Conception de l’étude et considérations éthiques
Cette étude a été examinée par le Comité d’éthique de l’Hôpital stomatologique affilié de l’Université médicale de l’Anhui et a été jugée ne nécessitant pas d’approbation éthique formelle, car elle ne concernait que le retraitement des instruments médicaux et n’incluait pas d’interaction avec les patients ni de données identifiables. L’étude a été menée conformément aux directives institutionnelles et aux réglementations pertinentes. En conséquence, l’exigence de consentement éclairé a été levée.
De juillet à décembre 2024, un total de 200 ensembles d’instruments d’implants dentaires ont été récupérés au Centre de Fourniture de Désinfection de l’Hôpital Stomatologique Affilié de l’Université Médicale de l’Anhui. Ces groupes étaient divisés aléatoirement en deux groupes à l’aide d’un tableau de nombres aléatoires : le groupe témoin (nettoyage manuel traditionnel) et le groupe expérimental (prétraitement manuel combiné à un dispositif de nettoyage à pression négative), avec 100 ensembles d’instruments dans chaque groupe.
Cette étude a été conçue comme une étude comparative prospective et randomisée menée dans des conditions opérationnelles de routine du Central Sterile Supply Department (CSSD). Des ensembles d’instruments pour implants dentaires (généralement composés de perceuses implantaires, manchons guides, pilotes d’implant, clés dynamométriques et accessoires chirurgicaux associés ; la composition variait selon les exigences cliniques), y compris des variations de la géométrie de l’instrument telles que des surfaces lisses, des composants articulés et des lumières étroites pouvant influencer la difficulté de nettoyage, ont été inclus dans l’étude.
Aléatoire et aveuglement
La randomisation a été réalisée à l’aide d’une table des nombres aléatoires générée par ordinateur afin d’assurer une répartition égale des ensembles d’instruments entre les deux groupes. L’attribution a été effectuée par un membre du personnel désigné non impliqué dans l’évaluation des résultats. Les évaluations de qualité du nettoyage ont été réalisées par du personnel formé, aveuglé à l’affectation de groupe (les évaluateurs étaient indépendants des procédures de nettoyage et n’étaient pas impliqués dans l’allocation des groupes). Les ensembles d’instruments étaient codés avant l’évaluation pour garantir l’aveuglement, et toutes les évaluations étaient réalisées dans des conditions standardisées selon des critères d’évaluation prédéfinis.
Équipements et procédures de nettoyage
Un poste de nettoyage manuel (incluant le réservoir de lavage, le réservoir enzymatique, le réservoir de rinçage et le réservoir final), une machine de nettoyage ultrasonique (fréquence : 40 kHz ; température : 40–45 °C), un dispositif de nettoyage et de désinfection à pression négative (niveau de vide : -0,08 à -0,095 MPa ; température de fonctionnement : 48–62 °C ; fréquence ultrasonique : 40 kHz ; durée du cycle : 58 min ; mode de nettoyage par impulsions activé), une machine à ébullition (93 °C ± 1 °C), une armoire de séchage (70–80 °C), un ensemble de pistolets à vapeur à pression avec dispositifs auxiliaires, trois pistolets à eau haute pression (pression : 0,2–0,3 MPa) et trois minuteurs numériques calibrés. Le dispositif de nettoyage et de désinfection sous pression négative fonctionne selon des principes de nettoyage assisté par vide, améliorant la pénétration des fluides, la cavitation ultrasonique et le rinçage par impulsions pour améliorer l’élimination des contaminants.
Toutes les procédures de nettoyage ont été réalisées par du personnel formé du CSSD avec ≥ 2 ans d’expérience, suivant les protocoles institutionnels afin de minimiser la variabilité dépendante de l’opérateur et d’assurer une exécution cohérente entre les procédures.
Méthode de nettoyage pour le groupe de contrôle
Les ensembles d’instruments implantés récupérés ont d’abord été catégorisés et démontés en leurs plus petits composants, suivis d’un rinçage sous l’eau courante pendant 2 à 3 minutes (débit ~2 L·min-1) pour éliminer les contaminants visibles. Toutes les étapes de nettoyage manuel étaient effectuées selon des procédures opérationnelles standardisées par du personnel formé afin d’assurer la cohérence entre les opérateurs. Les instruments étaient ensuite brossés manuellement à l’aide d’une brosse en nylon doux (diamètre 2 à 5 mm selon la taille du lumen) pour enlever les débris résiduels comme les taches de sang et la rouille. Cela a été suivi d’une immersion dans une solution nettoyante multi-enzymatiques (3,75 mL·1000 mL-1 ; température : 35–40 °C) et d’un brossage pendant 6 minutes (chronométré à l’aide d’un minuteur calibré). Le nettoyage enzymatique était suivi d’un rinçage intensif à l’aide d’un pistolet à eau haute pression (0,2–0,3 MPa ; 2–3 min) pour éliminer les résidus chimiques. Un dernier rinçage à l’eau purifiée a été effectué pendant ≥ 1 minute. Cela a été suivi d’une désinfection à la chaleur humide à 93 °C pendant 2,5 minutes. Enfin, les instruments étaient séchés dans un meuble de séchage (70–80 °C) et transférés dans la zone d’inspection et d’emballage.
Méthode de nettoyage pour le groupe expérimental
Les ensembles d’implants récupérés ont d’abord été catégorisés et démontés en leurs plus petits composants et rincés sous l’eau courante (2 à 3 minutes) pour éliminer les contaminants visibles. Les instruments ont ensuite été soumis à un nettoyage primaire à l’aide d’un dispositif de nettoyage et de désinfection à pression négative pendant 58 minutes, basé sur la cavitation assistée par vide, le rinçage pulsé et les mécanismes de perfusion afin d’améliorer le nettoyage des lumens internes et des géométries complexes (cycle standardisé incluant le nettoyage ultrasonore sous vide, le rinçage par impulsion, la perfusion sous vide et le séchage sous vide). Les paramètres opérationnels étaient les suivants : niveau de vide : -0,08 à -0,095 MPa ; Température : 48–62 °C, et fréquence ultrasonique : 40 kHz, qui ont été sélectionnés pour optimiser l’intensité de cavitation, la pénétration du fluide et l’efficacité d’élimination des contaminants sous pression réduite. Les instruments qui ne respectaient pas les normes de propreté requises après le cycle initial subissaient un nettoyage secondaire utilisant la même procédure de nettoyage et de désinfection à pression négative, suivie d’une inspection de routine. Si les instruments ne respectaient toujours pas les normes de qualification après un nettoyage secondaire, un cycle de nettoyage tertiaire était effectué selon la même méthode, et ce processus était répété jusqu’à ce que tous les instruments respectent les normes de qualité établies, assurant une performance de nettoyage cohérente sur plusieurs cycles sous des conditions contrôlées à pression assistée.
Indicateurs d’observation
L’indicateur d’efficacité de nettoyage est le temps de nettoyage mesuré en minutes à l’aide de minuteurs numériques calibrés et enregistré pour chaque étape de nettoyage, y compris le temps de nettoyage manuel pour le premier nettoyage, le temps de nettoyage total pour le premier nettoyage, le temps de nettoyage manuel pour le nettoyage secondaire, le temps de nettoyage manuel pour le nettoyage entièrement qualifié, et le temps total de nettoyage pour un nettoyage entièrement qualifié.
Le temps de nettoyage était enregistré à l’aide de minuteurs numériques calibrés. Le temps de nettoyage manuel était défini comme la durée allant du début de la manipulation manuelle à l’achèvement des étapes de nettoyage manuel. Le temps total de nettoyage était défini comme la durée du rinçage initial jusqu’à la fin du séchage. Pour les instruments nécessitant des cycles de nettoyage répétés, le temps était enregistré cumulativement jusqu’à ce que les critères de qualification soient atteints.
La qualité du nettoyage a été évaluée à l’aide d’observations visuelles, de détection de lentilles à grossissement quintuplé, de tests sanguins résiduels et de tests de fluorescence ATP à l’aide de seuils prédéfinis et standardisés pour l’évaluation de la propreté afin d’assurer une évaluation objective etreproductible 15. Les indicateurs de qualité du nettoyage sont le taux de qualification exprimé en pourcentages d’ensembles d’instruments répondant à des critères prédéfinis, y compris le taux de qualification pour le premier nettoyage et le taux de qualification pour le nettoyage secondaire. L’observation visuelle est réalisée à l’aide d’une loupe lumineuse pour vérifier la présence de taches de sang visibles, de saleté, de tartes d’eau et de rouille à la surface des instruments ; ceux qui ne possèdent pas de tels contaminants visibles sont considérés comme qualifiés. Les instruments étaient inspectés dans des conditions d’éclairage standardisées (≥ 1000 lux (mesurées à l’aide d’un luxomètre calibré pour garantir des conditions d’inspection standardisées)) à une distance d’environ 30 cm. Les tests de fluorescence ATP étaient réalisés par prélèvement de surfaces et de lumières prédéfinies de l’instrument, suivis d’une mesure à l’aide d’un luminomètre ATP. Les résultats ont été obtenus en moins de 30 s, et les valeurs ≤ 45 RLU ont été considérées comme qualifiées.
La qualification complète a été définie comme un instrument passant simultanément les quatre méthodes d’évaluation : observation visuelle, observation visuelle à 5× grossissement, détection de sang résiduel et détection de fluorescence d’ATP. Les instruments ne répondant pas à l’un de ces critères étaient classés comme non entièrement qualifiés.
Définitions et descriptions de diverses méthodes d’observation
Observation visuelle : L’inspection visuelle a été réalisée à l’œil nu pour détecter des contaminants visibles tels que des taches de sang, de la saleté, des tartes d’eau et de la rouille sur les surfacesdes instruments 16.
L’inspection a été réalisée à l’aide d’une loupe 5× afin de détecter de petits contaminants sur les surfaces des instruments et à l’intérieur des lumens17.
Pour la méthode de détection du sang résiduel, un prélèvement stérile a été utilisé pour prélever la surface de l’instrument (~2 cm2), suivi de l’application de la solution de détection selon les instructions du fabricant. Un changement de couleur dans les 30 s était considéré comme un résultat positif, tandis que l’absence de changement de couleur était qualifié.
Un écouvillon stérile a été appliqué sur les surfaces et lumens prédéfinis des instruments, puis inséré dans un détecteur ATP pour mesurer les unités lumineuses relatives (RLU)18. Cette méthode évalue l’efficacité du nettoyage en mesurant la teneur en ATP, car toutes les cellules vivantes contiennent une quantité constante d’ATP, et l’ATP est libéré lorsque les cellules bactériennes lysent19,20. Une valeur RLU ≤ 45 était considérée commequalifiée 21.
Points de contrôle des processus
Après chaque cycle de nettoyage, les instruments étaient évalués à l’aide de méthodes visuelles et instrumentales. Les instruments ne respectant aucun critère étaient soumis à des cycles de nettoyage ultérieurs jusqu’à ce que les normes de qualification soient atteintes.
Considération de la reproductibilité
Toutes les procédures ont été menées dans des conditions CSSD contrôlées à l’aide de flux de travail standardisés et de paramètres d’équipement prédéfinis afin d’assurer la reproductibilité à travers des essais répétés, y compris la minimisation de la variation dépendante de l’opérateur grâce à une formation standardisée et au respect des protocoles.
Considérations de sécurité
Tous les instruments contaminés ont été manipulés à l’aide d’un équipement de protection individuelle approprié, y compris des gants, des masques et des lunettes de protection. Des procédures de rinçage à haute pression ont été réalisées avec une protection contre les éclaboussures afin de minimiser l’exposition au travail.
Élimination des déchets
Les solutions de nettoyage utilisées et les matériaux contaminés ont été éliminés conformément aux protocoles institutionnels de gestion des déchets biomédicaux et aux exigences réglementaires locales.
Méthodes statistiques
L’analyse statistique des données a été réalisée à l’aide du logiciel SPSS. Les données catégorielles ont été exprimées en fréquence et en ratio de composition ( %), et des comparaisons de groupes ont été réalisées à l’aide du test χ2 ou du test de probabilité exacte de Fisher. Les données continues ont été exprimées en moyenne ± écart-type (x̄ ± s), et des comparaisons de groupes ont été effectuées à l’aide de tests t d’échantillon indépendant (après confirmation de la normalité de la distribution des données à l’aide du test de Shapiro–Wilk). L’homogénéité de la variance a été évaluée à l’aide du test de Levene avant l’application du test t. Le niveau de signification a été fixé à α = 0,05, avec des tests à deux volets. Une valeur p < 0,05 a été considérée comme statistiquement significative. Tous les matériaux et équipements utilisés dans cette étude sont listés dans le tableau des matériaux.