Toutes les procédures ont été menées conformément à la Norme officielle mexicaine pour le soin et l’utilisation des animaux de laboratoire (NOM-062-ZOO-199) et approuvées par le Comité institutionnel pour le soin et l’utilisation des animaux de laboratoire (CICUAL) de l’Universidad Nacional Autónoma de México (UNAM), sous le protocole numéro 035-CIC-2023. Tous les matériaux utilisés dans l’étude sont mentionnés dans le tableau des matériaux.
Définition et acquisition de la population
Un total de 30 C57BL/6 souris (9 femelles et 21 mâles) au jour postnatal 30 (P30), avec un poids corporel initial de 15 à 18 g, ont été utilisés. Les souris étaient hébergées individuellement dans des cages domestiques dans des conditions environnementales contrôlées : un cycle clair-obscurité de 12h12 (lumières allumées à 6h00), une température ambiante de 23 ± 2 °C, et une humidité relative de 70 ± 10 %.
Habituation
À P30, les animaux étaient logés individuellement dans des cages domestiques avec un accès improvisé à l’eau et à la nourriture standard. Toutes les cages étaient enrichies sur le plan environnemental avec des tubes en carton, et des copeaux de bois étaient utilisés comme litière. Pendant la période d’habituation de 7 jours, le poids corporel, la consommation alimentaire et la consommation d’eau ont été enregistrés toutes les 24 heures.
Une consommation quasi boulimique
Le modèle expérimental utilisé dans cette étude est basé sur le paradigme intermittent de la consommation excessive décrit parles chercheurs 14. Avant l’attribution des groupes, tous les animaux étaient amenés à un poids corporel moyen comparable (17 g) afin de réduire la variabilité de base. Les animaux (N = 30) ont ensuite été assignés au hasard à des groupes expérimentaux à l’aide d’un outil numérique « tourne-roue », dans lequel les sujets individuels étaient listés et répartis séquentiellement à l’un des trois groupes. Le groupe standard comprenait des femelles (groupe féminin standard, SFG ; n = 3) et des mâles (groupe masculin standard, SMG ; n = 7), qui avaient un accès continu à la nourriture et à l’eau standard. Le groupe d’accès continu comprenait des femelles (groupe femelle continue, CFG ; n = 3) et des mâles (groupe mâle continu, CMG ; n = 7) disposant d’un accès continu ad libitum à la nourriture standard, à l’eau et à la nourriture agréable au goût (M&M). Le groupe d’accès intermittent comprenait des femmes (groupe des femmes intermittentes, IFG ; n =3) et des hommes (groupe des mâles intermittents, IMG ; n = 7), qui avaient un accès ad libitum à la nourriture et à l’eau standards, et avaient accès à des aliments dégustés trois fois par semaine (lundi, mercredi et vendredi) pendant 2 heures (16h00 à 18h00). Ces conditions d’alimentation ont été maintenues pendant 35 jours.
Stimulation magnétique corporelle entière (WB-MS)
Ce paradigme de stimulation a été sélectionné sur la base d’études antérieures utilisant des champs électromagnétiques de basse fréquence (50 Hz, 1 mT) chez des souris C57BL/6 dans des conditions expérimentalessimilaires 20,21. La WB-MS a été réalisée à l’aide d’un dispositif de magnétothérapie pulsée (Dhan 1000, unité de magnétothérapie) qui générait un champ magnétique alternatif sinusoïdal de 10 Gauss (1 mT) à 50 Hz. Pour les séances de stimulation, les souris restaient logées individuellement dans leurs cages domestiques, placées entre deux plaques électromagnétiques de chaque côté. Pour éviter les interférences du champ magnétique, des composants métalliques, y compris la cage en fil métallique, la grille et la bouteille d’eau, ont été temporairement retirés pendant la stimulation. Cette configuration permettait aux animaux de se déplacer librement tout au long de la procédure sans contrainte ni stress supplémentaire.
Pour garantir la cohérence expérimentale, des conditions de manipulation et d’environnement identiques ont été maintenues lors des séances de stimulation et de non-stimulation. Lors des séances de contrôle (jours 15 à 21), les plaques magnétiques étaient positionnées de manière identique mais restaient inactives, contrôlant ainsi les effets potentiels de la manipulation, de la manipulation de la cage, du bruit environnemental ou du placement électromagnétique des plaques.
La SB-EM consistait en des expositions quotidiennes de 20 minutes de 15h40 à 16h00 sur sept jours consécutifs (jours 22 à 28 du protocole expérimental), juste avant la période d’évaluation de l’hyperphagie boulimique (16h00–18h00). Du 29e au 35e jour, les souris ont de nouveau été soumises à des séances sans stimulation, après quoi leur apport alimentaire a été évalué.
Collecte de tissu adipeux
À la fin du protocole expérimental (jour 36, 8h00), du tissu adipeux a été prélevé auprès de tous les groupes expérimentaux. Le SG était composé de trois femelles et deux mâles (n = 5), le CG de trois femelles et trois mâles (n = 6), et le IG de trois femelles et quatre mâles (n = 7). Tous les animaux ont été anesthésés avec de la kétamine (60 mg/kg) et de la xylazine (5 mg/kg)22, et l’absence de réponse nociceptive à la stimulation par pincement des orteils a confirmé une profondeur d’anesthésie adéquate. Une incision ventrale de la ligne médiane a ensuite été réalisée à l’aide d’une lame de scalpel n°3, s’étendant à travers les régions abdominales sous-costale, inguinale et médiane, suivie d’une légère rétraction latérale de la peau pour exposer la cavité abdominale.
Les dépôts de tissu adipeux de Gonadal, rétropéritonéal et sous-cutané ont été soigneusement identifiés, disséqués et excisés dans des conditions standardisées afin de minimiser la variabilité entre échantillons. Immédiatement après la dissection, les tissus étaient pesés à l’aide d’une balance analytique calibrée (capacité maximale 220 g, lisibilité 0,1 mg), vérifiée précédemment selon les spécifications dufabricant 23. Tous les échantillons ont été traités dans des conditions identiques entre groupes afin d’assurer la cohérence expérimentale.
Préparation du tissu cérébral et immunofluorescence
Les souris ont été euthanasiées 90 minutes après ladernière session de consommation alimentaire 24. Les cerveaux ont été prélevés après perfusion intracardiaque avec 4 % de paraformdéhyde puis traités pour une analyse histologique. Des coupes cérébrales coronales (30 μm) ont été obtenues à l’aide d’un cryostat maintenu à −18 °C et stockées dans des PBS contenant de l’azide de sodium jusqu’au traitement. Un sous-ensemble d’animaux mâles de chaque groupe expérimental a été alloué à la préparation du tissu cérébral pour des analyses d’immunofluorescence (SG, n = 4 ; CG, n = 4 ; IG, n = 4), tandis que les autres animaux étaient utilisés pour la collecte de tissu adipeux. Cette répartition différentielle a été déterminée a priori selon des exigences méthodologiques, car la perfusion intracardiaque avec le paraformodéhyde entraîne une fixation tissulaire incompatible avec le prélèvement ultérieur du tissu adipeux en raison de la perturbation de l’intégrité du tissu adipeux. Par conséquent, la distribution des échantillons était exclusivement déterminée par des contraintes techniques et était indépendante de l’attribution expérimentale de groupes ou des résultats biologiques.
Pour l’immunofluorescence du c-fos, des sections ont été incubées pendant 72 heures avec un anticorps monoclonal anti-c-Fos de souris (1:1000, sc-166940) dilué dans du PBS contenant 0,25 % de gélatine de peau porcine et 0,5 % de Triton X-100, qui servait de solution de blocage et de perméabilisation. L’incubation primaire des anticorps a été réalisée pendant 24 heures à température ambiante, suivie de 48 heures à 4 °C. Après l’incubation, les sections ont été soigneusement rincées dans du PBS et incubées pendant 2 heures avec un anticorps secondaire anti-souris polyclonal de l’âne (Alexa Fluor 488-conjugué, 1:500, AB_2338840) dilué dans la même solution. Enfin, les sections étaient montées sur des glissières en verre utilisant un support de montage.
Acquisition et quantification d’images
L’imagerie confocale a été réalisée à l’aide d’un microscope équipé d’un laser 488 nm et d’une lentille objective 20x. Les images Z-stack étaient acquises à l’aide du logiciel NIS-Elements C et stockées sous identifiants codés pour une analyse aveugle. La quantification des noyaux c-Fos-positifs a été réalisée à l’aide d’ImageJ (ImageJ 2.9.0 / 1.53t). Seuls les noyaux entièrement contenus étaient inclus dans les décomptes, et une approche basée sur les quadrants a été appliquée pour éviter le double comptage des cellules individuelles. Pour chaque animal, une image a été acquise à partir de chacune des trois sections immunocolorées indépendantes en utilisant des paramètres d’acquisition identiques pour tous les groupes expérimentaux. Le nombre de noyaux c-Fos positifs a été quantifié individuellement pour chaque image, et les valeurs obtenues des trois sections correspondant au même animal ont été additionnées. Cette valeur totale a ensuite été normalisée à la surface totale analysée et exprimée en densité c-Fos (noyaux positifs/mm2). Le schéma global des procédures expérimentales utilisées est illustré dans la Figure 1A–H.

Figure 1 : Conception expérimentale et chronologie du protocole de type boulimie alimentaire et intervention en BS. (A) montre une image représentative d’une souris indiquant les conditions initiales de logement. Un total de 30 souris (9 femelles et 21 mâles) ont été hébergées individuellement dans des cages domestiques à partir de P30 et ont suivi une période d’habituation d’une semaine. (B) illustre les conditions alimentaires mises en œuvre tout au long du protocole de type boulimie alimentaire, du premier jour expérimental au 35e jour. Le groupe témoin bénéficiait d’un accès à volonté à la nourriture et à l’eau standards. Les groupes à accès continu avaient un accès improvisé à la nourriture standard, à l’eau et à la nourriture agréable. Les groupes d’accès intermittent avaient un accès improvisé à la nourriture et à l’eau standards. En même temps, la nourriture savoureuse n’était fournie que les lundis, mercredis et vendredis de 16h00 à 18h00 (C). Ce qui indique que du 15e au 21e jour, les animaux ont continué à suivre les mêmes conditions alimentaires tandis que des plaques de stimulation magnétique étaient placées sous les cages sans fournir de stimulation (exposition simulée). (D) montre que du 22e au 28e jour, la WB-MS a été administrée 20 minutes avant l’exposition alimentaire savoureuse tout en maintenant les conditions alimentaires correspondantes à chaque groupe. (E) indique que du 29e au 35e jour, le WB-MS a été arrêté, bien que les conditions alimentaires soient restées inchangées. (F) montre que les cerveaux ont été prélevés au jour postnatal 72 (P72), suivis du prélèvement de tissu adipeux au jour postnatal 73 (P73). (G) illustre le découpage du cerveau à l’aide d’un cryostat et de procédures immunohistochimiques. Enfin, (H) montre l’analyse par microscopie confocale de l’immunoréactivité du c-Fos. Les images ont été créées par les auteurs à l’aide de Biorender, et une licence appropriée a été obtenue. Veuillez cliquer ici pour voir une version agrandie de cette figurine.
Analyse statistique
Les analyses statistiques ont été réalisées à l’aide de la version 25 de SPSS. Comme la distribution normale ne pouvait pas être supposée, des tests non paramétriques ont été utilisés tout au long de l’étude. Les différences entre SG, CG et IG ont été évaluées à l’aide du test de Kruskal–Wallis. Des comparaisons répétées au sein de chaque groupe expérimental ont été analysées à l’aide du test de Friedman, suivies de tests à comparaison multiple lorsque cela était approprié. En raison de tailles d’échantillon limitées pour certains critères expérimentaux, en particulier chez les femelles (n = 3 par groupe), les données des souris C57BL/6 mâles et femelles ont été regroupées pour les analyses présentées dans les figures 2, 3 et 4 afin d’améliorer la robustesse statistique et de soutenir une évaluation exploratoire des résultats expérimentaux. De plus, des données combinées d’ingestion de type boulimie chez des souris C57BL/6 mâles et femelles ont été analysées à l’aide d’une ANOVA bidirectionnelle, suivies de tests de comparaison multiple pour évaluer les effets du groupe expérimental et du temps tout au long du protocole d’alimentation, y compris la semaine de stimulation WB-MS. La signification statistique a été définie comme p ≤ 0,05.