Le système CRISPR–Cas a révolutionné l’édition du génome ; cependant, les méthodes conventionnelles de génération d’ARN à guide unique (sgRNA) impliquent souvent des étapes de clonage longues ou des kits de synthèse commerciaux coûteux. Une stratégie PCR superposée optimisée en une étape est présentée pour la synthèse rapide et économique de gabarits d’ADN pour la transcription in vitro de sgRNA. En utilisant quatre amorces partiellement superposées couvrant le promoteur T7, la séquence guide spécifique à la cible et l’échafaudage de sgRNA, des modèles de longueur complète sont assemblés en une seule réaction PCR sans clonage. L’optimisation expérimentale systématique a établi un rapport d’amorce optimal (AF1 :AF2 :AF3 :Tracr-R = 50:5:1:50), minimisant les sous-produits non spécifiques tout en maximisant le rendement complet du produit, comme confirmé par l’électrophorèse en gel d’agarose. Cette approche a été étendue avec succès pour générer des modèles pour le sgRNA Staphylococcus aureus Cas9 (saCas9), démontrant une applicabilité inter-systèmes au-delà de Streptococcus pyogenes Cas9 (SpCas9). Bien que la synthèse chimique directe des sgRNA offre des avantages tels que la haute pureté, des modifications chimiques pour améliorer la stabilité et des effets hors cible réduits, elle reste prohibitivement coûteuse pour les applications à haut débit ou les criblages à grande échelle nécessitant de nombreux sgRNA. Les analyses de clivage in vitro ont démontré que les ARN-guides générés par cette méthode atteignent des efficacités d’édition comparables à celles obtenues par le clonage conventionnel à base de plasmides. De plus, les complexes ribonucléoprotéiques assemblés avec ces sgRNA et livrés dans HEK293T cellules par électroporation ont entraîné la formation d’indel détectable au locus cible, confirmant la fonctionnalité in vivo. L’analyse des coûts indique que cette méthode réduit substantiellement les coûts de préparation du gabarit par rapport aux kits de synthèse commerciaux tout en diminuant le temps de traitement de jours à plusieurs heures, offrant ainsi une approche accessible et évolutive pour les laboratoires engagés en recherche génétique.