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Article de méthode

Développement d’un modèle de lésion pulmonaire par blast sévère chez une chèvre pour une évaluation ultrasonographique

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DOI :

10.3791/70656

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29 mai 2026

 ,  ,  ,  ,  , 
1Department of Trauma Medical Center, Daping Hospital, 2No. 951 Hospital of PLA

Dans cet article

Résumé

Cette étude a établi avec succès un modèle de lésion pulmonaire par blast sévère chez les chèvres à une pression de 4,5 MPa, causant des blessures importantes et une mortalité de 41,67 %. L’évaluation des échographies pulmonaires a évalué dynamiquement les dommages, en corréléant avec les indicateurs traditionnels, démontrant leur valeur diagnostique. Ce modèle reproductible fait progresser les diagnostics et les thérapies pour les lésions pulmonaires aiguës.

Résumé

La lésion pulmonaire par blast (BLI) provoque de graves lésions pulmonaires et une forte morbidité, notamment dans les milieux militaires et industriels, entraînant des hémorragies et une possible insuffisance respiratoire, soulignant la nécessité d’améliorer les diagnostics et traitements. Cette étude visait à développer un modèle standardisé de BLI sévère chez les chèvres afin d’évaluer la précision et la faisabilité de l’échographie au point de soins pour une évaluation dynamique. Les chèvres ont été soumises à une surpression contrôlée par le souffle à l’aide du tube de choc biologique (BST-I.) à des pressions d’entraînement de 4,0 MPa (n = 4), 4,5 MPa (n = 12) et 5,0 MPa (n = 4), respectivement. Des paramètres clés, tels que le pic de surpression, ont été enregistrés. Les signes vitaux, le score d’échographie pulmonaire (LUS), l’indice d’oxygénation (PaO₂/FiO₂) et l’eau extravasculaire pulmonaire (EVLW) ont été surveillés au départ (0 h avant la blessure) et à 0,5h, 3h, 6h, 9h, 12h après la blessure. La tomodensitométrie thoracique (CT) à 0 h et 12 h quantifiaient le rapport de lésions pulmonaires, ainsi que l’examen global après euthanasie, évaluaient le score d’hémorragie pulmonaire et de blessure. À 4,5 MPa, la surpression maximale était de 396,92 kPa, avec un taux de mortalité post-blessure de 41,67 %, tandis qu’à 4,0 MPa, le taux de mortalité était de 0 %. L’LUS a augmenté au fil du temps, montrant une corrélation négative avec PaO₂/FiO₂ et une corrélation positive avec l’EVLW à 3 h, 6 h et 9 h, et une corrélation positive avec le ratio de lésions pulmonaires à 12 h. Le ratio brut de la zone de lésions pulmonaires était de 42,14 % dans le groupe des 4,5 MPa, indiquant une blessure grave, tandis que 4,0 MPa montrait une blessure modérée. Le modèle à 4,5 MPa était adapté à l’étude des blessures graves, contrairement à 4,0 MPa qui ne causait que des blessures modérées, et 5,0 MPa entraînait une mortalité de 100 %. Un modèle reproductible chez la chèvre de la lésion pulmonaire blastée a été établi, utilisant efficacement la LUS pour évaluer de manière non invasive les lésions pulmonaires au fil du temps, fournissant une base pour le suivi et l’exploration de stratégies thérapeutiques pour les lésions pulmonaires aiguës.

Introduction

Les expositions aux explosions, qu’elles soient dans le milieu militaire ou civil, continuent de constituer un facteur majeur de morbidité et de mortalité, les lésions pulmonaires étant un facteur principal de l’issue1. Les preuves contemporaines confirment que la contusion pulmonaire est un facteur de risque critique pour les complications respiratoires graves, telles que la pneumonie et le syndrome de détresse respiratoire aiguë (SDRA), qui influencent significativement le pronostic des personnesatteintes 2. Une évaluation rapide et précise de l’étendue des lésions pulmonaires est donc essentielle pour orienter la prise en main clinique et améliorer la survie.

La tomodensitométrie (CT) est efficace pour évaluer la gravité de la lésion pulmonaire par blast (BLI)3. Cependant, cela implique une exposition aux radiations ionisantes et peut être peu pratique dans des situations impliquant des victimes massives ou des ressources médicales limitées. L’examen clinique de la perforation de la membrane tympanique a été étudié comme un marqueur potentiel de lésió de blast pulmonaire, mais des études indiquent qu’une perforation isolée de la membrane tympanique n’est pas un indicateur fiable d’une lésion dissimulée de blast pulmonaire ou d’un mauvais pronostic, et n’exclut donc pas la nécessité d’une investigationsupplémentaire 4. La présentation clinique des victimes de l’explosion est très variable ; certains patients se présentent de façon aiguë, tandis que d’autres peuvent développer une insuffisance respiratoire 12 à 24 heures plus tard, soulignant l’importance cruciale d’une réévaluation fréquente aux urgences pour détecter les blessures manquées, en particulierBLI 5. Ces limitations soulignent l’urgence d’une technique d’imagerie rapide et compatible avec le chevet pour évaluer rapidement la gravité des contusions pulmonaires. Dans les événements à victimes massives, des outils capables de trier et d’évaluer rapidement sont cruciaux pour optimiser l’allocation des ressources et améliorer les résultatsglobaux 5.

L’échographie thoracique est devenue un outil indispensable en soins intensifs, en raison de sa nature en temps réel, non invasive etportable 6. Son rôle établi dans le diagnostic de diverses maladies pulmonaires pleurales et parenchymateuses en fait une modalité très prometteuse pour l’évaluation dynamique des lésions pulmonaires blastiques. Des signes échographiques tels que la consolidation pulmonaire, les bronchogrammes, les anomalies de la ligne pleurale et les artefacts en forme de queue de comète peuvent servir d’indicateurs de l’étendue et de la gravité des contusions pulmonaires et del’œdème 7. Son absence de rayonnement ionisant la rend particulièrement adaptée aux patients nécessitant des évaluations répétées, et son accessibilité dans des environnements à ressources limitées constitue un avantage significatif.

Bien que la littérature existante soutienne l’utilisation de l’échographie au point de soins (POCUS) pour le triage et la surveillance, l’échographie est déjà couramment utilisée dans l’évaluation des traumatismes (par exemple, une évaluation ciblée approfondie avec échographie pour les traumatismes, eFAST) pour détecter le pneumothorax et l’hémothorax8. Néanmoins, une validation rigoureuse de sa précision et de sa faisabilité pour évaluer une contusion pulmonaire sévère nécessite un modèle animal adapté et physiologiquement pertinent. Cette recherche vise à établir un modèle standardisé de lésions pulmonaires blastiques sévères chez les chèvres, qui servira de plateforme pour évaluer systématiquement l’utilité de l’échographie au point de soins dans le triage rapide et la surveillance continue de cette affection potentiellement mortelle.

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Protocole

Toutes les méthodologies expérimentales détaillées dans ce manuscrit ont reçu l’approbation du Comité de bien-être et d’éthique des animaux de laboratoire de la Troisième Université de médecine militaire (SCXK (Yu) 2017-0002). De plus, toutes les procédures liées aux animaux ont été réalisées en stricte conformité avec les directives d’utilisation des animaux établies par le comité d’approbation.

1. Animaux expérimentaux

  1. Préparez des chèvres en bonne santé, âgées de 3 à 6 mois, femelles, pesant environ 15 kg.

2. Plateforme de blessures

  1. Causer des blessures par blast pulmonaire par tube de choc biologique (le gros) (BST-I.), long de 39,4 m (Figure 1) et divisé en deux films d’aluminium semi-rigides en deux sections — la section de conduite et la section expérimentale, utilisant respectivement 4,0 MPa, 4,5 MPa et 5,0 MPa de pression de conduite.

3. Préparation animale

  1. Jeûnez les animaux pendant 24 heures et privatisez-les d’eau pendant 8 heures avant l’expérience.
  2. Peser et noter.
  3. Utilisez le midazolam pour introduire l’anesthésie (injection intramusculaire : 1 mg/kg).
  4. Rase le pelage de la poitrine, du cou et de l’aine de la chèvre, puis applique la crème dépilatoire pour éliminer complètement le reste du pelage.

4. Tracé des partitions pour la détection par échographie

  1. Anesthésiez la chèvre avec 3 % de pentobarbital sodique (10–20 mg/kg) à l’aide d’une aiguille résidente dans la veine saphène. Gardez-la en position latérale détendue, avec les membres perpendiculaires au torse et la tête étendue.
  2. Déplacez la sonde ultrasonique parallèlement à l’espace intercostal du bas vers le haut, du dorsal à l’antérieur pour marquer les bords du poumon.
  3. Dessinez des rectangles successifs de 2,5 centimètres de long le long de l’espace intercostal sur la zone du poumon comme cloisons pour la détection par échographie. Il y a au total 66 partitions, dont 33 à droite et 33 à gauche, et le nombre de partitions dans chaque espace intercostal est de 1, 2, 2, 5, 5, 5, 5, 4, 3, 1, respectivement, du premier espace intercostal au dixième espace (Figure 2).

5. Opération chirurgicale

  1. Assurez-vous que la chèvre est sous anesthésie. Sinon, injectez un sodium pentobarbital supplémentaire à 3 % de 10 mg/kg.
  2. Cathétérisme veineux cervical
    1. Placez la chèvre en position couchée latérale droite et maintenez-la correctement.
    2. Réaliser une incision longitudinale cutanée, d’environ 4 cm de long, sur le tiers moyen du sillon jugulaire. Effectuer une dissection contondante à travers le tissu sous-cutané et le muscle colis cutané afin d’exposer et d’isoler la veine jugulaire externe.
    3. Insérez un cathéter veineux central à double lumen (7Fr) sous la direction d’une aiguille introductrice. Avancez le cathéter d’environ 15 à 20 cm jusqu’à ce que son extrémité soit positionnée dans la veine préchevale de la chèvre, à environ 2 cm de l’oreillette droite. Fixez le cathéter en place et fixez solidement.
    4. Reliez la lumière distale via un robinet d’arrêt à trois voies à un capteur de température et à un transducteur de pression pour la surveillance de la pression veineuse centrale et l’injection de solution saline glacée. Reliez la lumière proximale via un robinet d’arrêt à trois voies à une perfusion intraveineuse pour l’administration de liquides et l’administration d’un anesthésique supplémentaire.
  3. Intubation endotrachéale
    1. Placez la chèvre en position dorsale couchée et sécurisez le cou en extension.
    2. Effectuez une incision longitudinale cutanée de 5 à 6 cm le long de la ligne médiane. Utilisez une dissection contondante pour séparer les muscles sternohyoïdiens et exposer un segment de 2 à 3 cm de la trachée.
    3. Placez une section de suture non absorbable sous la trachée exposée pour soulever et stabiliser doucement la trachée. Réalisez une incision horizontale en « T » à travers 2 à 3 anneaux trachéaux au milieu du segment stabilisé.
    4. Insérez un tube endotrachéal menotté de taille 6.0 dans la lumière trachéale et avancez-la distalement. Gonflez le manchet. Suture lâchement l’incision trachéale et suture solidement le tube à la peau. Connectez le tube endotrachéal directement au circuit du ventilateur mécanique.
      REMARQUE : Paramètres du ventilateur : le mode de ventilation est la ventilation à pression positive intermittente (IPPV) ; le volume de marée (VT) est fixé à 8 mL/kg ; la fréquence respiratoire (RR) est maintenue à 15 respirations par minute ; le rapport inspiratoire/expiratoire (I : E) est configuré à 1:1,5 ; le débit (V) est établi à 7,2 L/min ; la fraction d’oxygène inspiré (FIO 2) est ajustée à 21 % ; la pression positive en fin d’expiration (PEEP) est réglée à 3,9 cm H2O ; et la pression inspiratoire (Pinsp) varie de 9 à 12 cm H2O.
  4. Chronique de l’artère fémorale
    1. Placez la chèvre en position couchée latérale droite et maintenez-la correctement.
    2. Effectuer une incision longitudinale cutanée de 3 à 4 cm le long de la face médiale de l’aine. Utilisez des techniques de dissection contondante pour révéler le faisceau neurovasculaire fémoral, en veillant à séparer méticuleusement l’artère fémorale de la veine et du nerf voisins grâce à une combinaison de méthodes de dissection contondante et nette.
    3. Effectuer une petite artériotomie transverse sur le segment isolé de l’artère fémorale et insérer un cathéter de thermodilution Picco (4Fr) dans l’artère. Avancez le cathéter à 16 cm, en veillant à ce que la pointe soit dans l’artère iliaque commune. Suturez solidement le cathéter à la peau environnante ou au tissu sous-cutané.
      REMARQUE : Veillez à ne pas plier ou forcer le cathéter contre la paroi du vaisseau, car cela compromettrait des mesures précises de transduction de pression et de thermodilution.
    4. Reliez le cathéter via un robinet d’arrêt à trois voies à un transducteur de pression pour un suivi hémodynamique continu, tel que la tension artérielle et l’eau extravasculaire pulmonaire. Cette ligne est également utilisée pour l’échantillonnage intermittent de sang artériel. Maintenir un rinçage hépariné continu à la solution physiologique (1–2 mL/h) pour éviter l’occlusion par cathéter.

6. Surveillance et mesures

  1. Signes vitaux
    1. Mesurez et enregistrez les signes vitaux aux moments suivants : 0 h avant la blessure, 0,5 h, 3 h, 6 h, 9 h et 12 h après la blessure.
    2. Connectez toutes les lignes de capteurs au module de surveillance PiCCO. Placez le transducteur de pression au niveau du cœur. Ouvrez le robinet d’arrêt du transducteur vers l’air atmosphérique et effectuez une calibration nulle pour les lignes de pression artérielle et veineuse.
    3. Surveillez et notez la pression artérielle moyenne (MAP). Placez les coussinets électrodes pour surveiller la température centrale (T), la fréquence respiratoire (RR) et la fréquence cardiaque (HR) aux emplacements spécifiés : sur le côté gauche de la poitrine, entre la deuxième et la troisième côte ; sur le côté gauche de la poitrine, entre la cinquième et la sixième côte ; et du côté droit de la poitrine, entre la deuxième et la troisième côte.
  2. Échographie (B-Mode)
    1. Effectuer des examens pulmonaires aux moments suivants : 0 h avant la blessure, 0,5 h, 3 h, 6 h, 9 h et 12 h après la blessure. Maintenez une séquence de balayage cohérente : examinez d’abord le poumon droit, puis le poumon gauche à chaque point temporel.
    2. Placez la sonde d’échographie perpendiculaire à la surface cutanée au milieu de chaque cloison. Assurez-vous que le point marqueur de la sonde est orienté vers la colonne vertébrale.
    3. Obtenez des extraits vidéo en parcourant les espaces intercostaux de la 10e à la 1re côte. Enregistrez les enregistrements vidéo qui incluent au moins deux cycles respiratoires complets.
    4. Appliquez le score échographie pulmonaire (LUS) standardisé suivant aux imagessauvegardées 9 : Assignez deux échographistes formés pour effectuer le processus de notation de manière indépendante. Calculez la moyenne des deux scores pour l’évaluation finale.
      REMARQUE : Le score 0 indique la présence de lignes A. Le score 1 se caractérise par plusieurs B-lines distinctes et distinctes, ou une fusion de B-lines qui englobe moins de 50 % de la ligne pleurale. Le score 2 indique des lignes B coalescentes diffuses, communément appelées « poumon blanc ». Le score 3 est attribué lorsqu’il y a des signes de consolidation, qui peuvent se manifester par une échotexture tissulaire ou des bronchogrammes aériens dynamiques.
  3. Analyse des gaz sanguins artériels (GG)
    1. Prélever des échantillons de sang artériel pour analyse aux moments suivants : 0 h avant la blessure, 0,5 h, 3 h, 6 h, 9 h et 12 h après la blessure.
    2. À l’aide d’une seringue, aspirez d’abord et jetez le rinçage de solution saline héparinée ainsi qu’environ 5 mL de sang provenant de la ligne artérielle PiCCO. Ensuite, extraire 0,3 mL de sang artériel frais directement via le cathéter.
    3. Injectez immédiatement l’échantillon de sang dans une cartouche de test CG4+. Insérez la cartouche dans l’analyseur de gaz sanguin portable pour effectuer l’analyse.
    4. Notez les valeurs mesurées pour le pH, la pression partielle d’oxygène (PaO 2) et d’autres paramètres pertinents. Calculez l’indice d’oxygénation (le rapport entre la pression partielle d’oxygène et la fraction d’oxygène inspiré, PaO₂/FiO₂).
  4. Mesure de l’eau extravasculaire pulmonaire (EVLW)
    1. Effectuer des mesures de la VLV via thermodilution transpulmonaire aux moments suivants : 0 h avant la blessure, 0,5 h, 3 h, 6 h, 9 h et 12 h après la blessure.
    2. Re-régalez les transducteurs de pression artériels et veineux comme décrit à la section 6.1.2. Assurez-vous qu’une forme d’onde artérielle stable est affichée sur le moniteur avant de procéder.
    3. Injectez exactement 10 mL de solution salée glacée (0 °C) en bolus via le capteur de température du cathéter veineux central. Terminez l’injection dans les 7 secondes. Effectuez trois injections consécutives à chaque moment. Utilisez la moyenne des trois mesures pour la valeur finale de l’EVLW.
    4. Enregistrer l’EVLW et d’autres paramètres hémodynamiques fournis par le système PiCCO.
  5. Tomographie (CT)
    1. Faites des scanners thoraciques à 0 h avant la blessure et 12 h après la blessure.
    2. Effectuer le scan à l’aide d’un scanner CT 64 tranches avec le protocole suivant : courant tubulaire : 200 mas ; tension à tubes : 100 kV ; Temps de rotation : 0,4 s.
    3. Faites réaliser l’examen et l’analyse par un radiologue qualifié sans connaître les conditions expérimentales. Utilisez la station de travail spécialisée pour effectuer une analyse volumétrique tridimensionnelle du volume pulmonaire total et du volume pulmonaire blessé avec un seuil défini de l’unité de Hounsfield (HU) pour segmenter le tissu pulmonaire lésé. Corrigez manuellement la plage de dégâts.
    4. Calculez le pourcentage de volume pulmonaire lésé (ratio de lésions pulmonaires) à l’aide de la formule : (volume pulmonaire blessé / volume pulmonaire total) * 100 %.

7. Procédure de blessure par explosion de la chèvre

  1. Répartissez aléatoirement les chèvres dans l’une des trois catégories distinctes de surpression de souffle en utilisant le tube de bio-choc BST-I. Ajustez la pression de propulsion à des niveaux de 4,0 MPa (n = 4), 4,5 MPa (n = 12) et 5,0 MPa (n = 4), respectivement, afin de produire les ondes de choc primaires correspondantes.
  2. Effectuez toutes les mesures et le suivi pré-blessure comme indiqué à la Section 6. Fixez la chèvre avec des sangles en toile en position debout sur le cadre de fixation dans le tube d’amortisseur. Positionnez la chèvre à 37,5 m de la source de l’explosion, son côté droit faisant face à l’épicentre de l’explosion (Figure 3).
  3. Positionnez le capteur de pression d’air à l’emplacement de l’animal à l’intérieur du BST-I... Connectez le module de conditionnement du signal au système d’acquisition de données. Paramètres de la blessure enregistrés : la surpression maximale, le temps de montée, la durée de phase positive et l’impulsion de phase positive pour chaque événement de blessure.
    REMARQUE : Surpression maximale : La valeur maximale de la surpression générée par l’onde de choc. Temps de montée : Le temps nécessaire pour que la pression monte de 0 à la valeur de pic. Durée de phase positive : La surpression reste supérieure à la pression ambiante après le passage du front de choc. Impulsion de phase positive : La quantité de mouvement totale par unité de surface transmise par la surpression de l’onde de choc.
  4. Récupérez immédiatement la chèvre du tube de choc après l’explosion. Effectuez une évaluation rapide de l’état général de la chèvre. Utilisez un dispositif d’aspiration pour éliminer rapidement toute sécrétion sanglante provenant du tube endotrachéal et des voies respiratoires. Initiez immédiatement la ventilation manuelle si une apnée est observée.
  5. Effectuer toutes les mesures et le suivi post-blessure comme indiqué à la Section 6.

8. Euthanasie et nécropsie

  1. Anesthésiez profondément la chèvre avec une injection intraveineuse de pentobarbital sodique à 3 % après avoir terminé la période d’observation post-blessure de 12 heures. Effectuer l’exsanguination via le cathéter artériel ou un autre vaisseau important. Procéder à une sternotomie pour extraire délicatement le poumon.
  2. Effectuez la notation brute avec le logiciel ImageJ.
    1. Ouvrez l’image du poumon grossier dans ImageJ et convertissez-la en image en niveaux de gris 16 bits en utilisant le chemin du menu : Image > Type > 16 bits. (Figure 4A–B)
    2. Fixez la valeur en niveaux de gris à la jonction entre le tissu blessé et le tissu normal comme seuil. Désignez toutes les zones au-dessus de ce seuil en rouge pour représenter la zone de blessure (Figure 4C).
    3. Tracez manuellement le bord externe du tissu pulmonaire pour définir la limite de la surface pulmonaire totale (Figure 4D).
    4. Calculez le rapport de pixels (zone de blessure / surface pulmonaire totale) pour les côtés dorsal et ventral à l’aide du menu : Analyser > Set Mesures > Ctrl + M. Assurez-vous que les options « Zone », « Fraction de zone » et « Limite au seuil » sont sélectionnées. Faites la moyenne de ces deux rapports pour déterminer le rapport final de la zone de blessure pour l’ensemble du poumon.
  3. Notez la contusion pulmonaire à l’aide d’un système de notation standardisé adapté de Yelverton et al. 10, ainsi que des critères historiques de notre laboratoire.
    REMARQUE : Critères de notation pour une lésion pulmonaire grave : Grade 0 (absence de blessure) : Aucune contusion ou hémorragie visible. Grade 1 (léger) : Pétéchies ou contusions dispersées impliquant moins de 10 % de la surface pulmonaire totale. Grade 2 (Modéré) : Contusions ou hépatisation couvrant jusqu’à 30 % de la surface pulmonaire totale. Grade 3 (Sévère) : Contusions ou hépatisation affectant jusqu’à 50 % de la surface pulmonaire totale. Grade 4 (très sévère) : Contusions ou hépatisation affectant plus de 50 % de la surface pulmonaire totale.

9. Analyse statistique

  1. Effectuer toutes les analyses statistiques à l’aide du logiciel SPSS (Version 22.0).
  2. Exprimez les données de mesure continue en moyenne ± écart-type (x ± s).
  3. Testez tous les ensembles de données pour vérifier leur normalité.
  4. Utiliser un test t à échantillons indépendants pour comparer les moyennes entre deux groupes.
  5. Utilisez le coefficient de corrélation de Pearson pour les analyses de corrélation.
  6. Fixez le seuil de signification à p < 0,05.
    REMARQUE : « # » signifie p < 0,05, comparé au score d’avant la blessure ; « ## » signifie p < 0,01, comparé au score d’avant la blessure. « * » signifie p < 0,05, comparaison entre le groupe 4,0 MPa et le groupe 4,5 MPa ; « ** » signifie p < 0,01, comparaison entre le groupe 4,0 MPa et le groupe 4,5 MPa.

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Résultats

Dans le groupe des 4,5 MPa, les paramètres mesurés de la blessure sont les suivants : surpression maximale 396,92 ± 23,11 kPa, temps de montée 9,41 ± 0,32 ms, durée de phase positive 51,57 ± 1,39 ms, et impulsion de phase positive 5884,26 ± 231,44 kPa.ms. Le profil pression-temps de l’onde de choc est montré à la Figure 5. Dans la cohorte 4,0 MPa, le taux de mortalité était de 0 %, aussi bien immédiatement après la blessure qu’à 12 heures. Dans la cohorte de...

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Discussion

La lésion pulmonaire due à l’explosion est une affection grave résultant de l’exposition à des explosions. Il se caractérise par des lésions parenchymiques pulmonaires, des hémorragies alvéolaires, une inflammation et des troubles de la coagulation, et évolue fréquemment vers le SDRA avec une mortalité élevée 11,12,13. Les méthodes diagnostiques actuelles incluent le CT pour une évaluation morph...

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Déclarations de divulgation

Tous les auteurs ont déclaré qu’il n’y avait aucun conflit d’intérêts.

Remerciements

Ce travail a été soutenu par le Outstanding Youth in National Defense Science and Technology (2023-JCJQ-ZQ-001), le Outstanding Young Talents of National Defense Biotechnology (01-SWKJYCJJ06), le Chongqing Outstanding Youth Fund (CSTB2022NSCQ-JQX0017) et le Military Clinical Key Specialty Construction Project.

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Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
Scanner CT 64 tranchesGE Lightspeed, États-Unis5133730-3
Babylog 8000Drä ; ger, Allemagnehttps://www.draeger.com/en_in/Products/Babylog-8000-plus
Tube de choc biologique (le gros) (BST-I)Daping Hosipital, Université médicale de l’ArméeBST-I
Cartouche d’essai CG4+Abbott, États-UnisCG4+
Cathéter veineux central à double lumièreBraun, AllemagneDuo V730
Appareil d’aspiration électriqueÉquipement médical et équipements médicaux du Jiangsu Yuyue Supply Co., Ltd.7A-23D
Tube endotrachéalTAMPA, HangzhouETT6014C
Héparine sodiqueChangzhou Qianhong Bio-pharma Co., Ltd.
Cathéter intraveineux à usage uniqueWeihai Jierui Medical Products Co., Ltd.22G et les temps ; 25mm/Y-G
Logiciel ImageJ
IOTech  ; Logiciel WaveView 7.15.6IOtech, USAhttps://iotechsoftware.com/
MidazolamNhwa Pharma Co. Chinehttp://pharma-api.com/2-2-5-midazolam-injection/
PCB  ; capteurPCB Piezotronics, Inc. (États-Unis)M102A02
Pentobarbital sodiumShanghai PharmaceuticalNA
Station de travail Philips IntelliSpace Portalhttps://www.philips.ca/healthcare/product/HC881101/intellispace-portal-12
Kit de surveillance PiccoPULSION, AllemagnePV8215
Analyseur de gaz sanguin portableAbbott, États-Unisi-STAT 300G
Appareil portable sans fil à ultrasons couleurYoukey Bio-Medical Electronics Co., ChineD-236
Crème purée dépilatoire VeetReckitt Benckiserhttps://www.veet.co.in/en/products/hair-removal-creams/

Références

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