Method Article

Un système microfluidique pour modéliser le dysfonctionnement endothélial sous contrainte physiologique de cisaillement pulsatile combinée et hyperglycémie oscillatoire

DOI:

10.3791/71037

May 12th, 2026

In This Article

Summary

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Ici, nous présentons un protocole pour fabriquer et exploiter un système microfluidique qui expose les cellules endothéliales à une hyperglycémie oscillatoire synchronisée et à une contrainte de cisaillement pulsatile. Cette approche fournit un modèle in vitro physiologiquement pertinent pour étudier le dysfonctionnement endothélial diabétique. Ce protocole permet une mesure quantitative du stress oxydatif et des réponses des cellules endothéliales.

Abstract

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Le dysfonctionnement endothélial dans les complications vasculaires diabétiques implique des interactions complexes entre des troubles métaboliques, en particulier le glucose oscillatoire (OG) et la contrainte de cisaillement pulsatile (PSS). Bien que ces facteurs aient été étudiés isolément, les modèles conventionnels restent limités à un taux statique de glucose élevé ou à un flux laminaire simplifié, manquant de capacité à imiter le couplage spatiotemporal intégré observé dans le vasculaire diabétique. En utilisant une plateforme microfluidique programmable, ce protocole offre une plateforme précieuse pour étudier les effets intégrés de l’hyperglycémie oscillatoire synchronisée et du PSS physiologique sur les cellules endothéliales. Ce protocole vise à modéliser le dysfonctionnement endothélial dans des conditions métaboliques et mécaniques couplées physiologiquement pertinentes. L’utilisation d’une puce polydiméthylsiloxane (PDMS) combinée à un système de contrôle basé sur la pression permet une modulation précise et indépendante des formes d’onde d’écoulement et des profils de concentration de glucose. La fidélité hémodynamique du système est validée par la vélocimétrie par image microparticulaire (Micro-PIV), tandis que la réponse cellulaire est caractérisée quantitativement par la surveillance des niveaux d’espèces réactives intracellulaires d’oxygène (ROS) et de la viabilité cellulaire. Les résultats représentatifs démontrent que le PSS physiologique atténue efficacement la lésion oxydative induite par l’OG. Cet effet est démontré par une réduction des niveaux de ROS intracellulaires et une amélioration de la viabilité cellulaire dans des conditions de stimulation combinées. Selon la question de recherche, des paramètres tels que les schémas de contrainte de cisaillement, les fréquences d’oscillation du glucose et les géométries des canaux peuvent être ajustés. Cette méthode sert d’outil polyvalent pour les études mécanistes des voies mécanobiologiques et le dépistage de médicaments pour les interventions thérapeutiques dans les maladies vasculaires diabétiques.

Introduction

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Le dysfonctionnement endothélial est un événement critique précoce dans le développement des complications vasculaires diabétiques, provoqué à la fois par des troubles métaboliques et des forces hémodynamiquesanormales 1,2. Les niveaux d’OG, plutôt que l’hyperglycémie soutenue seule, sont de plus en plus reconnus comme des inducteurs puissants du stress oxydatif et de la signalisation inflammatoire dans les cellules endothéliales, conduisant à des lésions vasculaires et à une homéostasiealtérée 3,4,5<....

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Protocol

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Déclaration d’éthique :

REMARQUE : Tous les réactifs, dispositifs et logiciels utilisés dans ce protocole sont listés dans le tableau des matériaux.

1. Fabrication de puces microfluidiques

  1. Utilisez un logiciel de conception assistée par ordinateur (CAO) pour concevoir la structure de la puce microfluidique (Largeur x L x H = 2 mm x 30 mm x 0,1 mm, Figure 1A) et fabriquer le moule maître SU-8 via une entreprise commerciale.
  2. Mélangez l’agent de durcissement PDMS et le prépolymère à un ratio de 10:....

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Results

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Validation micro-PIV du champ d’écoulement dans le canal microfluidique
La figure 1D offre un aperçu de la plateforme microfluidique utilisée pour étudier les réponses endothéliales à la stimulation métabolique et mécanique couplée. Le système intègre une puce microfluidique PDMS à canal droit avec un module de contrôle de flux à pression alimenté, permettant l’application de la condition OG ainsi que du PSS physiologique. Une stratégie .......

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Discussion

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Le système microfluidique décrit ici offre une plateforme robuste et physiologiquement pertinente pour étudier les effets intégrés de l’OG et du PSS sur la fonction des cellules endothéliales. L’avantage principal de cette méthode réside dans sa capacité à contrôler et à découpler précisément les stimuli mécaniques et biochimiques au sein d’un microenvironnement défini. Contrairement aux cultures statiques conventionnelles qui ne disposent pas de forces hémodynamiques ou aux modèles anim.......

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Disclosures

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Les auteurs déclarent ne pas avoir de conflit d’intérêts.

Acknowledgements

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Ce travail a été soutenu par la Fondation nationale des sciences naturelles de Chine (numéros de subvention 12372304, 12172081) et les Fonds de recherche fondamentale pour les universités centrales (DUT25YG272).

....

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Materials

List of materials used in this article
NameCompanyCatalog NumberComments
0,25 % de trypsine-EDTANEST Biotechnology Co., Ltd.211052Dissociation cellulaire
Seringue de 1 mLShanghai Zhengbang Medical Science Co., Ltd.1 mLInjecter le liquide
Plat de culture de 60 mmNEST Biotechnology Co., Ltd.705001Culture cellulaire
90°F Connecteur en acier inoxydable inclinéLuoyang Mayer Trading Co., Ltd.1,3 mmDispositif d’étanchéité d’adaptateur
Logiciels AutoCADAutodeskRRID : SCR_014981Logiciels de conception assistée par ordinateur
Bouteille en verre boroniséHunan Aidete Scientific Instruments Co., Ltd.Double passe 100 mLRéservoir
Calcein-AM/PI KitBeyotimeBYT-c2015Coloration
Incubateur cellulaireESCOEsco CelMateCulture cellulaire
CellROX Deep RedInvitrogenC10422Coloration
D-glucoseSigma Aldrich47249Glucose
D-mannitolMacklinM813423Équilibre de la pression osmotique
DynamicStudioDantec DynamicsV8.6Logiciel d’analyse PIV
Sérum fœtal bovin (FBS)Gibco14190-094Moyen
FibronectineSigma AldrichF-2006Adhérence cellulaire
Microparticules fluorescentesThermo ScientificG0100Micro-PIV
Habilet de verreCitotest Scientific Co., Ltd.#1Puce microfluidique
DMEM à taux élevé de glucoseSolarbio12100Moyen
Caméra à grande vitesseDantec DynamicsFlowSense EOMicro-PIV
ImageJNIHRRID : SCR_003070Logiciels de traitement d’image
Microscope à fluorescence inverséeOlympeIX73Viabilité cellulaire
Microscope à fluorescence inverséeOlympeIX83Observation et acquisition
DMEM à faible glucoseSolarbio31600Moyen
OrigineOriginLabRRID : SCR_014212Logiciels d’analyse et de graphisme des données
PDMSDow Inc.184Puce microfluidique
Pénicilline/streptomycine (P/S)NEST Biotechnology Co., Ltd.211092Moyen
Solution tampon phosphate (PBS)NEST Biotechnology Co., Ltd.211031Culture cellulaire
Nettoyeur plasmaJiarun Wanfeng Technology Co., Ltd.PC-6DPuce microfluidique
Système de contrôle de pression programmableElvesysOB1 MK4Contrôle de débit
Tube en siliconeNankin Runze Fluid Control Equipment Co., Ltd.964101mm*3mm
Moule maître SU-8Boao Biology Group Co. Ltd.N/APuce microfluidique
Contrôleur de vannesElvesysMUX Wire V3Contrôle de débit

References

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  1. Zhang, H., Dellsperger, K. C., Zhang, C. The link between metabolic abnormalities and endothelial dysfunction in type 2 diabetes: An update. Basic Research in Cardiology. 107 (1), 237(2011).
  2. Yang, D. R., Wang, M. Y., Zhang, C. L., Wang, Y.

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Endothelial DysfunctionMicrofluidic SystemPulsatile Shear StressOscillatory HyperglycemiaDiabetic Vascular DiseasePolydimethylsiloxane ChipPressure Driven ControlMicro Particle Image VelocimetryReactive Oxygen SpeciesCell Viability
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