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Article de méthode

PCR chevauchante en une étape pour la synthèse rapide de gabarits d’ADN d’ARN à guide unique pour le système CRISPR

221 vues

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DOI :

10.3791/70369

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24 avril 2026

Dans cet article

Résumé

Une méthode de PCR chevauchante en une étape, utilisant quatre amorces, permet une génération rapide et à faible coût de gabarits d’ADN pour la transcription in vitro de sgARN. Un ratio optimisé des amorces (50:5:1:50) produit des sgRNA de haute qualité en 5 heures, avec une validation fonctionnelle démontrée par des tests in vitro et des activités d’édition dans HEK293T cellules.

Résumé

Le système CRISPR–Cas a révolutionné l’édition du génome ; cependant, les méthodes conventionnelles de génération d’ARN à guide unique (sgRNA) impliquent souvent des étapes de clonage longues ou des kits de synthèse commerciaux coûteux. Une stratégie PCR superposée optimisée en une étape est présentée pour la synthèse rapide et économique de gabarits d’ADN pour la transcription in vitro de sgRNA. En utilisant quatre amorces partiellement superposées couvrant le promoteur T7, la séquence guide spécifique à la cible et l’échafaudage de sgRNA, des modèles de longueur complète sont assemblés en une seule réaction PCR sans clonage. L’optimisation expérimentale systématique a établi un rapport d’amorce optimal (AF1 :AF2 :AF3 :Tracr-R = 50:5:1:50), minimisant les sous-produits non spécifiques tout en maximisant le rendement complet du produit, comme confirmé par l’électrophorèse en gel d’agarose. Cette approche a été étendue avec succès pour générer des modèles pour le sgRNA Staphylococcus aureus Cas9 (saCas9), démontrant une applicabilité inter-systèmes au-delà de Streptococcus pyogenes Cas9 (SpCas9). Bien que la synthèse chimique directe des sgRNA offre des avantages tels que la haute pureté, des modifications chimiques pour améliorer la stabilité et des effets hors cible réduits, elle reste prohibitivement coûteuse pour les applications à haut débit ou les criblages à grande échelle nécessitant de nombreux sgRNA. Les analyses de clivage in vitro ont démontré que les ARN-guides générés par cette méthode atteignent des efficacités d’édition comparables à celles obtenues par le clonage conventionnel à base de plasmides. De plus, les complexes ribonucléoprotéiques assemblés avec ces sgRNA et livrés dans HEK293T cellules par électroporation ont entraîné la formation d’indel détectable au locus cible, confirmant la fonctionnalité in vivo. L’analyse des coûts indique que cette méthode réduit substantiellement les coûts de préparation du gabarit par rapport aux kits de synthèse commerciaux tout en diminuant le temps de traitement de jours à plusieurs heures, offrant ainsi une approche accessible et évolutive pour les laboratoires engagés en recherche génétique.

Introduction

Le système CRISPR–Cas, issu d’un mécanisme immunitaire adaptatif chez les bactéries et les archées, a révolutionné l’ingénierie génétique en permettant une édition génomique précise sur divers organismes 1,2. Un composant clé est l’ARN à guide unique (sgRNA), un ARN chimérique qui dirige les nucléases Cas vers des loci génomiques spécifiques ; sa conception modulaire permet un reciblage par modification d’une séquence proto-espaceuse d’environ 20nucléotides 3. Au-delà de SpCas9, d’autres nucléases Cas aux propriétés distinctes ont été largement adoptées....

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Protocole

L’utilisation de la lignée cellulaire HEK293T disponible commercialement (ATCC CRL-3216) a été réalisée conformément aux directives du Comité d’éthique du First People’s Hospital de la ville de Chenzhou, Université de Chine du Sud, pour l’utilisation des lignées cellulaires d’origine humaine. Les réactifs, logiciels et équipements utilisés sont listés dans le tableau des matériaux.

1. Conception des séquences cibles d’ARNsgs

  1. Identifier la région génomique cible à l’aide d’outils en ligne établis (par exemple, CRISPRscan, CHOPCHOP ou Broad Institute CRISPick

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Résultats

L’application réussie du protocole PCR à chevauchement en une étape produit une bande d’ADN unique et nette de la taille attendue lorsqu’elle est analysée par électrophorèse sur gel d’agarose.

Des rapports d’amorces sous-optimaux, en particulier ceux avec des concentrations excessives d’amorces internes (AF2 et AF3), entraînent des bandes supplémentaires plus grandes que le produit attendu, indiquant une amplification non spécifique ou une formation d’amorce-d.......

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Discussion

Un protocole simplifié et économique pour synthétiser les gabarits d’ADN d’ARNsg via une stratégie PCR chevauchante en une étape est décrit. Cette méthode élimine le besoin de construction et de clonage de plasmides, réduisant le temps de préparation du modèle de plusieurs jours à environ 5 heures. Un aspect clé de cette approche est l’optimisation systématique du rapport amorce, déterminé à 50:5:1:50 (AF1 :AF2 :AF3 :Tracr-R), correspondant à des concentrations de travail de 10 .......

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Déclarations de divulgation

Les auteurs n’ont rien à divulguer.

Remerciements

Ce travail a été soutenu par le projet de recherche en santé de la Commission provinciale de la santé du Hunan (subvention numéro W20243264), la Natural Science Foundation of Hunan province (grant numéro 2023JJ50368), le projet clé de recherche du Département de l’Éducation de la province du Hunan (subvention numéro 24A0607), et le projet d’équipe innovant du First People’s Hospital of Chenzhou (subvention numéro CX202103).

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Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
100 bp DNA LadderTIANGENMD109Marqueur de taille d'ADN pour l'électrophorèse
2Taq Plus MasterMixCWBIOCW2849MRéactif d'amplification PCR
50 bp DNA LadderTIANGENMD108Marqueur de taille d'ADN pour les petits fragments
6DNA loading bufferTIANGEN1109565Tampon de chargement d'échantillon pour l'électrophorèse
Agarose Gel DNA Recovery KitTIANGENDP219Purification d'ADN à partir de gel d'agarose
Agarose I Thermo Scientific 17850Préparation de gel d'agarose
Broad Institute CRISPickhttps://portals.broadinstitute.org/gppx/crispick/publicOutil de conception sgRNA
CentrifugeHENGNUO2-16RCentrifugation d'échantillon
Certified Copper Fetal Bovine SerumUmedium, Beijing BioTopped Technology Co., Ltd3023ASupplément pour culture cellulaire
CH3CO2HShanghai Aladdin Biochemical Technology Co., LtdA758682Réactifs pour la préparation de la solution tampon TAE
CHOPCHOPhttps://chopchop.cbu.uib.no/Outil de conception sgRNA
CO2 incubatorThermo Scientific51032874Incubation de culture cellulaire de mammifère
CRISPRscanhttps://www.crisprscan.org/Outil de conception sgRNA
DMEM (Dulbecco's Modified Eagle Medium)KeyGEN BioTECHKGL1211-500Milieu de culture cellulaire
dsDNaseThermo Scientific EN0771Élimination du modèle d'ADN après transcription
ECM 830 Square Wave Electroporation SystemBTXECM830Électroporation des cellules
EDTA Na2BioSharpBS108Réactifs pour la préparation de la solution tampon TAE
Electric thermostatic water bathSHANGHAI SUMSUNG LABORATORY INSTRUMENT CO.,LTDDKD8Incubation à température contrôlée
Electrophoresis Apparatus TrophoresisLIUYIDYCP-31BNÉlectrophorèse sur gel d'agarose
Gel Imaging analysis systemShanghHai JiaPengZF-258Visualisation et imagerie de gel
GenCRISPR SpCas9GenScriptZ03624-GMP-2.5Nucléase Cas9 pour l'édition du génome
Genomic DNA extraction kitTIANGENYDP304Isolation d'ADN génomique
HiScribe T7 High Yield RNA Synthesis KitNEBE2040STranscription in vitro de sgRNA
MiniAmp ThermocyclerThermo Scientific A37834Amplification PCR
NanoDrop 2000c SpectrophotometerThermo Scientific 2000cQuantification d'acides nucléiques
Nucleic acid stain (e.g., GeneRed)TIANGENRT211Visualisation de l'ADN dans un gel d'agarose
PCR Using Q5 Quick-Load High-Fidelity 2X Master MixNEBM0578Amplification PCR haute-fidélité
Primers (AF1, AF2, AF3, Tracr-R)GenScriptOligonucléotides pour l'assemblage du modèle de sgRNA
Tris-baseBioSharpBS083Réactifs pour la préparation de la solution tampon TAE
VAHTS RNA Clean BeadsVAHTSN412-01Purification de l'ARN

Références

  1. Tamura, R., Kamiyama, D. CRISPR-Cas9-mediated knock-in approach to insert the GFP(11) tag into the genome of a human cell line. Methods Mol Biol. 2564, 185-201 (2023).
  2. Cong, L., et al. Multiplex ....

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Réimpressions et autorisations

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