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Toutes les expériences animales ont été menées conformément aux protocoles approuvés par le Comité de soins et d’utilisation des animaux de l’Université de Jikei (numéro d’approbation 2023–034C1). Cette étude a été conçue comme une étude pilote de faisabilité. Pour évaluer la viabilité technique de cette insertion postérieure très délicate et nouvelle dans la colonne caudale du rat avant une validation à grande échelle, un seul animal (n = 1) a été utilisé, conformément aux directives éthiques, afin de minimiser l’utilisation lors de l’évaluation technique initiale. Les rats mâles de Sprague-Dawley (SD) ont été sélectionnés comme souche standard pour la recherche sur la fusion spinale. Les critères d’inclusion concernaient des mâles en bonne santé âgés de 8 à 10 semaines, pesant entre 200 et 250 g, afin de garantir que la hauteur du disque intervertébral (1,8 à 2,2 mm) soit compatible avec la cage de 2 mm. Les animaux présentant > perte de poids de 10 % pendant la période d’acclimatation, une activité réduite ou des déformations visibles de la queue ont été exclus. Pour cette étude, un rat mâle de Sprague–Dawley (8 semaines, pesant 221,8 g ; Japan SLC, Shizuoka, Japon) a été utilisé. L’animal était hébergé dans un environnement contrôlé à 25°C et avec une humidité relative de 50 % (plage autorisée de 30 à 70 %) avec un cycle clair/obscur de 12 heures, et bénéficiait d’un accès à l’eau et d’un régime alimentaire standard pour rongeurs. Les rats étaient hébergés dans des cages à fond solide équipées de matériaux de nidification et de bâtons à mâcher pour enrichir l’environnement. Une période d’acclimatation de 3 jours a été mise en place avant l’intervention. Pour empêcher les compagnons de cage de ronger les implants caudaux, le rat a été maintenu dans des conditions de logement unique tout au long de l’étude, ce qui a été un facteur critique dans cette conception expérimentale.
Préparation des vis et plaques
Les matériaux de fixation interne ont été préparés avant la procédure chirurgicale. Les vis en acier inoxydable disponibles dans le commerce (diamètre d’origine : 1,2 mm, longueur : 14 mm) ont été coupées à une longueur précise de 6 mm à l’aide d’un coupe-fil (Figure 1A). Ces vis ont été stérilisées par autoclavage à vapeur standard à 121 °C pendant 20 minutes. Dans une plaque de fixation interne en polyoxyméthylène (POM) (18 mm de longueur, 3 mm de largeur, 1 mm d’épaisseur), des trous de vis d’un diamètre de 1,2 mm ont été percés à intervalles de 12 mm à l’aide d’une perceuse manuelle (Figure 1B–D). Par la suite, les coins des plaques POM ont été arrondis à l’aide d’un coupe-fil pour minimiser l’irritation des tissus mous environnants (Figure 1E). Les plaques ont été stérilisées à l’aide de gaz oxyde d’éthylène (EtO) ou de plasma gazeux peroxyde d’hydrogène, compte tenu de la sensibilité thermique du polymère. La cage en titane présente une structure en treillis interconnectée avec des canaux longitudinaux mesurant entre 300 et 500 μm de diamètre. Sa surface a été préparée à l’aide de la technologie lamellaire 3D titane pour obtenir une rugosité micro-surface de 3 à 5 μm, ce qui facilite la croissance osseuse directe.
Anesthésie et intervention chirurgicale
Aucun jeûne préopératoire n’a été effectué pour éviter un stress métabolique inutile. L’anesthésie a été induite via un mélange triple d’anesthésie composé de médétomidine (0,15 mg/kg), midazolam (2 mg/kg) et butorphanol (2,5 mg/kg), administré par injection sous-cutanée dans le dos à l’aide d’une aiguille23 calibre 25. Un plan chirurgical d’anesthésie adéquat a été évalué toutes les 15 minutes en confirmant la perte du réflexe de retrait de la pédale (pincée de l’orteil), en maintenant les muqueuses roses et en surveillant la fréquence respiratoire (70–110 respirations/min). La procédure chirurgicale de fusion intersonaire des vertèbres caudales a ensuite été réalisée. L’animal a été placé en position couchée (Figure 2A), et toute la queue a été désinfectée selon un protocole de frottage alterné en trois cycles (70 % d’éthanol, frottage povidone-iode et 70 % d’éthanol) afin d’assurer un champ stérile. Pour identifier les vertèbres cibles, une palpation manuelle a été réalisée en partant du sacrum distalement. La première articulation mobile a été identifiée comme la jonction sacrum-CO1, et le segment immédiatement distal a été désigné comme Co2, définissant le site cible Co2–Co3. Une incision longitudinale d’environ 2 cm a été réalisée sur la face dorsale, s’étendant de la deuxième à la troisième vertèbre caudale (Co2–Co3) (Figure 2B), pour exposer la face postérieure de chaque vertèbre. Pendant l’exposition, il a été pris soin d’identifier et d’éviter les dommages à la veine caudale dorsale ; La dissection contondante et l’électrocautérisation bipolaire ont été utilisées pour gérer les saignements mineurs. Pour préparer le site de fusion, l’annulus fibrosus entre les vertèbres de CO2 et Co3 a été incisé à l’aide d’un scalpel (Figure 2C). L’annulus fibrosus et le noyau pulpeux ont ensuite été méticuleusement retirés par curettage à l’aide d’une curette et de petites pinces (Figure 2D). Cette étape a été réalisée sous grossissement chirurgical puissant (≥3,5x). L’exhaustivité de l’ablation a été objectivement définie par la confirmation visuelle d’un saignement ponctué (le signe de la « plaque terminale sanglante ») et l’absence totale de tissu mou résiduel. Les dommages inacceptables à la plaque terminale étaient définis comme des érosions profondes impliquant > 25 % de la surface totale ou une pénétration dans l’os boucleur > 0,5 mm. Une cage en titane (section transversale de 2 × 2 mm, hauteur de 2 mm) (Figure 2E) a ensuite été insérée profondément dans l’espace intervertébral jusqu’à atteindre un arrêt physique et que le contact complet avec les deux plaques terminales soit confirmé visuellement, créant un ajustement ferme par interférence (Figure 2F, 2G).
Fixation et fermeture de la plaie
Pour faciliter la fixation des plaques, la surface osseuse autour des emplacements de trous désignés dans les vertèbres de CO2 et Co3 a été aplatie à l’aide d’une fraiseuse électrique portable fonctionnant à 7 800 tr/min équipée d’une meule sphérique de type lime de 2,0 mm (Figure 2H). Les trous en os étaient percés individuellement à des intervalles correspondant aux trous de vis de la plaque de fixation interne en plastique à l’aide d’une perceuse manuelle équipée d’un foret de 1,2 mm de diamètre (Figure 2I). Deux vis en acier inoxydable de 6 mm ont ensuite été préchargées dans les trous. de la plaque en plastique (Figure 2J). Les vis étaient insérées à un angle de 90° à une profondeur standardisée de 5 mm avec un espacement centre-centre de 12 mm (Figure 2K). Enfin, l’incision cutanée a été fermée avec des points de suture en nylon 4-0, et la queue a été désinfectée à nouveau avec 70 % d’éthanol pour compléter la procédure.
Prise en charge postopératoire et euthanasie
Pendant la phase de récupération immédiate (jour 0), l’animal était surveillé toutes les 15 minutes, et la température rectale était maintenue jusqu’à atteindre une position sternale couchée complète et une déplacement intentionnel. Pour l’évaluation à long terme (semaines 1 à 12), un système de notation quotidien basé sur le score de condition corporelle (BCS), le statut de toilettage et l’activité générale a été mis en place, ainsi qu’une surveillance quotidienne du site chirurgical pour infection ou déhiscence. Un repas humide a été fourni sur le sol de la cage pendant les 48 premières heures. Le poids corporel était mesuré chaque semaine. Les critères humains pour l’euthanasie précoce étaient strictement définis comme suit : perte de poids ≥20 %, BCS ≤2,0, incapacité persistante à atteindre la nourriture/l’eau > 12 heures, signes de douleur/dyspnée sévère, ou complications graves du site chirurgical (par exemple, nécrose). Les animaux répondant à ces critères ont été euthanasiés de manière humaine dans les 24 heures. Les soins postopératoires comprenaient l’administration de céfalexine (15 mg/kg) par voie intramusculaire immédiatement après l’opération et à 24 heures postopératoires pour prévenir l’infection. Pour l’analgésie, le carprofène (2 mg/kg) a été administré par voie sous-cutanée immédiatement après l’opération et à 12, 24 et 48 heures post-opératoires, pour un total de quatre doses. À 12 semaines après l’implantation, le rat a été euthanasié par overdose d’isoflurane. Le segment de la deuxième à la troisième vertèbre caudale a ensuite été prélevé en bloc et fixé à 70 % d’éthanol.
Recommandations de formation, dépannage et taille de l’échantillon. Pour faciliter l’adoption réussie de ce protocole exigeant, les nouveaux opérateurs doivent effectuer 3 à 5 procédures d’entraînement sur des cadavres de rats, atteignant la maîtrise lorsque trois placements consécutifs ne montrent aucune déformation radiographique. Les dépannages courants incluent la pré-mesure de la hauteur du disque par radiographie pour optimiser la sélection de la taille de la cage et la revérification de la planévitabilité dorsale de l’os pour éviter la migration de la cage. Si l’achat de vis est insuffisant, il est recommandé d’utiliser des vitesses de forage plus basses. Pour les futures études de validation, une taille minimale d’échantillon de n = 6 à 10 par groupe est recommandée (avec un ajout supplémentaire de 10 à 20 % pour l’attrition) afin d’atteindre une puissance statistique suffisante. De plus, les études futures doivent intégrer des groupes témoins (par exemple, cage vide ou autogreffe) afin de valider la performance du biomatériau.
Analyse radiographique et histologique
La tomodensitométrie (CT) et la radiographie numérique ont été réalisées à l’aide d’un système de micro-CT avec une tension tubulaire de 80 kV et un courant de 0,1 mA. Un filtre en aluminium de 1,0 mm d’épaisseur a été utilisé lors de l’acquisition pour minimiser les artefacts de durcissement du faisceau causés par l’implant en titane. Pour l’évaluation longitudinale, l’imagerie in vivo a été réalisée à 1 et 4 semaines postopératoires avec une taille voxel de 120 μm. L’imagerie ex vivo a été réalisée à 12 semaines postopératoires avec un porte-échantillon de 24 mm avec une taille voxel de 24 μm. Les données CT et les images radiographiques ont été reconstituées à l’aide d’un algorithme de rétroprojection filtré standard et analysées à l’aide d’un viseur DICOM. Des critères quantitatifs ont été définis pour évaluer l’union osseuse. Radiologiquement, la fusion réussie a été confirmée lorsqu’une structure trabéculaire continue reliant les plaques vertébrales crânienne et caudale a été observée sur au moins trois tranches consécutives lors de la micro-CT. Un seuil global de 700 unités de Hounsfield (HU) a été appliqué lors de la segmentation d’image. Histomorphométriquement, un ratio BV/TV de 70 % ou plus dans la cage était considéré comme le seuil pour l’accomplissement spatial physique et la fusion. Histologiquement, l’union osseuse était définie par un pontage osseux complet entre le côté crânien et caudal sans interposition de tissu fibreux. Pour l’analyse histologique, un marquage séquentiel au fluorochrome a été réalisé par injection sous-cutanée de calcéine (8 mg/kg) deux jours avant l’euthanasie afin d’identifier la répartition spatiale de la minéralisation active au point terminal de 12 semaines. Les vertèbres caudales excisées ont été fixées à 70 % d’éthanol pendant 7 jours et colorées en bloc avec une teinture osseuse de Villanueva. Les spécimens ont été déshydratés par des grades croissants d’éthanol, intégrés dans la résine méthacrylate de méthyle, et sectionnés en sagittalement au centre géométrique précis de la cage, comme déterminé par un guidage Micro-CT pré-sectionné, à l’aide d’un microtome à scie diamantée. Des échantillons de sol non calcifiés (5 μm d’épaisseur) ont été préparés à l’Institut d’Histomorphométrie Osseuse d’Ito (Niigata, Japon). Les images ont été prises à l’aide d’un microscope en champ clair et d’un microscope laser confocal pour la fusion de fluorescence. Un examen supplémentaire a été effectué au microscope à lumière polarisée, et une analyse histomorphométrique a été réalisée à l’aide d’un analyseur d’images informatisé. La Région d’Intérêt (ROI) était définie comme le volume interne total de la cage, à l’exclusion des montants métalliques, et était subdivisée en ROI intracage crânienne et caudale. Le tissu osseux a été identifié par sa couleur violette/magenta sous la coloration de Villanueva. L’os lamellaire (Lm.V) se caractérisait par sa structure lamellaire très organisée et parallèle sous la lumière polarisée, tandis que l’os tissé (Wo.V) présentait des motifs fibreux désorganisés.