire est techniquement exigeante, longue et souvent insensible, ce qui la rend peu pratique pour un usage cliniquecourant 8. Bien que les panels PCR multiplex disponibles sur le marché offrent des délais de réponse rapides et puissent détecter plusieurs infections mixtes courantes, leur dépendance à des cibles prédéfinies limite leur capacité à dépister simultanément des agents pathogènes larges, inattendus ou plus rares.

L’avènement des technologies de séquençage à haut débit a commencé à révolutionner le diagnostic des agents pathogènes dans les maladiesinfectieuses 9. Parmi ceux-ci, le séquençage ciblé de nouvelle génération (tNGS) représente une avancée significative en combinant la détection à large spectre avec une sensibilité et une rentabilité accrues. Contrairement à la NGS métagénomique (mNGS), qui séquence tous les acides nucléiques d’un échantillon, la tNGS utilise des panneaux d’enrichissement ciblés pour séquencer en profondeur des groupes pathogènes spécifiques, améliorant ainsi la profondeur de couverture des cibles pertinentes, réduisant le bruit de fond de l’hôte et simplifiant l’analyse bioinformatique10. Cela le rend particulièrement adapté aux contextes cliniques où des résultats rapides et réalisables sont primordiaux. Des études antérieures ont démontré la sensibilité supérieure des méthodes à base de NGS (>90 %) pour détecter les agents pathogènes respiratoires par rapport aux cultures traditionnelles, avec l’avantage supplémentaire d’identifier des infections mixtes dans jusqu’à 30 % à 50 % plus de cas11. De plus, le tNGS s’est avéré utile dans les infections respiratoires complexes où les diagnostics traditionnels ne permettent pas d’identifier une étiologie dans une proportion substantielle (40 % à 60 %) descas 11.

Cependant, les rapports sur l’application spécifique et l’impact clinique du tNGS pour le diagnostic de la pneumonie de C. pneumoniae , en particulier chez la population pédiatrique et adolescente, restent rares. Il existe une lacune notable dans la littérature concernant les flux de travail standardisés qui intègrent le tNGS depuis la sélection du patient jusqu’à l’interprétation des résultats et la prise de décision thérapeutique. L’objectif global de ce rapport de cas est d’illustrer le rôle potentiel du tNGS dans l’algorithme diagnostique de la pneumonie atypique suspectée et de fournir des perspectives cliniques pratiques sur son application. Nous présentons le cas d’une adolescente atteinte d’une pneumonie à C. pneumoniae , soutenue par des tNGS BALF après un bilan initial non concluant. Ce rapport vise à délimiter les avantages du tNGS par rapport aux techniques diagnostiques alternatives, à intégrer son utilité dans le cadre plus large de la littérature diagnostique des maladies infectieuses, et à fournir des informations claires pour aider les cliniciens à déterminer quand une approche diagnostique aussi avancée est appropriée pour leurs patients.

Présentation du dossier
Une étudiante de 14 ans, sans antécédents médicaux significatifs, a été admise au département de médecine respiratoire et de soins intensifs en juin 2025. Elle présentait des antécédents de toux de sept jours et une expectoration de craups purulent jaune-vert. La toux s’est intensifiée avec une douleur aiguë et aiguë sur le côté droit de la poitrine dès l’inspiration un jour avant l’admission. Elle a également rapporté des symptômes concomitants de mal de gorge, de congestion nasale et de pertes nasales purulentes. Notamment, elle a nié toute fièvre, frissons, sifflement, essoufflement, hémoptysie, sueurs nocturnes, douleurs articulaires ou éruptions cutanées. Elle s’était auto-médicamentée avec un mélange composé de Houttuynia cordata pendant cinq jours sans soulagement symptomatique. Un scanner thoracique ambulatoire a révélé des ombres dans le lobe supérieur droit, suggérant une infection, ce qui a conduit à son admission pour suspicion de pneumonie d’acquisition communautaire.

Lors de l’examen physique au moment de l’admission, ses signes vitaux étaient stables : température de 36,4 °C, pouls de 88 battements/minute, fréquence respiratoire de 18 respirations/min et tension artérielle de 87/57 mmHg. Elle était alerte et consciente. L’examen de la tête et du cou n’a révélé aucune cyanose des lèvres, avec une légère congestion pharyngée. Sa paroi thoracique était symétrique, les percussions étaient claires sur les deux côtés, et l’auscultation révélait des bruits respiratoires clairs sans aucune zone audible. L’examen cardiaque a révélé un rythme régulier à 88 battements/min sans souffle pathologique. L’examen abdominal était doux et non sensible. L’examen neurologique n’a pas été remarquable.

Diagnostic, évaluation et plan
Le diagnostic initial à l’admission était une pneumonie acquise par la communauté (lobe supérieur droit). Des examens auxiliaires ont été réalisés pour éclaircir l’étiologie. Les résultats de laboratoire ont montré une ligne sanguine complète normale (globules blancs 7,05 × 109/L, neutrophiles 56,6 %) et des marqueurs inflammatoires sans remarque (CRP à haute sensibilité 0,55 mg/L, amyloïde sérique A <5 mg/L, procalcitonine <0,04 ng/mL). Un indice crucial fut une sérologie IgM positive de Chlamydia pneumoniae (COI 22,9, référence <10). Cependant, un panel complet d’acides nucléiques du virus respiratoire (incluant adénovirus, grippe A/B, RSV, Mycoplasma pneumoniae, rhinovirus humain et SARS-CoV-2) a donné des résultats négatifs, tout comme les tests pour la tuberculose (coloration à l’acide d’échat, ADN tuberculeux, test cutané de fusion recombinante Mycobacterium tuberculosis) et l’infection cryptococoque. L’imagerie par scanner thoracique a confirmé des ombres à haute densité et fragmentées avec des marges floues dans le lobe supérieur droit (Figure 1).

Un diagnostic différentiel a été soigneusement envisagé. La pneumonie bactérienne a été jugée moins probable en raison de l’absence de forte fièvre et des marqueurs inflammatoires normaux. La tuberculose pulmonaire était jugée peu probable compte tenu des tests de soutien négatifs et de l’absence de symptômes constitutionnels. La pneumonie de Mycoplasma pneumoniae a été écartée par le sérum négatif IgM. Le principal défi diagnostique résidait dans l’interprétation de la C . pneumoniae IgM positive. Bien qu’il suggère une infection récente, un seul résultat positif d’IgM peut refléter une infection passée, une réactivité croisée ou une réponse immunitaire non spécifique, ce qui en fait un indicateur non fiable pour s’engager dans une thérapie cibléeprolongée 6. Cette incertitude diagnostique, associée aux preuves radiographiques claires de pneumonie, a constitué une justification convaincante pour poursuivre un diagnostic microbiologique définitif.

Le plan de gestion a donc été élaboré pour résoudre cette impasse diagnostique. Après discussion avec la famille du patient, il a été décidé de procéder à une bronchoscopie par fibre optique afin de prélever un échantillon des voies respiratoires inférieures directement sur le site de l’infection. Le plan spécifique était : (1) de réaliser une bronchoscopie avec lavage bronchoalvéolaire (BAL) dans le lobe supérieur droit affecté ; (2) soumettre le fluide BAL (BALF) à une analyse complète des agents pathogènes en utilisant un séquençage ciblé de nouvelle génération (tNGS) ; (3) ajuster le traitement anti-infectieux en fonction des résultats du tNGS ; et (4) surveiller de près les symptômes cliniques et les signes du patient pendant le traitement. Cette approche visait à dépasser les limites de la sérologie et à obtenir des données non ambiguës et spécifiques à chaque pathogène afin d’orienter une approche de médecine de précision pour ses soins.

Accès restreint. Veuillez vous connecter ou commencer un essai pour afficher ce contenu.

Protocole

Cette étude est approuvée par le Comité d’éthique de l’Hôpital du Tiers Peuple de Yueqing (Approbation n° 2026003), garantissant le respect des normes éthiques pour la recherche humaine. L’objectif principal est d’obtenir un échantillon de haute qualité des voies respiratoires inférieures pour une analyse complète des agents pathogènes. Un consentement éclairé écrit a été obtenu du tuteur légal du patient pour la procédure clinique et la publication de ce rapport de cas. Le protocole suivant est mis en œuvre pour l’évaluation diagnostique et la prise en charge des patients suspectés de pneumonie atypique, en utilisant un séquençage de nouvelle génération ciblé (tNGS) pour obtenir un diagnostic étiologique. Les réactifs et l’équipement utilisés sont listés dans le tableau des matériaux.

1. Sélection des patients et indication clinique pour le tNGS

  1. La sélection des patients s’est basée sur des preuves cliniques et radiographiques de pneumonie acquise en communauté (CAP).
  2. La décision de procéder à des diagnostics moléculaires avancés a été déclenchée par la convergence de plusieurs facteurs : une sérologie IgM positive mais potentiellement non spécifique de C. pneumoniae, un manque de réponse inflammatoire systémique significative, et la nécessité clinique d’exclure d’autres agents pathogènes tels que Mycobacterium tuberculosis.

2. Collecte et traitement des spécimens

  1. La bronchoscopie a été réalisée sous anesthésie intraveineuse à l’aide de propofol (220 mg) et d’alfentanil (0,4 mg). Le bronchoscope a été avancé vers le lobe affecté.
    1. Pour garantir la consistance de l’échantillon, un lavage bronchoalvéolaire (BAL) était pratiqué spécifiquement dans le segment médian du poumon, et le liquide du segment antérieur était systématiquement éliminé. Une solution saline stérile a été injectée, et environ 5 à 10 mL de liquide de lavage bronchoalvéolaire (BALF) ont été aspirés à l’aide de techniques stériles.
  2. L’échantillon de BALF a été immédiatement séparé en deux aliquotes dans des conditions stériles. La première aliquote a été envoyée pour un bilan microbien de routine. La seconde aliquote, désignée pour l’analyse du tNGS, a été placée dans un tube à bouchon à vis stérile et transportée sous des conditions contrôlées de chaîne froide (≤20 °C) au laboratoire afin de préserver l’intégrité des acides nucléiques.

3. Analyse en laboratoire via un séquençage ciblé de nouvelle génération

  1. Des échantillons de liquide de lavage bronchoalvéolaire visqueux (BALF) ont été liquéfiés à l’aide d’une solution digestive et de vortex.
    1. Le fluide traité était mélangé à un conservateur d’acide nucléique, et une lyse mécanique réalisée à l’aide d’un appareil de battage de billes afin d’assurer une perturbation efficace de la paroi cellulaire. Les acides nucléiques totaux ont été extraits à l’aide d’une plateforme automatisée de co-extraction selon les instructions du fabricant.
  2. Les bibliothèques de séquençage ont été construites à l’aide d’un kit d’enrichissement ciblant les agents pathogènes respiratoires. Après purification et quantification par analyse fluorométrique, les bibliothèques ont été soumises à un enrichissement ciblé des agents pathogènes respiratoires. Les bibliothèques regroupées ont été converties en nanobilles et séquencées sur une plateforme de séquençage à haut débit.
  3. Les données brutes de séquençage étaient traitées automatiquement à l’aide d’un logiciel d’analyse des pathogènes, qui effectuait le contrôle qualité, le filtrage des lectures et l’alignement par rapport à une base de données de référence sélectionnée afin d’identifier et de semi-quantifier les micro-organismes détectés.

4. Interprétation des résultats et intervention thérapeutique

  1. Le rapport tNGS a été examiné dans les 48 heures. Le seuil pour les charges pathogènes cliniquement pertinentes a été établi dynamiquement en fonction du bruit de fond des témoins négatifs (NC) au sein du lot expérimental spécifique.
  2. Sur la base des résultats, le traitement anti-infectieux a été ajusté. Pour C. pneumoniae confirmé, la thérapie intraveineuse aux macrolides a été poursuivie, suivie d’une thérapie séquentielle orale avec un antibiotique de classe tétracycline (100 mg deux fois par jour pendant 10 jours).

Accès restreint. Veuillez vous connecter ou commencer un essai pour afficher ce contenu.

Résultats

La mise en œuvre de ce protocole diagnostique basé sur le tNGS a fourni des preuves cruciales identifiant Chlamydia pneumoniae comme l’agent pathogène dominant, guidant une thérapie antimicrobienne précise et des résultats cliniques favorables. Comme détaillé dans le profil complet des agents pathogènes (Figure 2), l’analyse tNGS du BALF a confirmé l’infection à C. pneumoniae avec 9 886 séquences, tout en identifiant également le rhinovirus...

Accès restreint. Veuillez vous connecter ou commencer un essai pour afficher ce contenu.

Discussion

Ce cas démontre l’utilité potentielle du séquençage ciblé de nouvelle génération (tNGS) pour aider au diagnostic de la pneumonie de Chlamydia pneumoniae . Lorsque les résultats sérologiques s’avèrent non concluants et que la thérapie empirique donne une réponse sous-optimale, l’analyse tNGS des échantillons des voies respiratoires inférieures permet une identification complète des agents pathogènes, permettant une intervention thérapeutique ciblée.

Co...

Accès restreint. Veuillez vous connecter ou commencer un essai pour afficher ce contenu.

Déclarations de divulgation

Les auteurs n’ont rien à divulguer.

Remerciements

Les auteures remercient la patiente et sa famille pour leur coopération, ainsi que le personnel infirmier du département de médecine respiratoire et de soins intensifs pour leur soutien clinique.

Accès restreint. Veuillez vous connecter ou commencer un essai pour afficher ce contenu.

Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
–80°C Ultra-Low Temperature FreezerThermo Scientific905Pour le stockage à long terme des échantillons et des acides nucléiques.
Biological Safety CabinetThermo Scientific1300 Series A2Fournit un environnement stérile pour le traitement des échantillons.
Bronchoalveolar Lavage (BAL) CatheterTeleflex22-160Pour l'instillation et la récupération de sérum physiologique stérile pendant la procédure de BAL.
Computer WorkstationDellPrecision 5860 TowerCalcul haute performance pour l'analyse des données.
Cryogenic Vial (2.0 mL)Thermo Scientific375418Pour le stockage de l'ADN extrait à des températures contrôlées.
DNA/RNA ShieldZymo ResearchR1100Solution de conservation des acides nucléiques utilisée pendant le traitement des échantillons.
Doxycycline Hyclate Capsules(Fournisseur local)100 mgAntibiotique de classe tétracycline pour une thérapie orale séquentielle.
Fiberoptic BronchoscopeOlympusBF-XP190Utilisé pour le lavage broncho-alvéolaire (LBA) sous sédation consciente.
High-Speed CentrifugeEppendorf5425 RPour la préparation et le traitement des échantillons.
High-Throughput SequencerMGIMGISEQ-200Plateforme de séquenceur génétique pour l'analyse NGS ciblée.
Microcentrifuge Tubes (1.5 mL)Eppendorf22431021Tubes stériles, sans DNase-/RNase- pour la manipulation des échantillons.
Pathogen Analysis SoftwareGenseqGenseq-PMPipeline bioinformatique pour l'identification au niveau des espèces.
Qubit 4.0 FluorometerThermo Fisher ScientificQ33238Utilisé pour la quantification précise des bibliothèques.
Sequencing Reaction KitDian DiagnosticsNo. 20240005Kit universel pour la réaction de séquençage sur la plateforme MGI.
Serological Test Kit (C. pneumoniae IgM)EuroimmunEI 2390-9601 GUtilisé pour le criblage sérologique initial.
Sterile Normal Saline (0.9%)Baxter2B2324Utilisé comme liquide de lavage pendant la bronchoscopie.
Targeted NGS Enrichment PanelDian DiagnosticsRespiratory Pathogen 200+ PanelPanneau personnalisé (Genseq RTI) couvrant plus de 200 pathogènes.

Références

  1. Jain, S., et al. Community-acquired pneumonia requiring hospitalization among U.S. adults. N Engl J Med. 373 (5), 415-427 (2015).
  2. Blasi, F., et al. Epidemiology of Chlamydia pneumoniae. Clin Microbiol Infect. 4 (Suppl 4), S1-S6 (1998).
  3. Hahn, D. L., et al. Association of Chlamydia pneumoniae (strain TWAR) infection with wheezing, asthmatic bronchitis, and adult-onset asthma. JAMA. 266 (2), 225-230 (1991).
  4. Kuo, C. C., et al. Demonstration of Chlamydia pneumoniae in atherosclerotic lesions of coronary arteries. J Infect Dis. 167 (4), 841-849 (1993).
  5. Dowell, S. F., et al. Standardizing Chlamydia pneumoniae assays: Recommendations from the Centers for Disease Control and Prevention (USA) and the Laboratory Centre for Disease Control (Canada). Clin Infect Dis. 33 (4), 492-503 (2001).
  6. Persson, K., et al. Evaluation of a commercial test for antibodies to the chlamydial lipopolysaccharide (Medac) for serodiagnosis of acute infections by Chlamydia pneumoniae (TWAR) and Chlamydia psittaci. APMIS. 108 (2), 131-138 (2000).
  7. Augenbraun, M. H., Roblin, P. M., Chirgwin, K., Landman, D., Hammerschlag, M. R. Isolation of Chlamydia pneumoniae from the lungs of patients infected with the human immunodeficiency virus. J Clin Microbiol. 29 (2), 401-402 (1991).
  8. Hammerschlag, M. R., Kohlhoff, S. A., Dean, D. Chlamydia pneumoniae. Mandell, Douglas and Bennett’s Principles and Practice of Infectious Diseases. , 2296-2304 (2025).
  9. Mitchell, S. L., et al. Next-generation sequencing in clinical microbiology: Are we there yet?. Clin Lab Med. 39 (3), 405-418 (2019).
  10. Liang, A., et al. Targeted next-generation sequencing (tNGS): An upcoming application for pathogen identification in clinical diagnosis. J Infect Public Health. 18 (10), 102936 (2025).
  11. Yang, Y., et al. Comparison of next-generation sequencing with traditional methods for pathogen detection in cases of lower respiratory tract infection at a community hospital in Eastern China. Medicine (Baltimore). 101 (51), e32423 (2022).
  12. Society of Clinical Microbiology of China International Exchange and Promotion Association for Medical and Healthcare. Expert consensus on the application and practice of targeted next-generation sequencing in infectious diseases. Zhonghua Yi Xue Za Zhi. 104 (48), 4375-4383 (2024).
  13. Cui, X. M., Chen, H. Y., Ding, Z. Q., et al. Inflammatory state of patients with Takayasu’s arteritis complicated with elevated serum amyloid A. Fudan Univ J Med Sci. 45 (6), 793-798 (2018).
  14. Martin-Loeches, I., et al. ERS/ESICM/ESCMID/ALAT guidelines for the management of severe community-acquired pneumonia. Eur Respir J. 61 (4), 2200735 (2023).
  15. Metlay, J. P., et al. Diagnosis and treatment of adults with community-acquired pneumonia: An official clinical practice guideline of the American Thoracic Society and Infectious Diseases Society of America. Am J Respir Crit Care Med. 200 (7), e45-e67 (2019).
  16. Schuetz, P., et al. Procalcitonin to initiate or discontinue antibiotics in acute respiratory tract infections. Cochrane Database Syst Rev. 10 (10), CD007498 (2017).
  17. Wilson, M. R., et al. Actionable diagnosis of neuroleptospirosis by next-generation sequencing. N Engl J Med. 370 (25), 2408-2417 (2014).

Accès restreint. Veuillez vous connecter ou commencer un essai pour afficher ce contenu.

Réimpressions et autorisations

Explorer plus d’articles

Pneumonie acquise dans la communautéséquençage ciblélavage broncho-alvéolairemacrolidothérapietraitement à la doxycyclinepneumonie atypiquediagnostic rapide des agents pathogènesinfection respiratoire