Toutes les procédures animales ont été examinées et approuvées par le Comité de bien-être animal et d’éthique du Collège médical de Nanchang (n° d’approbation NY2SC 20250407). Toutes les expériences ont été menées conformément aux directives institutionnelles concernant le soin et l’utilisation des animaux de laboratoire. Les produits chimiques, réactifs et équipements sont listés dans le tableau des matériaux.
1. Animaux et traitement
Des souris mâles C57BL/6J (de type sauvage, 8 semaines) ont été utilisés dans cette étude. Les animaux étaient hébergés dans des conditions de laboratoire standard avec température et humidité contrôlées et disposaient d’un accès libre à la nourriture et à l’eau. Après acclimatation, une colite chronique a été induite par l’administration de trois cycles de dextran sulfate de sodium (DSS) à 2,5 % dans l’eau potable. Chaque cycle durait une semaine et était séparé par une période de récupération de 2 semaines avec une consommation régulière d’eau. Au cours de la dernière semaine du protocole expérimental, les souris des groupes modèle et de traitement ont reçu le facteur de nécrose tumorale alpha (TNF-α ; 10 μg/100 g de poids corporel, deux fois par jour) par gavage intragastrique afin d’aggraver davantage la lésion du côlon. Les souris témoins normales ont reçu uniquement le véhicule et n’ont pas été exposées au DSS ou au TNF-α.
Les capsules entériques (FSEC) de Sophora flavescens à cinq saveurs étaient utilisées comme médicament breveté chinois commercialement et approuvé. La formulation contenait Sophora flavescens Aiton, Sanguisorba officinalis L., Indigo naturalis, Bletilla striata (Thunb.) Rchb.f., et Glycyrrhiza uralensis Fisch. ex DC. Le contenu des capsules du même lot de production était pesé et suspendu dans de l’eau distillée stérile pour préparer des suspensions de dosage fraîches avant l’administration. Les suspensions étaient soigneusement mélangées avant chaque manche pour assurer une dispersion uniforme. La source du produit, le numéro d’approbation, les spécifications pharmaceutiques et les informations sur le contrôle qualité sont fournies dans le Tableau des matériaux. La qualité du produit a été décrite conformément aux spécifications pharmaceutiques approuvées et aux informations fournies par le fabricant, incluant les spécifications des capsules, l’apparence, les exigences de libération et de désintégration entérique, les exigences de limite microbienne et les normes de contrôle qualité.
Les souris traitées par FSC ont reçu une FSEC à faible dose (108 mg/kg de poids corporel), une FSEC à dose moyenne (216 mg/kg de poids corporel) ou une FSEC à dose élevée (432 mg/kg de poids corporel) par gavage intragastrique deux fois par jour durant la dernière semaine de modélisation. Les niveaux de dose ont été sélectionnés en fonction de la dose clinique approuvée, de la conversion surface-corps et des considérations préliminaires de la gamme de doses. Les souris traitées par véhicule ont reçu le même volume d’eau distillée stérile par gavage intragastrique.
Le groupe témoin positif a reçu l’antagoniste TLR4 CRX-526 à 1 mg/kg par injection dans la veine caudale durant la dernière semaine de modélisation. CRX-526 a été utilisé comme intervention anti-inflammatoire de référence. L’étude comprenait six groupes (n = 6 par groupe) : groupe témoin normal, modèle, FSAC à faible dose, FSAC à dose moyenne, FSAC à dose élevée et groupe témoin positif CRX-526. Les souris ont été sacrifiées 24 heures après le dernier traitement d’étude. L’euthanasie a été réalisée par une luxation cervicale sous anesthésie isoflurane, conformément aux directives institutionnelles pour les soins et l’utilisation des animaux de laboratoire.
2. Évaluation histologique par coloration par hématoxyline et éosine
Les tissus du côlon ont été prélevés dans la région la plus touchée macroscopiquement entre l’anus et la zone iléocécale. Pour chaque souris, un segment représentatif du côlon de cette région était fixé dans du formol tampon neutre à 10 %, intégré dans la paraffine, sectionné et coloré à l’hématoxyline et à l’éosine. Pour l’évaluation histologique, au moins trois sections ont été préparées pour chaque animal, et cinq champs de haute puissance non chevauchants ont été examinés par section. Les champs ont été sélectionnés de manière systématique et aléatoire en balayant la section d’un bord à l’autre, évitant les zones déchirées, pliées ou mal tachées. Les modifications histopathologiques, incluant ulcération muqueuse, destruction glandulaire, congestion et infiltration des cellules inflammatoires, ont été évaluées à la microscopie optique.
3. Mesure des indicateurs biochimiques liés au stress oxydatif
Des échantillons sanguins (0,5 mL) ont été prélevés dans des tubes contenant un anticoagulant et centrifugés à environ 1160 × g pendant 10 minutes à 4 °C. Le surnageant a été collecté et utilisé pour mesurer les niveaux de fer sérique, de dismutase superoxydique (SOD), de glutathion (GSH), de catalase (CAT) et de myélooperoxydase (MPO) à l’aide des kits de test correspondants listés dans le Tableau des matériaux selon les instructions du fabricant.
4. Analyse immunohistochimique de JAK2 et STAT3
Des sections de tissu du côlon incrustées dans la paraffine (5 μm) ont été déparaffinées dans le xylène, réhydratées par une série d’éthanol gradué, puis rincées avec du sérum physiologique tamponné phosphate. La récupération d’antigènes a été réalisée dans un tampon de citrate (pH 6,0) à l’aide de chauffage micro-ondes. Après refroidissement à température ambiante, l’activité endogène de la peroxydase a été bloquée avec 3 % de H₂O₂ pendant 10 minutes. Les sections ont été bloquées avec 5 % de sérum normal de chèvre pendant 30 minutes à température ambiante et incubées toute la nuit à 4 °C avec des anticorps primaires contre JAK2 et STAT3 à des dilutions de 1:50 et 1:80, respectivement. Après des lavages salins tamponnés phosphate, des sections ont été incubées avec un anticorps secondaire conjugué à la peroxydase de raifort selon les instructions du fabricant. Les signaux immunoréactifs ont été visualisés à l’aide de la 3,3′-diaminobenzidine, et les noyaux ont été contre-colorés par de l’hématoxyline. Les coupes ont été déshydratées, montées et examinées au microscope optique.
5. Quantification des cytokines par dosage immunosorbent lié aux enzymes
Les tissus du côlon ont été découpés enmorceaux de 2 à 3 mm, homogénéisés sur de la glace dans du sérum tamponné phosphate, puis centrifugés à 12 000 × g pendant 15 minutes à 4 °C. Le surnageant a été prélevé, et les concentrations de TNF-α, IL-1α et IL-13 ont été mesurées à l’aide des kits ELISA correspondants selon les instructions du fabricant. Les valeurs d’absorbance ont été mesurées à l’aide d’un lecteur de microplaques, et les concentrations de cytokines ont été calculées à partir de courbes standard générées pour chaque essai.
6. Analyse par Western blot des protéines liées à la ferroptose
Les protéines totales ont été extraites des tissus du côlon, et les concentrations de protéines ont été déterminées à l’aide d’un test à base d’acide bicinchoninique. Des quantités égales de protéines provenant de chaque échantillon ont été séparées par SDS-PAGE et transférées sur les membranes. Après un blocage avec 5 % de lait écrémé ou un tampon de blocage équivalent pendant 2 heures à température ambiante, les membranes ont été incubées toute la nuit à 4 °C avec des anticorps primaires contre GPX4, FTH1, ACSL4 et la protéine de contrôle de charge β-actine, comme indiqué dans le tableau des matériaux. Le lendemain, les membranes ont été lavées et incubées avec l’anticorps secondaire conjugué à la peroxydase de raifort pendant 2 heures à température ambiante. Les bandes protéiques ont été visualisées à l’aide d’un substrat chimiluminescent et imagées à l’aide d’un système d’imagerie chimiluminescente. Les intensités de bande ont été quantifiées à l’aide d’un logiciel de densitométrie. Les niveaux d’expression de GPX4, FTH1 et ACSL4 ont été normalisés en β-actine, et l’expression relative des protéines a été calculée pour une analyse statistique.
7. Analyse statistique
Les données sont présentées en moyenne ± écart-type (DS). Des comparaisons entre plusieurs groupes ont été réalisées à l’aide d’une analyse unidirectionnelle de la variance, suivies du test post hoc de Bonferroni lorsque les hypothèses de normalité et d’homogénéité de la variance étaient remplies. Une valeur de P < 0,05 était considérée comme statistiquement significative.