Libération d’acupotomie guidée par échographie avec évaluation biomécanique du syndrome de douleur myofasciale du trapèze

Résumé

Ce protocole décrit la libération d’acupotomie guidée par échographie pour le syndrome de douleur myofasciale par trapèze, en utilisant l’élastographie par ondes de cisaillement et la palpation numérique pour quantifier les changements biomécaniques. Il permet une visualisation fasciale en temps réel, une libération précise, une dépendance réduite à l’opérateur et des métriques reproductibles, offrant un flux de travail sûr et répétable pour la pratique clinique et la recherche mécanistique.

Résumé

Le syndrome de douleur myofasciale du trapèze (MPS) est un trouble musculosquelettique très répandu. La libération conventionnelle d’acupotomie repose fortement sur l’expérience de l’opérateur et manque de résultats quantitatifs objectifs, limitant ainsi fortement sa reproductibilité et sa recherche mécanistique. Ce protocole établit une libération standardisée guidée par échographie par acupotomie, combinée à un système objectif d’évaluation biomécanique, détaillant le positionnement standardisé du patient, la localisation par échographie des couches fasciales pathologiques, l’insertion précise de l’aiguille et la libération superficiale/profonde en couches. L’élastographie par ondes de cisaillement (SWE) et la palpation numérique ont été appliquées pour évaluer quantitativement les propriétés biomécaniques des tissus mous, tant au repos qu’à l’étirement passif. Les résultats de 27 effets secondaires atteints chez des patients atteints de MPS par trapèze ayant subi une libération d’acupotomie guidée par échographie ont montré que : les scores de SAV à 1 semaine et 2 semaines après l’intervention étaient significativement réduits par rapport à la fois au départ et immédiatement après l’intervention (tous P < 0,001) ; Le module de cisaillement au repos (valeur G) immédiatement, à 1 semaine et à 2 semaines après l’intervention s’est nettement amélioré par rapport à la référence initiale (P < 0,05 ou P < 0,01) ; le tonus musculaire et la raideur aux positions de repos et d’étirement passif, ainsi que l’élasticité au repos, se sont nettement améliorés à 1 et 2 semaines par rapport à l’intervention immédiate (P < 0,05 ou P < 0,01) ; L’élasticité à la fois en position d’étirement passif et de repos s’est nettement améliorée à 2 semaines par rapport au départ et immédiatement après l’intervention (P < 0,05 ou P < 0,01). Ces résultats représentatifs à court terme suggèrent que le protocole peut être appliqué de manière reproductible pour effectuer la libération par acupotomie guidée par échographie et pour quantifier les changements cliniques et biomécaniques associés. Le flux de travail peut soutenir la pratique clinique standardisée, la formation technique et les études mécanistiques de l’acupotomie dans le MPS trapèze.

Introduction

Le syndrome de douleur myofasciale (SMP) se caractérise par un épaississement contractile fascial et des nodules hyperréactifs¹, avec une prévalence de 30 % à 93 % dans les cliniques de la douleur². Le diagnostic actuel repose fortement sur des méthodes subjectives, telles que la palpation, manque de critères objectifs et souffre d’une faible^{reproductibilité 3}. Le muscle trapèze, en raison de son rôle constant dans le maintien de la posture de la tête et du cou, est particulièrement sensible⁴. La libération de l’acupotomie, intégrant la théorie traditionnelle chinoise de l’acupuncture avec l’anatomie moderne, est devenue une thérapie caractéristique couramment utilisée en médecine traditionnelle chinoise pour traiter le MPS, en raison de ses avantages de traumatismes minimes, d’inconfort léger et de libération efficace des^{adhérences 5}. Néanmoins, l’acupotomie aveugle conventionnelle comporte le risque d’endommager les nerfs et vaisseaux sanguins environnants, et son efficacité est évaluée uniquement sur la base des rapports subjectifs des patients et du jugement empirique des praticiens, en l’absence de métriques quantitatives objectives, ce qui limite fortement sa standardisation et sa promotion clinique.

Les avancées récentes en imagerie par ultrasons offrent des solutions prometteuses à ces défis. L’échographie visualise non seulement clairement et objectivement un fascia épaissi, mais fournit également des indications en temps réel, améliorant ainsi considérablement la précision et la sécurité de la libération de l’acupotomie. Parallèlement, l’élastographie par ondes de cisaillement (SWE) peut quantifier de manière non invasive le module élastique du tissu musculaire en mesurant la vitesse de propagation des ondes de cisaillement, offrant une base objective pour évaluer les propriétés biomécaniques des tissus^{mous 6}. L’EE a été utilisée avec succès pour quantifier la raideur musculaire dans la MPS du trapèze et a établi un seuil diagnostique de 9,08 kPa, démontrant une utilité prometteuse tant pour le diagnostic que pour l’évaluation de l’efficacité de la MPS du^{trapèze 7}. Par conséquent, ce protocole propose une libération standardisée guidée par échographie combinée à la technologie SWE et de palpation numérique, permettant une visualisation fasciale en temps réel, une libération en couches précise et des métriques biomécaniques reproductibles — des avantages par rapport à l’acupotomie aveugle conventionnelle. Ce protocole s’applique à la pratique clinique, aux études mécanistes et à la formation technique.

Protocole

Ce protocole a été approuvé par le Comité d’éthique médicale de l’hôpital Xiyuan (Approbation n° : 2025XLA024-1). Tous les participants ont donné leur consentement éclairé écrit. Les étapes suivantes décrivent la procédure de libération de l’acupotomie guidée par échographie ainsi que les évaluations biomécaniques concomitantes utilisant l’élastographie par ondes de cisaillement (SWE) et un dispositif de palpation numérique pour les patients diagnostiqués avec un MPS par trapèze selon les critères^{établis 8,9}.

1. Méthodes d’intervention

1. Préparation au traitement
   1. Effectuer un dépistage préalable au traitement : examiner les antécédents de la patiente pour détecter des contre-indications (par exemple, troubles de la coagulation, usage d’anticoagulants, grossesse) ; évaluer la zone traitée ; et assurez-vous que le patient est dans un état confortable et détendu.
   2. Rassemblez les matériaux suivants : un kit de changement de pansement jetable, une solution de povidone-iode, des gants médicaux stériles jetables, des aiguilles d’acupotomie jetables (type anse à boucle, taille 0,6 mm × 40 mm) et des rideaux fenestrés stériles.
      ATTENTION : L’iode de Povidone peut irriter la peau et les yeux ; éviter le contact avec les yeux et les muqueuses ; Portez des gants stériles lors de l’utilisation. Les aiguilles d’acupotomie sont des dispositifs tranchants et à usage unique ; manipuler avec précaution pour éviter les blessures par piqûre ; Jetez immédiatement les aiguilles usagées dans un contenant dédié à objets tranchants. Voir Figure 1A.
   3. Placez le patient dans une posture assise détendue, le dos droit, le regard tourné vers l’avant, les deux bras reposant naturellement sur les cuisses antérieures et les pieds à plat sur le sol. Assurez-vous que la région du trapèze affectée est complètement exposée.
   4. Demandez au patient d’identifier la zone la plus douloureuse, puis appliquez une pression verticale progressive (2 à 3 kg) dans la bande tendue du trapèze pour localiser le point sensible maximal.
   5. Utilisez un marqueur de peau stérile en forme de violet de gentiane pour tracer un cercle de 0,5 cm de diamètre au point cible. Effectuez un marquage avant une désinfection stérile pour maintenir la technique aseptique.
   6. Désinfectez la peau en mouvement circulaire du centre vers l’extérieur avec de l’iode povidone (diamètre ≥ 10 cm). Répétez trois fois, en laissant 30 secondes pour sécher à chaque fois. Enfin, couvrez d’un drapé fenestré stérile centré sur la pointe marquée.
   7. Allumez le système d’échographie Doppler couleur. Connectez la sonde à réseau linéaire haute fréquence (4–18 MHz ; réglée à 17 MHz). Sélectionnez le préréglage MSK des extrémités et activez l’imagerie harmonique tissulaire (THI). Profondeur réglée = 3–4 cm, puissance = 95 %, fréquence d’images = 35 Hz, gain = 60–70 dB, et ajusté TGC pour une luminosité uniforme. Placez la mise au point sur le fascia profond (1,5 à 2 cm de profondeur).
   8. Appliquez 2 à 3 mL de gel de couplage à ultrasons médicaux sur la surface de la sonde.
   9. Couvrir la sonde d’un gant médical stérile jetable ; Expulsez l’air pour obtenir une surface lisse et sécurisez l’extrémité distale avec des blocages à deux doigts. Désinfectez la surface extérieure du gant avec de l’iode de povidone stérile.
   10. Demandez au patient d’informer immédiatement le médecin de tout inconfort pendant la procédure.
2. Procédure de traitement
   1. Placez la sonde à ultrasons dans la direction des fibres musculaires du trapèze (c’est-à-dire que l’axe long de la sonde est parallèle à l’orientation des fibres), perpendiculairement à la peau au-dessus du point marqué, en maintenant un contact stable sonde à peau (indentation cutanée < 0,5 cm).
   2. Déplacez lentement la sonde dans la direction de la fibre pour scanner et identifier les zones de fascia localement épaissi, puis centrer la partie la plus épaisse du fascia épaissi sous la sonde.
      REMARQUE : L’épaississement du fascia est défini à l’échographie comme : augmentation de l’épaisseur > 2 mm par rapport au fascia normal adjacent, avec une échogénicité hétérogène et un glissement limité. Voir la Figure 2D.
   3. Insérez l’aiguille d’acupotomie percutanée à un point latéral de 0,5 cm par rapport au marqueur de l’axe long de la sonde.
   4. Sous guidage par échographie en temps réel, avancez l’aiguille du médial vers le latéral, la pointe pointant vers l’articulation de l’épaule, à un angle de 10°—15° par rapport à la peau, dans le plan parallèle à l’axe long du muscle trapèze. Guidez la pointe de l’aiguille vers la couche fasciale superficielle.
   5. Effectuez 3 à 5 mouvements obliques de relâchement (mouvement longitudinal de 5 mm, fréquence de 1 Hz) jusqu’à ce qu’une « perte de résistance » palpable soit ressentie, ou jusqu’à ce qu’une échographie montre une séparation fasciale et une amélioration du glissement des fascies.
   6. Retirez l’aiguille jusqu’au niveau sous-cutané, ajustez l’angle d’insertion à environ 45°, puis avancez la pointe de l’aiguille vers la couche fasciale profonde sous guidage par échographie. Effectuer 3 à 5 mouvements obliques de libération en utilisant le même mouvement longitudinal de 5 mm et la même fréquence de 1 Hz jusqu’à ce que la perte de résistance soit ressentie ou que l’échographie montre une séparation fasciale et une amélioration du glissement des fascies.
   7. Retirez complètement l’aiguille, appliquez une pression ferme sur le site de l’aiguille avec une boule de coton stérile pendant 30 secondes, couvrez le site d’un pansement adhésif stérile, puis aidez le patient à ajuster ses vêtements.
      REMARQUE : Tout au long de la procédure d’insertion et de libération de l’aiguille, surveillez en permanence les réponses du patient et les retours verbaux pour tout signe d’inconfort ou de réaction indésirable.
3. Instructions post-traitement
   1. Demandez au patient de garder le site de l’aiguille sec pendant 24 heures et d’éviter de soulever des objets lourds dépassant 5 kg pendant 48 heures.
4. Surveillance de la sécurité
   1. Classification par événement indésirable (AE)
      1. Définissez l’AE léger comme une douleur locale transitoire (EVA 1–3), une petite ecchymose (<2 cm) ou une légère douleur résolue spontanément dans les 24 heures.
      2. Définissez un EA modéré comme une douleur locale (AVS 4–6), une ecchymose (2–5 cm) ou une légère réaction vasovagale ; Cela se soulage avec le repos et l’hydratation.
      3. Définissez l’AE sévère comme une douleur intense (EVA ≥7), un hématome important (>5 cm), une syncope, une lésion nerveuse, un pneumothorax ou des événements nécessitant une hospitalisation.
   2. Seuils de réponse des patients (critères d’arrêt intraopératoire)
      1. Arrêtez immédiatement la procédure si : douleur du VAS ≥ 7 lors du needling ; symptômes présyncopes (pâleur, vertiges, fréquence cardiaque < 50 ou >100 bpm, SBP < 90 mmHg) ; ou le saignement actif est visualisé.
   3. Méthodes d’enregistrement et de déclaration des événements indésirables
      1. Notez tous les AE dans le CRF selon le type, le début de la saison, la durée, la gravité, la gestion et le résultat.
      2. Signalez les AE modérés/sévères au Comité d’éthique dans les 24 heures.
      3. Suivez les patients jusqu’à la résolution de l’AE et documentez le résultat final.
         ATTENTION : La syncope vasovagale est un événement indésirable modéré potentiel. Si des symptômes présyncopes apparaissent, arrêtez la procédure, placez le patient en position couchée avec les jambes surélevées, et surveillez jusqu’à la disparition des symptômes.

2. Procédures d’évaluation

REMARQUE : Pour réduire l’erreur de mesure, toutes les mesures sont effectuées dans un environnement calme, contrôlé à température (22–24 °C), protégé par la vie privée. Le patient est invité à porter des vêtements amples permettant une exposition facile de la zone des épaules et à se reposer tranquillement dans la salle d’attente pendant 10 minutes avant l’évaluation.

1. Évaluation à l’échelle analogique visuelle
   1. Présentez l’échelle analogique visuelle au sujet. Instruire le sujet comme suit : « Sur cette échelle, 0 représente 'aucune douleur' et 10 représente 'la pire douleur imaginable.' Veuillez noter le point qui représente le mieux l’intensité moyenne de la douleur dans votre muscle trapèze. »
2. Mesure de l’élastographie par ondes de cisaillement
   REMARQUE : Toutes les mesures de l’EAD doivent être réalisées par des opérateurs ayant plus de 75 heures de formation spécifique à la technique. Avant la collecte des données, chaque opérateur effectue une pratique standardisée sur des volontaires en bonne santé et des patients atteints de MPS par trapèze afin d’assurer un positionnement cohérent des sondes, un alignement des fibres et un placement du ROI. Lors de l’acquisition de la SWE, utilisez une pression minimale de la sonde : juste assez pour une image claire en mode B avec une indentation cutanée < 0,5 cm.
   1. Préparation de l’équipement et positionnement du sujet
      1. Allumez le système de diagnostic à ultrasons portable. Sélectionnez et connectez la sonde à réseau linéaire 8,5 MHz.
         REMARQUE : Voir Figure 1B.
      2. Placez le sujet en position assise devant un lit de traitement réglable. Demandez au sujet de placer ses avant-bras parallèlement sur la surface du lit, à peu près à la largeur des épaules.
      3. Ajustez la hauteur du lit pour qu’elle s’aligne avec le niveau de la jonction thoraco-lombaire du sujet.
      4. Assurez-vous que les pieds du sujet sont à plat sur le sol, que le dos est droit et que le regard est droit droit devant. Confirmez que les épaules sont naturellement détendues, avec seulement le poids des bras reposant sur le lit ( voir Figure 2A).
   2. Localisation des points de mesure
      1. Palper pour identifier le processus épineux de la septième vertèbre cervicale (C7) et le point le plus latéral de l’acromion ipsilatéral.
      2. Marquez le point médian de la ligne reliant ces deux repères anatomiques. Ce point correspond au point d’acupuncture Jianjing (GB21)10 et sert de site de mesure standardisé.
   3. Mesure SWE à l’état de repos
      1. Appliquez 2 à 3 mL de gel couplant à ultrasons à la surface de la sonde échographie.
      2. Alignez la sonde parallèlement aux fibres musculaires du trapèze au point marqué. En mode B, ajustez l’orientation jusqu’à ce que les fascicules apparaissent comme des bandes hypoéchoïques continues et parallèles ; ne pas acquérir de SWE s’ils semblent obliques, discontinus ou mal visualisés. Maintenir un contact minimal entre la sonde et la peau (l’échographie montre une indentation cutanée < 0,5 cm) et éviter une pression supplémentaire ( voir Figure 2C).
      3. Activez le mode SWE sur le système d’échographie. Réglez la profondeur d’imagerie à 3–4 cm pour s’assurer que la partie centrale du muscle trapézien est centrée sur l’image.
      4. Instruisez le sujet à rester détendu et à respirer normalement. Après que le sujet reste immobile pendant 2 à 3 secondes, acquiert la trame de données SWE.
      5. Notez au moins 10 mesures valides répétées de chaque côté et prenez la moyenne comme module de cisaillement final (valeur G) pour ce côté.
   4. Mesure SWE dans l’état d’étirement passif
      1. Avec le sujet maintenant la position assise de base (étapes 2.2.1.2 à 2.2.1.4), faites en sorte qu’un second opérateur stabilise l’épaule ipsilatérale du sujet pour éviter l’élévation.
      2. Demandez au second opérateur de plier passivement latéralement la tête du sujet vers le côté controlatéral à un angle de 30°–45° (mesuré au goniomètre), obtenant ainsi une « légère sensation d’étirement sans douleur ». Maintenez cette position d’étirement passive pendant 1 minute.
      3. Simultanément, le premier opérateur doit répéter le processus de mesure SWE (étapes 2.2.3.1 à 2.2.3.5) au même point de mesure indiqué à l’étape 2.2.2.
         REMARQUE : Assurez-vous que la position étirée est complètement passive et ne provoque aucune protection ou contraction volontaire de la part du sujet. Voir la Figure 2B pour une illustration du positionnement.
   5. Analyse d’images et enregistrement des données
      1. Sélectionnez la trame avec le meilleur indice de stabilité du mouvement et de fiabilité pour l’analyse.
      2. Sur le cadre choisi, dessinez une région d’intérêt rectangulaire (ROI) mesurant 2,5 mm × 20 mm dans le muscle, sous le fascia.
         REMARQUE : Positionnez le ROI pour éviter soigneusement l’inclusion de vaisseaux sanguins, tendons ou limites fasciales visibles.
      3. Enregistrez le module de cisaillement moyen (valeur G, en kPa) fourni par le logiciel système pour ce ROI.
3. Mesure de la tension des tissus mous
   REMARQUE : Utilisez un dispositif de palpation numérique pour obtenir trois paramètres clés : fréquence d’oscillation (F, Hz, tonus musculaire réfléchis), raideur dynamique (S, N/m, résistance à la déformation) et décrement logarithmique (D, reflet de l’élasticité) ( voir Figure 1C).
   1. Procédure de mesure
      1. Assurez-vous que la posture et le point de mesure d’essai sont identiques à ceux utilisés pour les mesures SWE (étape 2.2).
      2. Placez la sonde de l’appareil perpendiculairement à la peau au point de mesure désigné. Appuyez doucement jusqu’à ce que le voyant indicateur du dispositif passe du rouge au vert (force de contact d’environ 2–3 N).
      3. Tiens la sonde stable. L’appareil délivrera automatiquement trois impulsions mécaniques et enregistrera les paramètres ci-dessus.
      4. Si le coefficient de variation dépasse 3 %, répétez la mesure.
         REMARQUE : Les évaluations pour le VAS, l’EDE et la tension des tissus mous sont effectuées aux moments prescrits selon le plan de l’essai. Dans cette étude, ces mesures de jugement sont évaluées au départ (pré-traitement), immédiatement après le traitement (30 minutes après la fin de la libération de l’acupotomie), ainsi qu’aux suivis d’une semaine et de deux semaines.
4. Contrôle qualité, étalonnage des dispositifs et cohérence des opérateurs
   1. Effectuez des contrôles d’équipement avant chaque jour d’essai. Pour le système d’échographie, vérifiez l’intégrité de la sonde, l’uniformité de l’image, la calibration de la profondeur et la disponibilité du mode SWE. Pour le dispositif de palpation numérique, effectuez la calibration recommandée par le fabricant ou la vérification de la fonction et confirmez le mouvement stable de la sonde et l’indication de la force de contact.
   2. Utilisez le même système d’échographie, modèle de sonde, préréglage SWE, taille ROI et dispositif de palpation numérique tout au long de l’étude autant que possible. Si le remplacement de l’équipement est inévitable, documentez le changement et effectuez des mesures croisées avant de poursuivre l’acquisition des données.
   3. Attribuer des opérateurs formés à des rôles fixes : un pour l’acquisition de l’étirement logiciel, un pour l’assistance passive à l’étirement, et un pour les mesures de palpation numérique. L’aveuglement à l’attribution des groupes est maintenu chaque fois que cela est possible.
   4. Avant la collecte formelle des données, évaluer la fiabilité intraopérateur et interopérateur en utilisant la même posture, site de mesure et paramètres d’acquisition standardisés que dans l’étude principale. Utilisez les seuils de fiabilité suivants : mauvais, ICC < 0,50 ; modéré, ICC 0,50–0,75 ; bon, ICC 0,75–0,90 ; et excellent, ICC > 0,90.
   5. Enregistrer toutes les écartations par rapport à la procédure d’acquisition standardisée (par exemple, pression excessive de la sonde, cartes SWE instables, incapacité à maintenir un étirement passif, CV répété >3 %, dysfonctionnement de l’équipement, changement d’opérateur). Corrigez la cause et répétez la mesure ; Si des mesures valides ne peuvent être obtenues, documenter comme une déviation de protocole.

Résultats

Un total de 44 matières ont été initialement inscrites. Un sujet a ensuite été exclu en raison d’un diagnostic concomitant d’épaule gelée identifiée après l’inscription. Par conséquent, 43 sujets ont été inclus dans l’analyse finale, comprenant 6 sujets souffrant de douleurs unilatérales et 37 sujets souffrant de douleurs bilatérales, soit un total de 80 parties affectées, les cas bilatéraux étant comptés comme deux côtés affectés. La répartition finale était de 27 côtés dans le groupe acupotomie, 27 dans le groupe de fausse acupotomie et 26 dans le groupe témoin blanc. La randomisation était effectuée de manière centralisée à l’aide d’une séquence de blocs 1:1:1 générée par ordinateur avec des tailles de blocs variables de 4 ou 6, et l’allocation était dissimulée par des enveloppes opaques scellées. Pour les participants souffrant de douleurs bilatérales, chaque côté affecté a été randomisé indépendamment. Aucune stratification n’a été utilisée. Le groupe de la fausse acupotomie a reçu une aiguillage sous-cutanée guidée par échographie sans pénétration fasciale, tandis que le groupe témoin blanc n’a reçu aucune intervention par aiguille et a effectué les mêmes évaluations aux moments correspondants. Les patients n’ont pas été aveuglés en raison de la différence de profondeur de pénétration entre les procédures actives et simulées, tandis que les évaluateurs de résultats et les statisticiens étaient aveugles à l’allocation par groupe.

Tous les sujets diagnostiqués avec un syndrome de douleur myofasciale par trapèze présentaient des points gâchettes actifs unilatéraux ou bilatéraux. Aucune différence statistiquement significative n’a été trouvée entre les trois groupes dans les caractéristiques de base, notamment le sexe, l’âge et l’IMC, indiquant la comparabilité ( voir Tableau 1). La pointe de l’aiguille était clairement visualisée aux couches fasciale superficielle et profonde lors de l’échographie, et l’opérateur percevait une perte nette de résistance lors de la libération. Des mesures biomécaniques valides et stables, ainsi que des modifications post-intervention de la raideur et de la douleur des tissus, ont indiqué une exécution réussie du protocole. Dans une évaluation de fiabilité de 10 volontaires et 20 équipes, la fiabilité interopérateur était excellente (ICC = 0,970 ; SEM/MDC95 = 0,55/1,53), et la fiabilité intra-opérateur était également excellente (ICC = 0,984 ; SEM/MDC95 = 0,41/1,15). Inversement, des mesures anormales ou instables suggèrent des écarts dans le positionnement du patient, la manipulation de la sonde ou l’insertion d’aiguilles, nécessitant des acquisitions répétées de données ou des ajustements procéduraux conformément aux critères de contrôle qualité de ce protocole.

Les scores VAS, utilisés pour évaluer l’intensité moyenne de la douleur, étaient anormalement répartis et présentés comme médians (intervalle interquartile). Aucune différence significative dans les scores de la VAS n’a été observée entre les trois groupes au départ (P > 0,05). Les comparaisons intra-groupes ont révélé que dans le groupe acupotomie, les scores VAS à la fois 1 semaine et 2 semaines après le traitement étaient significativement inférieurs à ceux de la référence initiale (P < 0,001) et à 0 semaine (immédiatement après le traitement) (P < 0,001). Aucun changement significatif des scores VAS n’a été observé à aucun moment dans le groupe de la fausse acupotomie ou le groupe témoin blanc (P > 0,05). Les comparaisons entre groupes ont montré que les scores de la SAV dans le groupe acupotomie à 1 semaine et 2 semaines étaient significativement inférieurs à ceux du groupe faux et du groupe témoin blanc (P < 0,001 pour toutes les comparaisons) (voir Tableau 2 et Figure 3A).

L’ES a été employé pour évaluer la raideur tissulaire, quantifiée par le module de cisaillement (valeur G, en kPa), à la fois dans les états de repos et d’étirement passif. Les données de la valeur G pour le groupe d’acupotomie suivaient une distribution normale et sont présentées en moyenne ± écart-type. Les données pour les groupes simulés et témoins étaient anormalement distribuées et présentées comme médianes (intervalle interquartile). Les comparaisons dans le groupe d’acupotomie ont montré que la valeur G au repos diminuait immédiatement après le traitement (0 semaine) par rapport à la référence initiale (P < 0,01) et restait significativement inférieure à la référence à la fois aux suivis à 1 semaine et à 2 semaines (P < 0,05 pour les deux). Dans l’état d’étirement passif, une augmentation transitoire mais significative de la valeur G a été observée à 1 semaine par rapport à la mesure à 0 semaine (P < 0,05), sans autres changements significatifs par rapport à la base. Aucun changement significatif de la valeur G au sein du groupe n’a été observé à aucun moment dans l’un ou l’autre état pour les groupes témoins fictifs ou vides (P > 0,05). Les comparaisons entre groupes au départ ont révélé des différences significatives dans les valeurs G, indiquant un manque de comparabilité de base pour ce paramètre (voir Tableau 3 et Figure 3B,C).

Les mesures ont été obtenues à l’aide du dispositif de palpation numérique, enregistrant le tonus musculaire (Hz), la raideur (N/m) et l’élasticité (décrement logarithmique) sous les états d’étirement au repos et passifs. Les données conformes à une distribution normale sont présentées comme moyenne ± SD, et les données non distribuées anormalement sont présentées comme médiane (IQR). Dans le groupe acupotomie, le tonus musculaire au repos et à l’étirement était significativement plus bas à 1 et 2 semaines comparé à 0 semaine (P < 0,05 ou P < 0,01). La raideur dans les deux États a également montré des diminutions significatives à 1 et 2 semaines contre 0 semaine (P < 0,01 pour l’état de repos ; P < 0,05 pour l’état d’étirement). Pour l’élasticité, l’élasticité à l’état de repos à 1 semaine était significativement inférieure à celle de 0 semaine (P < 0,05). À 2 semaines, l’élasticité dans les états de repos et d’étirement était significativement inférieure à celle à la fois à 0 semaine et à la base (P < 0,01 pour les comparaisons avec 0 semaine ; P < 0,05 pour les comparaisons avec la référence initiale). Dans le groupe de l’acupotomie factice, seule la raideur à l’état d’étirement a montré une augmentation transitoire et isolée à 1 semaine par rapport à la référence initiale (P < 0,05). Aucun autre paramètre n’a changé de manière significative à aucun moment. Le groupe témoin vide n’a montré aucun changement significatif dans aucun paramètre (tonalité, rigidité, élasticité) à travers tous les points temporels. Les comparaisons entre groupes ont montré des différences significatives de base dans le tonus musculaire et la raideur, excluant une comparabilité directe au départ. Plus précisément, le groupe d’acupotomie a présenté un ton au repos significativement plus élevé que les deux groupes témoins (P < 0,05 ou P < 0,01) et une raideur au repos plus élevée que le groupe simulé (P < 0,05). Sous l’état d’étirement, le timbre et la raideur du groupe d’acupotomie étaient tous deux significativement plus élevés que ceux du groupe simulé (P < 0,05 pour les deux). L’élasticité de base était comparable dans tous les groupes. Au suivi des deux semaines, l’élasticité du groupe d’acupotomie à l’état d’étirement était significativement inférieure à celle du groupe témoin à vide (P < 0,05). Aucune autre différence statistiquement significative entre les groupes n’a été observée à d’autres moments (voir le tableau 4 et la figure 3D-I).

Pendant la période de traitement, deux événements indésirables ont été rapportés dans le groupe d’acupotomie, tous deux des cas de syncope vasovagale (évanouissement de l’aiguille) survenant après un retrait de l’aiguille. Les patients ont été rapidement aidés à se placer en position couchée, tête baissée et jambes surélevées pour favoriser la circulation sanguine cérébrale, ce qui a conduit à une résolution rapide des symptômes. Aucun autre événement indésirable n’a été signalé parmi les participants restants.

Figure 1. Matériaux et équipements utilisés dans l’étude. (A) Matériaux nécessaires à la procédure : kit de changement de pansements jetable, gants médicaux stériles jetables, solution de povidone-iode, aiguilles d’acupotomie jetables (taille 0,6 mm x 40 mm) et rideaux fenestrats stériles. (B) L’élastographie par ondes de cisaillement a été réalisée à l’aide d’un système de diagnostic à ultrasons portable. (C) Le dispositif de palpation numérique pour la mesure de la tension des tissus mous. Veuillez cliquer ici pour voir une version agrandie de cette figurine.

Figure 2. Positions de mesure, points de mesure et anatomie échographie du fascia du trapèze. (A) Position de repos et points de mesure ; (B) Position d’étirement passive ; (C) Mesure du module de cisaillement G en position de repos. (D) Image échographie représentative (mode B) du muscle trapèze montrant la flèche (SF) et la DF (pointe de flèche). Abréviations : SF = fascia superficiel ; DF = fascia profond. Veuillez cliquer ici pour voir une version agrandie de cette figurine.

Figure 3. Comparaisons des propriétés de la VAS, de l’EDE et des tensions des tissus mous entre les trois groupes à différents moments. (A) Scores VAS. (B) Valeurs SWE en position de repos (kPa). (C) Valeurs SWE sous étirement passif (kPa). (D) Ton de repos (Hz). (E) Raideur au repos (N/m). (F) Élasticité au repos. (G) Ton d’étirement passif (Hz). (H) Rigidité passive de l’étirement (N/m). (I) Élasticité passive de l’étirement. Le moment « 0 semaine » indique les mesures prises immédiatement après l’intervention. ^*P<0,05, ^**P<0,01, P<0,001 pour les comparaisons au sein du groupe ; ^#P < 0,05, ^##P < 0,01, ^###P<0,001 pour les comparaisons entre groupes. Abréviations : VAS = Échelle Analogique Visuelle ; SWE = Élastographie des ondes de cisaillement. Veuillez cliquer ici pour voir une version agrandie de cette figurine.

Groupe	Sexe (homme/femme)	Âge (années)	IMC (kg/m 2)
Groupe d’acupotomie (n=27)	8-19	28.15 ± 7.21	20,71 ± 2,33
Groupe d’acupotomie simulée (n=27)	6-21	27.37 ± 7.37	22.18 ± 3.15
Groupe de contrôle blanc (n=26)	5-21	27h50 ± 7h48	22.16 ± 3.21
Valeur statistique	χ2 = 0,8434	F = 0,0864	F = 2,2205
Valeur p	0.6559	0.9173	0.1155

Tableau 1 : Comparaison des données de référence entre les trois groupes.

Groupe	Référence	0 semaine	Semaine 1	Semaine 2
Groupe d’acupotomie (n=27)	4.00(3.00,5.00)	3.00(3.00,4.00)	2.00(1.00,3.00)*^sb	2.00(1.00,2.00)*^sb
Acupotomie simulée Groupe (n=27)	5.00(3.00,6.00)	–	5.00(3.00,5.75)	4.00(3.25,5.75)
Groupe de contrôle blanc (n=26)	4.00(3.00,6.00)	–	4.00(3.00,6.00)	4.50(3.00,6.00)
Les données sont présentées en médiane (intervalle interquartile). 0 semaine, immédiatement après l’intervention. –, non applicable. *P < 0,001 vs. la ligne de base au sein du même groupe ; ^P < 0,001 vs. 0 semaine dans le même groupe ; bP < 0,001 contre le groupe de contrôle vierge au même moment ; sP < 0,001 contre le groupe d’acupotomie simulée au même moment.

Tableau 2 : Comparaison des scores de l’échelle Visual Analog entre trois groupes avant et après l’intervention. Les données sont présentées en médiane (intervalle interquartile). 0 semaine, immédiatement après l’intervention. –, non applicable. ^*P < 0,001 vs. la ligne de base au sein du même groupe ; ^{^}P < 0,001 contre 0 semaine dans le même groupe ; ^bP < 0,001 contre le groupe de contrôle vierge au même moment ; ^sP < 0,001 contre le groupe d’acupotomie simulée au même moment.

Groupe	Moment	SWE au repos (kPa)	SWE à l’étirement passif (kPa)
Groupe d’acupotomie (n=27)	Référence	10,79±4,78#	11.86±4.83
	0 semaine	7.01±2.99**	9,75±3,23
	Semaine 1	8,46±3,01*	12,42±4,70^
	Semaine 2	8,51±2,99*	10.20±3.50
Groupe d’acupotomie simulée (n=27)	Référence	8.47(6.56, 10.40)	9.88(7.37, 13.57)#
	Semaine 1	8.73(6.95, 11. 11)	11.20(8.98, 14.30)
	Semaine 2	7.93(6.34, 11.62)	8.92(6.90, 11.59)
Groupe de contrôle blanc (n=26)	Référence	8.74(5.96,9.40)	11.49(10.31, 17.04)
	Semaine 1	7.82(5.81, 11.00)	10.95(10.12, 13.70)
	Semaine 2	9.88(7.18, 12. 12)	10.80(6.91, 12.03)
Les données sont présentées en moyenne ± DE (x̄± SD) ou médiane (plage interquartile). SWE, élastographie des ondes de cisaillement (kPa). 0 semaine, immédiatement après l’intervention. *P < 0,05, **P < 0,01 vs. la ligne de base au sein du même groupe ; ^P < 0,05 contre 0 semaine dans le même groupe ; #P < 0,05 contre le groupe de contrôle vierge au même moment.

Tableau 3 : Comparaison des valeurs de SWE à différentes positions entre les trois groupes avant et après l’intervention. Les données sont présentées en moyenne ± DE (x̄± SD) ou médiane (plage interquartile). SWE, élastographie des ondes de cisaillement (kPa). 0 semaine, immédiatement après l’intervention. ^*P < 0,05, ^**P < 0,01 vs. la ligne de base au sein du même groupe ; ^P < 0,05 vs. 0 semaine dans le même groupe ; ^#P < 0,05 contre le groupe de contrôle vierge au même moment.

Groupe	Temps Point	Tonalité (Hz)		Rigidité (N/m)		Élasticité
		Repos	Passif Étirement	Repos	Passif Étirement	Repos	Passif Étirement
AG (n=27)	Référence	18,80±1,81SSB	21,35±1,88s	369,52±58,6 5s	441.00(407. 25 486,75)	1.14±0.16	1,15±0,21
	0 semaine	19.71±1.97	22.13±2.37	394,78±62,0 6	456.00(424. 00,491.50)	1.16±0.11	1,15±0,19
	Semaine 1	18.21±1.52^^	20,67±1,59^	347,56±50,1 6^^	428.00(379. 50 462,25)^	1.08±0.16^	1.07±0.15
	Semaine 2	18.08±1.88^^	20,27±2,20^^	333.81±86.2 2^^	422.00(351. 50 474,75)^	1,04±0,16*^^	1,03±0,13*^^ b
SAG (n=27)	Référence	17.30(15.85, 18.48)	19.80(19.10, 21.17)	327,78±67,8 6	389.00(372. 50,431.50)	1.11±0.13	1. 12(1.01, 1. 21)
	Semaine 1	17.90(16.92, 19.95)	20.90(19.65, 22.08)	357,78±60,4 5	436.00(402. 25 472,50)*	1.12±0.12	1.09(1.02, 1. 14)
	Semaine 2	17.50(16.90, 18.30)	20.00(19.45, 21.95)	342,96±49,0 1	421.00(383. 75,477.50)	1.09±0.14	1.08(0.99, 1. 19)
BCG (n=26)	Référence	17.63±1.66	19.95(18.80, 21.70)	332.50(310. 00,357.00)	416.42±69.2 0	1.09(1.01, 1. 20)	1.10±0.11
	Semaine 1	17,62±1,70	19.85(18.60, 21.50)	324.00(298. 00,354.00)	413,38±65,6 0	1.07(0.97, 1. 13)	1.08±0.13
	Semaine 2	17,85±2,03	19.65(18.30, 20.70)	340.50(312. 00,363.00)	405.19±47.5 8	1.08(1.02, 1. 22)	1.11±0.15
Les données sont présentées en moyenne ± DE (x̄± SD) ou médiane (plage interquartile). AG : Groupe d’acupotomie ; SAG : Groupe d’acupotomie simulée ; BCG : Groupe de contrôle à vigueur. 0 semaine, immédiatement après l’intervention. *P < 0,05 vs. la base au sein du même groupe ; ^P < 0,05, ^^P < 0,01 vs. 0 semaine dans le même groupe ; bP < 0,05 contre le groupe de contrôle vierge au même moment ; sP < 0,05,ss P < 0,01 contre le groupe de l’acupotomie simulée au même moment.

Tableau 4 : Comparaison des valeurs de tension des tissus mous à différentes positions entre les trois groupes avant et après l’intervention. Les données sont présentées en moyenne ± DE (x̄± SD) ou médiane (plage interquartile). AG : Groupe d’acupotomie ; SAG : Groupe d’acupotomie simulée ; BCG : Groupe de contrôle à vigueur. 0 semaine, immédiatement après l’intervention. ^*P < 0,05 vs. la base au sein du même groupe ; ^{^}P < 0,05, ^{^^}P < 0,01 contre 0 semaine dans le même groupe ; ^bP < 0,05 contre le groupe de contrôle vierge au même moment ; ^sP < 0,05,ss P < 0,01 contre le groupe de la fausse acupotomie au même moment.

Problème	Possible Cause	Solution
Signaux SWE instables ou module de cisaillement invalide (valeur G)	Le mouvement des patients ; pression excessive de la sonde ; sonde non parallèle aux fibres musculaires	Demandez au patient de se reposer calmement pendant 10 minutes avant la mesure ; pression de la sonde de contrôle (indentation cutanée < 0,5 cm) ; Alignez la sonde parallèlement aux fibres musculaires du trapèze
Aucune « perte de résistance » lors de la libération de l’acupotomie	La pointe de l’aiguille n’atteint pas la couche fasciale ciblée	Ajuster l’angle de l’aiguille sous guidage en temps réel par échographie ; Reconfirmer la profondeur des fascias superficiels et profonds
Valeurs biomécaniques anormalement élevées sous étirement passif	Angle de flexion latérale de la tête > 45° ; Contraction musculaire volontaire du patient	Contrôler l’angle de flexion à 30°–45° à l’aide d’un goniomètre ; stabiliser l’épaule du patient pour éviter une contraction compensatoire
Visualisation floue des couches fasciales	Paramètres d’échographie non standardisés ; gel de couplage stérile insuffisant	Réinitialisation des réglages d’échographie (17 MHz, THI activé, mise au point à 1,5–2 cm) ; Appliquez un gel de couplage stérile adéquat entre la sonde et le couvercle stérile
Réaction vasovagale (vertiges, pâleur) pendant la procédure	L’anxiété du patient ; repos préopératoire insuffisant	Apporter un réconfort psychologique ; prolonger le repos préopératoire à 15 minutes ; Arrêtez la procédure et placez le patient en position couchée avec les jambes surélevées

Tableau 5 : Table de dépannage.

Discussion

La douleur cervicale est l’un des problèmes de santé les plus courants dans le monde, touchant environ 70 % des individus à un moment donné de leur vie et figurant parmi les quatre principales causes d’années vécues avec un handicap^{11, 12}, et le syndrome de douleur myofasciale par trapèze (MPS) en est un facteur majeur. La libération d’acupotomie, qui intègre acupuncture et techniques peu invasives, offre des avantages de traumatismes minimals et d’une libération efficace des adhérences. Ce protocole établit, pour la première fois, une procédure standardisée qui combine la libération en couches guidée par échographie avec une évaluation biomécanique quantitative en conditions d’étirement au repos et passives. Cette approche transforme le traditionnel « needling aveugle » en une opération visualisable et précise, améliorant ainsi la sécurité et la reproductibilité du traitement par acupotomie.

Dans le groupe acupotomie, les scores de SAV à 1 et 2 semaines après l’intervention étaient significativement réduits (P < 0,001) et supérieurs à ceux des groupes faux acupotomie et témoins blanc, soutenant un effet clinique à court terme d’une libération ciblée d’un fascia épaissi pathologiquement. Le mécanisme analgésique est lié à la libération directe de bandes de tension anormales, à la modulation de la microcirculation locale et du métabolisme énergétique, à la réduction de l’entrée du signal nociceptif, et à l’élévation du seuil de douleur^13,14.

Les comparaisons au sein du groupe ont montré une amélioration durable du module de cisaillement au repos (valeur G), du tonus, de la raideur musculaire et de l’élasticité, tant au repos qu’à l’étirement passif, après l’intervention d’acupotomie. Des études antérieures ont confirmé que la vitesse des ondes de cisaillement (qui reflète la raideur tissulaire) est significativement plus élevée dans les muscles présentant une bande tendue ou un point gâchette, reflétant une restriction mécanique¹⁵, et que la raideur musculaire est généralement accrue dans les douleurs cervicales chroniques et est corrélée au seuil de douleur de pression^16,17. Dans les comparaisons entre groupes, à l’exception d’une élasticité significativement meilleure dans l’état d’étirement passif chez le groupe d’acupotomie à 2 semaines par rapport au groupe témoin blanc (P < 0,05), aucune autre différence significative n’a été trouvée. Cela est principalement attribuable à des déséquilibres de base dans la valeur G, le tonus musculaire, etc., entre les trois groupes, plutôt qu’à une défaillance du protocole. L’élasticité musculaire est une propriété biomécanique importante pour maintenir une fonction et une mobilité^{normales 18}, et l’amélioration observée de l’élasticité à 2 semaines reflète la restauration de la compléance tissulaire. Les changements biomécaniques observés dans cette étude pourraient refléter la libération de la restriction mécanique et la restauration de l’équilibre des unités fascial-musculaire. Pour le dépannage, voir le tableau 5.

Parce que le muscle squelettique est anisotrope et que la vitesse de l’onde de cisaillement varie selon la direction des fibres, un alignement strict sonde-fascicule a été appliqué pour toutes les acquisitions de l’étirement logiciel, notamment lors de l’étirement passif où l’orientation du fascicule peut se déplacer avec la position de la tête ou du cou ; l’alignement était vérifié en mode B avant chaque acquisition, et les cadres avec des fascicules obliques ou des cartes d’élastographie instables étaient exclues. De plus, la cible individualisée du traitement (point sensible et fascia épaissi) et le point de mesure standardisé (GB21) ne coïncidaient pas toujours. Bien que cette conception améliore la reproductibilité entre participants, elle peut limiter la spécificité spatiale pour l’inférence causale ; Par conséquent, les changements biomécaniques observés doivent être interprétés comme des altérations régionales des propriétés du trapèze supérieur plutôt que comme des mesures directes au segment fascial libéré. Les études futures devraient enregistrer systématiquement la distance cible-mesure et comparer les résultats sur les deux sites. Enfin, des différences de base significatives dans les paramètres de l’EDE et de la tension des tissus mous existaient entre les trois groupes. Par conséquent, les comparaisons non ajustées entre groupes étaient considérées comme exploratoires ; Nous nous sommes concentrés sur les changements temporels au sein du groupe et la faisabilité des protocoles. Les différences post-intervention peuvent en partie refléter des disparités préexistantes plutôt que des effets purs du traitement. Les futurs essais confirmatoires devraient appliquer des modèles à effets mixtes ajustés au niveau de base et prendre en compte le regroupement interne des participants dans les cas bilatéraux.

Ce protocole présente certaines limites. Les opérateurs ont besoin de compétences en échographie musculosquelettique et d’une formation standardisée ; l’étirement passif doit être strictement contrôlé pour l’angle et la posture, sinon un biais de mesure peut survenir ; la taille de l’échantillon est relativement petite et le suivi limité à 2 semaines, empêchant l’évaluation de l’efficacité à long terme ; Les déséquilibres de base affectent les comparaisons entre groupes. Les études futures devraient augmenter la taille des échantillons, imposer une correspondance stricte de base, prolonger les périodes de suivi et étendre le modèle d’évaluation SWE à double état à d’autres sites de douleur myofasciale courants tels que l’infraspinatus, le quadratus lumborum et les muscles piriformes.

L’innovation centrale de cette étude est l’utilisation combinée de l’étreinte logicielle et de la palpation numérique dans les états d’étirement au repos et passifs, fournissant des preuves biomécaniques objectives pour la libération de l’acupotomie. L’échographie musculosquelettique peut afficher en temps réel le trajet de la pointe de l’aiguille, évitant les nerfs et les vaisseaux, et guider avec précision l’acupotomie vers le fascia^{malade 19,20}. Ce protocole peut aider à réduire le risque de sécurité d’un ciblage imprécis et de couches tissulaires non claires associées à l’acupotomie aveugle conventionnelle, et est applicable au traitement clinique, à la recherche mécanistique et à la formation technique standardisée.

Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article

Nom	Entreprise	Numéro de catalogue	Commentaires
Adjustable Treatment Bed	Guangdong Qiyunjian Intelligent Technology Co., Ltd.	C401	Pour le positionnement et le soutien du patient pendant la procédure.
Système d'échographie Doppler couleur	Konica Minolta Medical Technology Co., Ltd.	SONIMAGE HS1	Utilisé avec la sonde linéaire à haute fréquence L18-4 pour la guidage en temps réel de la libération par acutomomie.
Aiguille d'acutomomie stérile jetable (0,6 mm × 40 mm)	Ma'anshan Bond Medical Devices Co., Ltd.	CBR	Pour libérer les adhérences fasciales.
Kit de changement de pansement stérile jetable	Beijing Haokang Technology Co., Ltd.	HK-C2	Contient des boules de coton, des pinces, etc.
Gants médicaux stériles jetables	Beijing Ruijing Latex Products Co., Ltd.	Textured, powder-free, curved type	Prévient la contamination croisée entre le praticien et le patient.
Sonde linéaire à haute fréquence L18-4	Konica Minolta Medical Technology Co., Ltd.	L18-4	Pour être utilisée avec le système d'échographie Doppler couleur.
Stylo marqueur cutané médical	Dongguan Tangde Medical Technology Co., Ltd.	Medical skin marker pen	Pour marquer le point de traitement sur la peau.
Gel de couplage pour échographie médicale	Beijing Huarun Kangtai Hi-Tech Development Institute	General type	Médium conducteur entre la sonde d'échographie et la peau.
Dispositif de palpation numérique MyotonPRO	Myoton AS	MyotonPRO	Mesure la tension des tissus mous (tonus, raideur, élasticité).
Système de diagnostic par ultrasons portable	Beijing Xijian Technology Co., Ltd.	T5C1A304W	Pour la mesure par élastographie par ondes de cisaillement (SWE).
Solution désinfectante à la povidone-iode	Shandong Zhuojian Medical Technology Co., Ltd.	Effective iodine content 5 g/L ± 0.25 g/L, 60 mL/bottle	Pour la désinfection cutanée avant l'acutomomie.
Pansement adhésive stérile	Jiangxi Hengbang Medical Devices Co., Ltd.	PKT-PE	Couvre le site de ponction de l'aiguille.
Drap fenestré stérile	Henan Xianghongrui Nursing Supplies Co., Ltd.	XHR-188	Établit un champ opératoire local stérile.