Article de méthode

Infection de l’articulation sternoclaviculaire causée par Staphylococcus capitis

DOI :

10.3791/70566

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8 mai 2026

 ,  ,  ,  ,  ,  , 
1The Second School of Clinical Medicine, Zhejiang Chinese Medical University, 2Department of Orthopaedic Surgery, Zhejiang Hospital, 3The Second Affiliated Hospital of Zhejiang Chinese Medical University, Xinhua Hospital, 4Department of Orthopedics, No.903 Hospital of PLA Joint Logistic Support Force, 5Department of Orthopedics, The First Affiliated Hospital, Zhejiang University

Dans cet article

Résumé

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Ici, nous présentons un cas d’infection de l’articulation sternoclaviculaire droite avec ostéomyélite due à un Staphylococcus capitis. Le patient a subi un débridement chirurgical et un drainage suivis de 10 semaines d’antibiotiques, ce qui a permis une résolution complète des symptômes et une cicatrisation satisfaisante de la plaie.

Résumé

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Une patiente de 74 ans s’est présentée avec « palpitations et oppression thoracique pendant une demi-journée ». Les symptômes sont apparus soudainement en prenant l’ascenseur, accompagnés d’essoufflement, mais sans vertiges ni douleurs thoraciques. Le patient avait des antécédents de diabète de 5 ans, géré avec de la metformine. Elle avait subi une mastectomie droite il y a 20 ans pour un cancer du sein. À l’admission, ses signes vitaux étaient stables. L’examen physique a révélé une masse tendre et enflée du côté droit du cou, de texture molle, avec un drainage purulent. Les analyses sanguines ont montré un taux élevé de protéines C-réactives (PCR) (51,47 mg/L). Les examens d’imagerie (tomodensitométrie [CT], échographie, imagerie par résonance magnétique [IRM]) ont révélé une masse de tissu mou dans la région claviculaire droite, avec une possible ostéomyélite. Le patient a été diagnostiqué avec une infection cutanée de l’articulation sternoclaviculaire droite, compliquée par une ostéomyélite.

Un débridement chirurgical et un drainage ont été réalisés, et l’examen pathologique a confirmé une infection par Staphylococcus capitis . Le patient a été traité par une cure d’antibiotiques de 10 semaines, initialement par ertapénem intraveineux, puis remplacé par un linézolide oral. Tout au long du traitement, aucune réaction indésirable aux médicaments n’a été observée. Un mois plus tard, les observations de suivi indiquent que la plaie chirurgicale du patient guérit bien. Les symptômes du patient se sont nettement améliorés, avec une résolution complète des palpitations, de l’oppression thoracique et de l’essoufflement. Le traitement était bien toléré. Ce rapport de cas vise à sensibiliser les cliniciens aux infections articulaires sternoclaviculaires causées par le Staphylococcus capitis et à souligner l’importance d’un diagnostic précoce et de stratégies de traitement individualisées.

Introduction

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L’infection articulaire sternoclaviculaire (SCJI) est une forme rare d’arthrite septique, représentant moins de 1 % de tous les cas d’arthriteinfectieuse 1,2. Malgré sa faible incidence, l’IFC peut entraîner des complications graves telles que la médiastinite, un abcès de la paroi thoracique et un empyèmepulmonaire 2,3,4. Staphylococcus capitis, un staphylococcus coagulase négatif (CoNS) et un organisme commensal courant de la peau humaine, est de plus en plus impliqué dans les infections sanguines liées aux cathéters, les infections des articulations prothétiques et les infections des plaies 5,6,7. Cependant, la SCJI causée par Staphylococcus capitis a été rarement rapportée dans lalittérature 8. Les facteurs de risque courants pour l’ICL incluent le diabète sucré, l’immunosuppression et des antécédents d’usage intraveineuxde drogues 2,9,10. Néanmoins, des cas ont également été signalés chez des personnes en bonne santé sans affectionsous-jacente 11, 12, 13. Bien que Staphylococcus capitis soit généralement considéré comme un colonisateur bénin de la peau, il peut agir comme un agent pathogène opportuniste dans des conditionsspécifiques 5.

Ce rapport de cas décrit une infection de l’articulation sternoclaviculaire causée par le Staphylococcus capitis chez un patient présentant principalement une oppression thoracique et des palpitations. Le diagnostic a finalement été établi par des examens d’imagerie et des examens microbiologiques, confirmant une infection articulaire sternoclaviculaire associée au Staphylococcus capitis. Le patient a subi un débridement chirurgical suivi d’un total de 10 semaines de traitement antibiotique, aboutissant à une résolution complète de l’infection. Ce cas est cliniquement pertinent et approprié pour un signalement car il concerne une population à haut risque typique (personnes âgées, diabétiques et antécédents de cancer) avec une présentation initiale atypique, comblant ainsi un manque clé de connaissances concernant l’ICS induite par la S. capitis. Ce rapport vise à accroître la sensibilisation des cliniciens aux infections articulaires sternoclaviculaires causées par Staphylococcus capitis et souligne l’importance d’un diagnostic précoce et de stratégies de traitementindividualisées 14,15,16.

PRÉSENTATION DU CAS :

Une patiente de 74 ans s’est présentée au Premier Hôpital Affilié de l’Université du Zhejiang avec une plainte principale de palpitations et d’oppression thoracique qui persistait depuis une demi-journée. Les symptômes ont commencé soudainement alors que le patient prenait l’ascenseur, caractérisés par des palpitations, une oppression thoracique et un essoufflement. Elle a nié les vertiges, la vision floue, la douleur thoracique ou tout autre inconfort. La patiente avait des antécédents de diabète de type 2 depuis 5 ans, géré avec de la metformine (deux comprimés par jour), ainsi qu’un cancer du sein du côté droit, pour lequel elle a subi une mastectomie radicale il y a 20 ans.

À l’admission, l’examen médical a révélé les éléments suivants : Température : 37,2 °C ; Pouls : 78 battements/minute ; Fréquence respiratoire : 19 respirations/min ; Tension artérielle : 128/79 mmHg. Le patient était alerte, orienté et avait un état mental normal. Une masse rouge-pourpre, d’environ 2 cm de diamètre, a été observée à l’articulation sternoclaviculaire droite. La masse était molle, avec une chaleur localisée de la peau et des écoulements sanglants purulents. Aucune jaunisse n’a été notée sur la peau ou la sclère. Les pupilles étaient égales et réactives à la lumière. L’auscultation pulmonaire était claire sans rales, et le rythme cardiaque était régulier sans souffles pathologiques. L’abdomen était doux, non sensible et sans douleur de rebond. Aucun œdème des membres inférieurs n’a été observé, et la force musculaire ainsi que le tonus étaient normaux dans toutes les extrémités, sans limitation de mouvement.

Les analyses de laboratoire ont montré les résultats suivants : globules blancs (GBC) : 6,43 × 109/L ; Neutrophiles : 67,8 % ; Protéine C-réactive (PCR) : 51,47 mg/L (normale < 6,00 mg/L) ; électrocardiogramme (ECG) : tachycardie supraventriculaire (fréquence cardiaque > 200 battements/minute) ; Mycobacterium tuberculosis Essai de réaction en chaîne par PCR par polymérase (PCR) sur les tissus infectés : négatif.

Le scanner abdominal n’a montré aucune pathologie abdominale aiguë. L’échographie a révélé une masse mixte kystique-solide dans la région sous-claviculaire droite, suggérant une inflammation. L’IRM de la paroi thoracique (3,0 T) a montré une lésion occupante au bord antérieur de la clavicule proximale droite et de l’articulation sternoclaviculaire, avec une imagerie recommandée avec contraste amélioré. Des exsudats inflammatoires ont été observés dans la paroi thoracique droite, les tissus sous-cutanés du haut du bras et les plans fasciaux. Des ganglions lymphatiques élargis ont été observés dans l’aisselle et le médiastinum gauches. Un diagnostic préliminaire d’infection cutanée touchant l’articulation sternoclaviculaire droite a été posé, et le patient a été admis pour un traitement complémentaire.

Le patient a reçu un ertapénem intraveineux préopératoire (1,0 g/jour) et un débridement chirurgical de la lésion infectée a été réalisé. En peropératoire, deux abcès purulents ont été identifiés à l’articulation sternoclaviculaire droite, ainsi que des voies sinusales purulentes localisées et une nécrose du fascia et de l’os. L’observation intraopératoire a confirmé que la stabilité de l’articulation sternoclaviculaire était préservée et non compromise par une infection ou un débridement. La procédure consistait à excéder le tissu nécrotique, à débrider les fascias ostéomyélitiques et nécrotiques, ainsi que les tissus sous-cutanés inflammatoires. La plaie a été irriguée et l’hémostasie a été atteinte. Le volet a été fermé et deux tubes de drainage à pression négative ont été installés.

Le diagnostic postopératoire a confirmé l’ostéomyélite claviculaire. Le drainage du pus a été envoyé pour culture et identification bactérienne, qui a révélé Staphylococcus capitis, sensible à l’ertapénem. Le patient a continué à prendre de l’ertapénem (1,0 g IV par jour) et a reçu des traitements de soutien, notamment la gestion de la douleur, la protection gastrique et un soutien nutritionnel. Les marqueurs inflammatoires ont rapidement diminué après l’opération, les niveaux de CRP passant de 51,47 mg/L à 17,38 mg/L en 4 semaines.

Le patient a suivi avec succès un traitement antibiotique de 10 semaines, comprenant 2 semaines d’ertapénem intraveineux, suivies de 8 semaines de linézolide oral. Aucune réaction indésirable ou complication des médicaments n’a été observée pendant le traitement. Au suivi d’un mois, la plaie avait bien cicatrisé et les symptômes du patient s’étaient nettement améliorés, avec une résolution complète des palpitations, de la sensation d’oppression thoracique et de la dyspnée.

Diagnostic, évaluation et plan :

Le patient a été diagnostiqué avec une rare infection primaire de l’articulation sternoclaviculaire compliquée par l’ostéomyélite, initialement suspectée cliniquement et radiologiquement comme une infection bactérienne pyogénique. L’exploration chirurgicale a confirmé le matériau purulent, les tissus mous nécrotiques et l’ostéomyélite impliquant la clavicule médiale. La patiente est une femme âgée présentant de multiples facteurs de risque, dont un diabète de longue date et des antécédents de tumeur maligne, ce qui la prédisposait à une infection opportuniste. La présentation clinique était atypique, avec une oppression thoracique et des palpitations comme plaintes principales, tandis que les signes inflammatoires locaux et des marqueurs inflammatoires élevés soutenaient un processus infectieux actif. L’imagerie a confirmé l’atteinte profonde des tissus mous et des os, et une culture microbiologique a identifié Staphylococcus capitis comme le pathogène responsable. Le plan de traitement comprenait un débridement chirurgical d’urgence de l’os nécrosé et des tissus mous, une thérapie antibiotique ciblée basée sur les résultats de la culture, ainsi que la reconstruction des tissus mous avec un lambeau myofascial pédiculé pour assurer une fermeture durable de la plaie. La thérapie antibiotique consistait en 2 semaines d’ertapénem intraveineux suivies de 8 semaines de linézolide oral, suivies d’un suivi étroit des marqueurs inflammatoires et de la cicatrisation des plaies. Un suivi postopératoire était programmé pour évaluer la guérison, la résolution de l’infection et la récidive potentielle. La prise en charge à long terme comprend un examen ambulatoire régulier, une éducation aux soins des plaies et des instructions sur les signes avant-coureurs d’une infection récurrente.

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Protocole

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Cette intervention chirurgicale a été approuvée par le comité d’éthique de l’hôpital et menée conformément aux directives éthiques fournies. Le consentement éclairé a été obtenu de tous les participants individuels impliqués dans l’étude.

1. Évaluation initiale et collecte d’échantillons

  1. Examen complet de la peau
    1. Effectuez une inspection approfondie de la zone cutanée affectée, en portant une attention particulière à la présence d’érythème, de gonflement, de nécrose tissulaire et d’exsudation purulente.
      REMARQUE : Capturez la documentation visuelle de base (par exemple, photographies et dimensions des lésions) et enregistrez les manifestations cliniques initiales, y compris l’érythème et l’œdème.
  2. Antécédents médicaux et comorbidités
    1. Obtenez un historique médical détaillé, documentant les conditions médicales antérieures, les médicaments actuels et antérieurs utilisés pour la gestion des symptômes, les antécédents chirurgicaux et les complications associées.
  3. Collection d’exsudats de plaies
    1. Collectez l’exsudat de la plaie à l’aide d’un écouvillon stérile. Faites doucement tourner le prélèvement pendant au moins 5 secondes tout en prélevant la base et les marges de l’ulcère. Placez immédiatement le prélèvement dans le milieu de transport Amies et stockez à 4 °C.
    2. Inspectez visuellement le prélèvement pour confirmer une collecte suffisante d’exsudats ; Si l’échantillon est insuffisant, répétez la procédure de collecte sans délai.
      REMARQUE : Transportez les échantillons vers le laboratoire de microbiologie dans les 2 heures. Si le traitement immédiat n’est pas envisageable, conservez les échantillons dans des conditions réfrigérées et traitez-les dans les 24 heures.

2. Imagerie et traitement empirique

  1. Études d’imagerie
    1. Réaliser l’imagerie par résonance magnétique (IRM 3,0T) en utilisant des séquences pondérées T1, pondérée T2 et avec contraste amélioré pour évaluer l’atteinte des tissus mous et évaluer l’extension osseuse potentielle.
      REMARQUE : Vérifier la présence d’accumulation profonde de liquide mou ou de formation d’abcès lors des examens d’imagerie.
  2. Traitement antibiotique empirique
    1. Initiez un traitement antibiotique empirique en administrant 1 g d’ertapénem par voie intraveineuse, dilué dans 100 mL de solution physiologique normale et infusé une fois par jour pendant 30 minutes.
      REMARQUE : Modifiez le schéma antibiotique selon les schémas locaux de susceptibilité aux antimicrobiens et les résultats de la culture.

3. Procédures de débridement chirurgical

  1. Préparation préopératoire
    1. Effectuer la procédure sous anesthésie endotrachéale générale afin d’assurer une relaxation musculaire adéquate, une hémodynamique stable et une immobilité du patient lors du débridement et de la reconstruction du lambeau.
      REMARQUE : L’anesthésiste a maintenu une profondeur d’anesthésie appropriée et a surveillé de près les fonctions respiratoires et circulatoires tout au long de l’opération.
    2. Placez le patient en position couchée avec une exposition adéquate de l’articulation sternoclaviculaire, du segment médial de la clavicule et de la paroi thoracique antérieure. Effectuez une désinfection cutanée de routine à l’aide de povidone-iode, suivie d’un drapage stérile pour établir un champ chirurgical standard.
    3. Effectuez une surveillance régulière continue pendant l’opération, y compris la fréquence cardiaque, la pression artérielle non invasive, l’électrocardiographie, l’oxymétrie de pouls et la pression partielle de dioxyde de carbone en fin de marée.
  2. Débridement
    1. Dans des conditions stériles en salle d’opération, retirez les tissus visiblement infectés ou nécrosés à l’aide d’un scalpel combiné à une électrocautérisation bipolaire réglée à 30–40 W. Curettez et réséquez la lésion infectée impliquant le segment médial de 2 cm de la clavicule jusqu’à ce que tout l’os dévitalisé soit retiré.
    2. Poursuivez le débridement jusqu’à ce que tous les tissus non viables aient été excisés et que le tissu saignant sain soit clairement visible.
  3. Chirurgie pédiculaire du lambeau myofascial
    1. Réaliser une reconstruction pédiculée du lambeau myofascial dans des conditions stériles standard en salle d’opération, avec des gants stériles, une blouse, un masque et un champ stérile dédié, en utilisant la partie sternocôtiste du muscle pectoral majeur comme muscle donneur pour le lambeau myocutané pédiculé.
    2. Effectuer la dissection superficiellement au niveau du fascia clavipectoral tout en préservant l’artère et la veine thoracoacromiaux comme pédicule vasculaire afin d’assurer un apport sanguin suffisant. Ensuite, faites pivoter le lambeau médialement pour obtenir une couverture sans tension du défaut de l’articulation sternoclaviculaire après débridement.
  4. Collecte d’échantillons de tissu
    1. Prélever au moins trois échantillons de tissu sur des sites anatomiquement distincts, incluant la base de l’ulcère, le bord de l’ulcère et les couches profondes de tissus.
    2. Placez chaque échantillon dans des contenants stériles étiquetés individuellement pour une culture microbiologique et une évaluation histopathologique ultérieures.
      REMARQUE : Confirmez que les échantillons de tissu représentent avec précision différentes régions, y compris les marges viables, le tissu nécrose et les structures sous-cutanées profondes.
  5. Surveillance de la progression du débridement
    1. Surveillez et documentez les caractéristiques de la plaie, y compris le statut de cicatrisation de l’incision ainsi que le volume et la nature du drainage, ainsi que les tendances des marqueurs inflammatoires tels que la CRP (<10 mg/L) et le nombre de globules blancs (<10 × 109/L).

4. Identification des agents pathogènes

  1. Coloration et examen microscopique
    1. Utiliser les tissus mous infectés et les tissus osseux dévitalisés obtenus en cours d’opération pour la coloration. Traiter les échantillons de tissu comme suit : fixer dans du formol tamponné neutre à 10 %, les incorporer dans la paraffine, puis les découper en sections en série à 4 μm d’épaisseur. Ensuite, déparaffinez les coupes avec du xylène et réhydratez avec de l’éthanol gradué (100 % > 95 % > 75 %) pour compléter la préparation préalable à la coloration.
    2. Effectuez une coloration de Gram.
      1. Appliquez du violet cristal pendant 60 secondes, puis rincez avec du sérum stérile. Ajoutez ensuite un gramme d’iode pendant 60 secondes et rincez soigneusement.
      2. Effectuez une décoloration pendant 1 à 2 secondes jusqu’à ce qu’aucun colorant violet n’élue, suivi d’un rinçage immédiat avec du sérum physiologique. Enfin, appliquer la safranine pendant 60 s ; Rincez les sections et séchez à l’air libre pour finir la coloration de Gram.
    3. Effectuez une coloration en argent de méthénamine Gomori (GMS).
      1. Incubez les sections tissulaires ayant subi le prétraitement mentionné plus haut (déparaffinisation et réhydratation) dans une solution de travail GMS (préparée en mélangeant une solution de bouillon d’argent de méthénamine et un tampon de citrate à un ratio 1:1) à température ambiante pendant 30 minutes.
      2. Ensuite, lavez les sections trois fois avec du sérum physiologique stérile pour enlever la tache non décollée. Ensuite, appliquez une solution de chlorure d’or à 0,5 % pendant 30 s pour la différenciation.
      3. Après le rinçage, utilisez une solution de thiosulfate de sodium à 5 % pendant 1 minute pour arrêter la réaction de coloration. Enfin, rincez soigneusement les sections à l’eau distillée et séchez-les à l’air pour terminer la teinture GMS.
      4. Après la coloration, observez les sections au microscope optique à un grossissement de 200×. Enregistrer les caractéristiques morphologiques des régions colorées positivement afin d’assurer une identification précise des lésions liées à l’infection.
        REMARQUE : Les hyphes fongiques, les spores et la distribution des agents pathogènes dans les tissus étaient les principaux axes abordés.

5. Traitement antibiotique

  1. Administration d’antibiotiques
    1. Administrez de l’ertapénem à une dose de 1 g par voie intraveineuse dans 100 mL de solution saline à 0,9 %, infusé une fois par jour pendant 30 minutes.
    2. Surveillez les niveaux de CRP sérique et de procalcitonine tous les 3 à 7 jours.
    3. À la sortie, prescrivez-vous un linézolid oral 600 mg deux fois par jour pendant une durée de 8 semaines.
      REMARQUE : Confirmer l’efficacité du traitement par une amélioration radiologique (par exemple, réduction de l’œdème inflammatoire à l’IRM), la normalisation des marqueurs inflammatoires et la résolution complète des signes cliniques de l’infection.

6. Récupération et suivi

  1. Suivi ambulatoire
    1. Planifiez des consultations de suivi ambulatoires à 1, 2 et 4 semaines après la sortie, suivies d’évaluations mensuelles pour une durée totale de 6 mois.
    2. Évaluer le statut de cicatrisation, la récidive de l’infection, la gravité de la douleur (en utilisant l’échelle analogique visuelle [VAS]) et la récupération fonctionnelle (par exemple, l’amplitude de mouvement articulaire).
      REMARQUE : Documentez les progrès hebdomadaires de la cicatrisation, confirmez l’épithélialisation complète dans le délai prévu (<8 semaines) et évaluez l’adéquation du contrôle de la douleur (VAS ≤ 3).
  2. Enregistrement et analyse des données
    1. Enregistrer l’apparence de la plaie, le volume de drainage, les marqueurs inflammatoires et les résultats d’imagerie à chaque visite de suivi.
    2. Stockez de manière sécurisée les données anonymisées des patients dans un formulaire standardisé de rapport de cas pour analyse et publication ultérieures.
      REMARQUE : Examiner les résultats cliniques finaux chaque mois afin de confirmer la cicatrisation complète de la plaie, l’absence de récidive de l’infection au suivi de 6 mois, ainsi que la documentation de la satisfaction du patient et de la récupération fonctionnelle.

7. Élimination des déchets biologiques

  1. Éliminez les déchets biologiques (tissus, écouvillons, instruments tranchants) conformément aux réglementations de biosécurité hospitalière.

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Résultats

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Une femme de 74 ans présentait des antécédents d’une demi-journée de palpitations soudaines, d’oppression thoracique et d’essoufflement, sans vertiges ni douleurs thoraciques. Elle avait des antécédents de diabète de type 2 gérés par la metformine et une chirurgie antérieure du cancer du sein. L’examen physique a révélé une masse sensible rouge-violette de ~2 cm au-dessus de l’articulation sternoclaviculaire droite avec une chaleur localisée et un écoulement purulen. L’électrocardiograph...

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Discussion

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

L’infection articulaire sternoclaviculaire (SCJI) est une infection articulaire relativement rare, mais son incidence peut être plus élevée dans certaines populations. Selon la littérature, une infection de l’articulation sternoclaviculaire peut survenir dans divers contextes cliniques, notamment les infections postopératoires (comme l’extension de l’ostéomyélite sternale à l’articulation sternoclaviculaire après une chirurgie cardiaque)17, les états immunosuppres...

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Déclarations de divulgation

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Les auteurs n’ont rien à divulguer.

Remerciements

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Les auteurs n’ont aucun remerciement.

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Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
Milieu de transport AmiesThermo Fisher9805-200Utilisé pour transporter des échantillons d’exsudats de plaie vers le laboratoire de microbiologie
Électrocautérisation bipolaireValleylab (Medtronic)1190-0001Utilisé pour excéder les tissus nécrotiques ou infectés lors d’une intervention chirurgicale
Crystal Violet (0,5 % en v/v)Sigma-AldrichC-5810Réactif de coloration pour la coloration de Gram
Éthanol (70 %)Sigma-AldrichE7023Utilisé pour la déshydratation et la fixation des tissus dans les protocoles de coloration
Faropenème (oral)N/AN/AAntibiotique utilisé lors de la deuxième phase du traitement
Formol (10 %)Sigma-AldrichF-1635Utilisé pour la fixation tissulaire avant analyse histopathologique
La tache d’argent méthénamine de GrocottSigma-Aldrich3953-000-5Utilisé pour l’identification fongique dans des échantillons de tissus
Protéinase KSigma-Aldrich25560-039Utilisé pour l’extraction d’ADN à partir d’échantillons de tissu
Safranine (0,25 % en va-et-à-porte)Sigma-AldrichS8884Contre-coloration utilisée dans la coloration de Gram
Séquence IRM pondérée T1Siemens HealthineersNASéquence d’imagerie pour l’évaluation des tissus mous
Séquence IRM pondérée en T2Siemens HealthineersNASéquence d’imagerie pour l’évaluation des tissus mous et des os
Système VITEKBioMé ; rieux4112118Système automatisé d’identification bactérienne

Références

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
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