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Article de méthode

Hydrodissection guidée par échographie et rééducation intégrée pour l’emprisonnement post-chirurgical du nerf péronier commun

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DOI :

10.3791/71088

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12 mai 2026

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1Wenzhou TCM Hospital of Zhejiang Chinese Medical University

Dans cet article

Résumé

Cet article démontre l’hydrodissection guidée par échographie et un programme de rééducation structuré et axé sur la tâche pour l’enfermement du nerf péronien commun post-chirurgical.

Résumé

L’enfermement postopératoire du nerf péronien commun (NPC) est une cause iatrogène fréquente de chute du pied, et un protocole de rééducation établi fait actuellement défaut. Cet article propose une démonstration visuelle étape par étape d’une approche intégrée, combinant hydrodissection guidée par ultrasons avec une rééducation structurée axée sur la tâche. Le protocole comprend : (1) l’identification par échographie en temps réel de l’enfermement du NPC ; (2) hydrodissection en plan multi-quadrants utilisant un injecté à 5 % de dextrose, lidocaïne et mécobalamine ; et (3) un programme de rééducation par phases initié 24 heures après la procédure, comprenant le glissement neuronal, l’échographie thérapeutique, la stimulation électrique neuromusculaire et cinq modules de formation axés sur la tâche. Dans le cas représentatif, l’angle jambe-pied lors de l’effort maximal de dorsiflexion a montré une réduction de 38° (de 142° à 104°), et l’analyse de la foule a montré la restauration de l’écart talon-frappe, de la poussée et du swing pour les pieds. L’EMG post-intervention a révélé des potentiels de réinnervation dans le tibial antérieur, le péroné long et l’extenseur hallucis longus. Ce protocole visualement formaté par étapes démontre la faisabilité de combiner la décompression nerveuse percutanée avec la rééducation spécifique à la tâche, offrant un cadre reproductible pour gérer l’enfermement postopératoire réfractaire du NPC.

Introduction

Le dysfonctionnement postopératoire du nerf péronien commun (NPC) est une cause importante de morbidité. Alors que la lésion intraopératoire directe (par exemple, due à une luxation du genou ou à une fracture du filou) est une étiologie bienreconnue 1,2, un mécanisme plus insidieux et souvent négligé est le retard de l’emprisonnement par le tissu cicatriciel fibrosiquepostopératoire 2. Contrairement aux lésions structurelles aiguës, ces cicatrices se forment progressivement, créant une barrière de compression chronique autour du nerf. Cette compression non seulement ancre mécaniquement le nerf, gênant le transport axonal, mais compromet également gravement son apport sanguin microvasculaire, entraînant des lésions ischémiques qui aggravent encore les dysfonctionnementsneuronaux 2. Par conséquent, les patients développent une chute du pied, des anomalies de la marche et des déficitssensoriels 3,4, ce qui altère gravement la mobilité et la qualité de vie.

La prise en main conventionnelle s’est largement appuyée sur des mesures conservatrices et des exercices de rééducation visant à préserver la mobilité articulaire, retarder l’atrophie musculaire et soutenir la récupérationneuronale 5. Cependant, lorsque le nerf est densément enfermé dans du tissu cicatriciel, cette approche fonctionnelle principalement « en aval » atteint souvent un plateau thérapeutique car elle ne traite pas la barrière physique posée par la cicatrisationpérineuronale 4. Inversement, la neurolyse chirurgicale ouverte, bien qu’elle traite directement l’emprisonnement, est invasive, comporte des risques de saignement et de formation de nouvelles cicatrices, et est souvent considérée avec prudence — en particulier chez les jeunes personnes actives pour qui la restauration fonctionnelle estprimordiale 6. Ainsi, une technique mini-invasive qui libère efficacement le nerf des adhérences tout en évitant la morbidité de la chirurgie ouverte est nécessaire.

Les techniques percutanées guidées par échographie ont récemment transformé le diagnostic et la prise en charge des troubles des nerfs périphériques. Parmi ces techniques, l’hydrodissection guidée par ultrasons est une intervention mini-invasive qui utilise l’échographie en temps réel pour positionner une aiguille à l’interface nerf-adhésion. La pression hydrostatique du fluide injecté sépare ensuite mécaniquement les adhérences pour soulager la compression, offrant une alternative visualisable, moins traumatisante et reproductible àla chirurgie 7,8,9. Bien que l’hydrodissection traite efficacement la composante mécanique de l’emprisonnement, elle ne rétablit pas, à elle seule, la fonction motrice coordonnée ni ne réentraîne les voies neuromotrices compromises par la compression chronique. La récupération neuronale après la décompression nécessite non seulement la suppression de la barrière physique, mais aussi une rééducation neuromusculaire systématique pour traduire la continuité neuronale restaurée en mouvement fonctionnel. Par conséquent, associer la décompression mécanique à un programme de rééducation structuré et spécifique à chaque tâche est essentiel pour obtenir une récupération fonctionnelle significative.

Ce protocole illustratif démontre visuellement : (1) l’identification en temps réel du NPC et des adhérences périneuronales ; (2) positionnement de l’aiguille dans le plan et hydrodissection multi-quadrants ; et (3) un protocole de rééducation par phases qui commence 24 heures après la procédure. En intégrant ces deux composantes complémentaires — décompression percutanée et réentraînement neuromoteur ciblé — ce flux de travail aborde à la fois les dimensions structurelle et fonctionnelle de la récupération, offrant une approche globale avantageuse par rapport à chacune des interventions seules. Chaque étape est présentée sous un format numéroté et guidé visuellement afin de soutenir la réplication par des cliniciens ayant une expérience de base en échographie musculosquelettique.

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Protocole

Toutes les procédures ont été réalisées conformément aux normes éthiques du comité de recherche institutionnel et avec le consentement informé par le patient. Ce protocole a été approuvé par le Comité d’éthique de l’Hôpital MTC de Wenzhou de l’Université médicale chinoise du Zhejiang (Numéro d’approbation : WZY2025-LW-068-02).

1. Hydrodissection guidée par échographie pour l’enfermement du NPC

REMARQUE : Dans cette démonstration, une seule session a été réalisée. L’intervention répétée, si envisagée, doit être basée sur des déficits fonctionnels persistants ou des preuves échographiques d’un emprisonnement résiduel, avec la fréquence et le nombre total individualisés ; Des critères fondés sur des preuves restent à établir.

  1. Préparation des matériaux et équipements
    1. Préparez un appareil d’échographie équipé d’un transducteur à matrice linéaire haute fréquence (par exemple, 10–15 MHz) et d’une capacité Doppler couleur.
    2. Ajustez les réglages initiaux de l’échographie : réglez la profondeur à 3–4 cm pour englober la zone cible ; Ajustez le gain pour distinguer clairement les fascicules nerveux hyperéchoïques du fond musculaire hypoéchoïque.
    3. Préparez une aiguille de 22 g ou 25 G, une aiguille de 50 à 80 mm (une aiguille à bloc nerveux à pointe émoussée) et une seringue de 10 mL.
    4. En conditions aseptiques, injectez 1 mL de dextrose à 50 %, 1 mL de lidocaïne à 2 %, 1 mL de mécobalamine (500 μg/mL) et 7 mL de chlorure de sodium à 0,9 % dans la seringue pour préparer une solution de 10 mL.
      REMARQUE : La concentration finale de dextrose est de 5 %.
    5. Préparez d’autres articles stériles : gel à ultrasons, désinfectants cutanés (par exemple, povidone-iode), un cache-sonde stérile, gants stériles et gaze stérile.
  2. Demandez au patient de s’allonger sur le ventre, la jambe ipsilatérale exposée. Faites en sorte que l’opérateur se place du côté ipsilatéral du patient, face à l’écran d’échographie. Placez un petit oreiller sous la cheville ipsilatérale pour maintenir le genou en pleine extension et la cheville au neutre. Palper et marquer le pli poplité, la tête fibulaire et le condyle fémoral latéral avant la pose de la sonde.
  3. Identification nerveuse et localisation du site d’emprisonnement
    1. Appliquez une quantité généreuse de gel de couplage sur la peau au-dessus de la fosse poplitée. Tenir le transducteur linéaire avec une prise ferme et stable, en l’orientant transversalement (perpendiculaire à l’axe long du membre). Placez le transducteur transversalement sur la fosse poplitée, en l’alignant avec le pli poplité. Identifiez les vaisseaux poplités, puis localisez le nerf sciatique juste à côté de ces vaisseaux.
    2. Faites glisser la sonde distalement (vers le pied) tout en maintenant une orientation transversale pour suivre le nerf sciatique jusqu’à sa bifurcation dans les nerfs tibiaux et les nerfs péroniers communs. Maintenez une pression légère constante pour éviter de comprimer les structures sous-jacentes.
      REMARQUE : Le site de bifurcation présente une apparence caractéristique de « double faisceau » où deux structures ovales hyperéchoïques se séparent. Le fibré situé latéralement est le CPN (Figure 1).
    3. Continuez à faire glisser la sonde distalement jusqu’au niveau juste inférieur à la tête fibulaire pour identifier où le CPN se bifurque généralement en nerfs péroniers superficiels et profonds.
    4. Scannez soigneusement le long du parcours du nerf identifié en traduisant lentement le transducteur de proximal vers distalement tout en maintenant un plan transversal. Rechercher des signes d’enfermement, notamment le gonflement du nerf focal, l’hypoéchogénicité régionale et la perte de la démarcation nette par rapport au tissu cicatriciel environnant. Faites tourner le transducteur dans un plan longitudinal si nécessaire pour évaluer le parcours nerveux et confirmer le niveau de compression maximale. Pour une approche standardisée de l’évaluation échographie du genou, consultez un rapport précédent10.
  4. Établissement stérile du champ et planification des chemins d’aiguille
    1. Effectuer une désinfection cutanée standard de la zone procédurale à l’aide de povidone-iode ou de chlorhexidine en cercles concentriques du centre vers l’extérieur. Appliquez des rideaux stériles pour établir un champ stérile, en ne laissant exposé que le site d’entrée de la peau ciblé.
    2. Couvrez le transducteur à ultrasons d’un couvercle stérile pour sonde, en veillant à ne pas laisser de bulles d’air entre la housse et le visage du transducteur. Appliquez un gel stérile sur la surface de la sonde.
    3. Sous guidage par échographie en temps réel, centrez le nerf cible sur l’écran. Activez le mode Doppler couleur et balayez le transducteur pour identifier et marquer la localisation de tout vaisseau adjacent (par exemple, artère poplitée, artère geniculaire latérale supérieure) afin d’éviter une lésion vasculaire causée par l’aiguille.
    4. Planifiez une trajectoire sûre de l’aiguille dans le plan. En utilisant le transducteur comme référence, déterminez le point d’entrée de la peau de manière à ce que le trajet de l’aiguille évite les structures neurovasculaires. Une approche latérale (entrant par le côté latéral de la jambe, avec l’aiguille dirigée médialement vers le nerf) est généralement préférée pour le CPN au niveau du cou fibulaire, tandis qu’une approche médiale peut être utilisée pour le site de bifurcation. Marquez le point d’entrée prévu avec un marqueur stérile.
    5. Avant la perforation cutanée, effectuez une évaluation finale en temps réel en balançant doucement le transducteur proximalement et distalement afin de confirmer que la trajectoire choisie reste dégagée des vaisseaux et s’aligne avec l’axe long du nerf. Si le nerf est obstrué par du tissu cicatriciel supérieur ou si la trajectoire prévue ne peut être maintenue dans le plan d’imagerie, ajustez en conséquence le point d’entrée de la peau ou l’angle d’approche avant de poursuivre.
  5. Insertion d’aiguille et guidage en temps réel
    1. Tenez l’aiguille avec la main dominante à l’aide d’une prise crayon pour un contrôle précis. Tenez le transducteur avec la main non dominante, en maintenant une pression faible et constante. Utiliser l’aspect hypothénaire ou la bordure ulnaire de la main non dominante pour stabiliser doucement la peau adjacente au site d’entrée prévu, réduisant ainsi la mobilité tissulaire lors de l’insertion de l’aiguille.
    2. Sous une visualisation continue par ultrasons, avancez lentement l’aiguille le long de la trajectoire prévue en utilisant de courts mouvements contrôlés et par étapes. Gardez l’aiguille parallèle à l’axe du transducteur pour maintenir l’arbre entier dans le plan d’imagerie.
    3. Assurez-vous que toute la tige de l’aiguille, en particulier la pointe, reste en permanence dans le plan d’imagerie par ultrasons. Utilisez des ajustements subtils du poignet pour rediriger l’aiguille si elle dévie du plan. Si la pointe de l’aiguille devient obscurcie ou dévie du plan d’imagerie, arrêtez l’avancement, effectuez une légère rotation du poignet pour réaligner l’aiguille avec l’axe du transducteur, puis réacception de la pointe avant de continuer.
    4. Guidez précisément la pointe de l’aiguille vers la cible : l’interface entre l’épineurium du nerf hyperéchoïque et le tissu hypoéchoïque adjacent qui emprisonne.
      REMARQUE : La pointe doit être placée immédiatement à côté du nerf, et non à l’intérieur de celui-ci.
    5. Confirmez que la position finale de la pointe de l’aiguille est adjacente, mais pas à l’intérieur de la substance nerveuse, en faisant pivoter le transducteur légèrement proximalement et distalement pour visualiser la pointe dans plusieurs plans.
      ATTENTION : Évitez l’injection intraneuronale. Si le patient signale une paresthésie ou une douleur aiguë lors de l’avancement de l’aiguille, retirez légèrement l’aiguille et redirigez-la.
  6. Exécution par hydrodissection
    1. Sous guidage continu en temps réel par échographie, injectez lentement 0,5 à 1,0 mL de la solution préparée. Exercez une pression régulière et douce sur le déboucheur de la seringue. Observez la formation et l’expansion en temps réel d’une poche de liquide anéchoïque à l’extrémité de l’aiguille. Si la poche de liquide se dilate de façon asymétrique ou s’éloigne de l’interface nerf-épineurium au lieu de séparer le nerf des adhérences, interrompez l’injection, réévaluez la position de la pointe de l’aiguille et redirigez doucement la pointe vers l’interface cible avant de reprendre.
      REMARQUE : L’hydrodissection initiale réussie est indiquée par la formation et l’expansion en temps réel d’une poche de liquide anéchoïque à l’extrémité de l’aiguille, commençant à séparer la bordure hyperéchoïque du nerf du tissu adhérent (Figure 2).
    2. Aspirez toujours avant l’injection pour confirmer l’absence de sang et éviter une pose intravasculaire.
      ATTENTION : Arrêtez immédiatement l’injection si une résistance soudaine et significative est rencontrée ou si le patient signale une douleur sévère ou irradiante. Dans ces cas, retirez légèrement l’aiguille et réévaluez la position de la pointe.
    3. Pour obtenir une libération nerveuse circonférentielle, retirez légèrement l’aiguille de 1 à 2 mm et réorientez l’angle de la pointe. Pour repositionner la pointe de l’aiguille dans un nouveau quadrant, retirez partiellement l’aiguille jusqu’à ce que la pointe soit juste à l’extérieur de l’interface épinéure-adhérence (environ 1 à 2 mm proximal du site d’injection initiale). En utilisant une supination ou une pronation subtile du poignet pour modifier l’angle de trajectoire tout en maintenant l’aiguille dans le plan d’imagerie, avancez la pointe vers le quadrant désiré (par exemple, antérieur, postérieur, médian ou latéral) sous une visualisation continue. Injectez une aliquote supplémentaire de 0,5 à 1,0 mL à ce nouvel emplacement.
    4. Répétez le processus de repositionnement et d’injection de l’aiguille décrit à l’étape 1.6.3 pendant 2 à 4 cycles pour couvrir différents quadrants autour du nerf (par exemple, antérieur, postérieur, médial, latéral) ; Cette gamme est basée sur l’expérience procédurale des auteurs plutôt que sur une norme thérapeutique validée. Le volume total d’injection varie généralement de 3 à 6 mL.
      REMARQUE : Si une résistance significative est rencontrée lors de l’injection initiale en raison d’un tissu cicatriciel dense, retirez légèrement l’aiguille pour créer une poche de liquide « pilote » superficielle dans un plan tissulaire plus accessible. Cela crée un espace de travail hydraulique facilitant l’avancement ultérieur de l’aiguille et la dissection plus profonde.
    5. Pour suivre ce protocole, continuez l’injection quadrantale jusqu’à ce que l’imagerie par ultrasons démontre la séparation médiée par liquide de > ; 50 % de la circonférence du nerf provient du tissu adhésif environnant. Faites légèrement pivoter le transducteur pour visualiser le nerf dans les plans transverse et longitudinal afin de confirmer la libération circonférentielle.
      REMARQUE : Ce critère de séparation médié par fluide est basé sur l’expérience procédurale des auteurs et est destiné à servir de guide intraprocédural pratique plutôt qu’à un critère thérapeutique fondé sur des preuves.
  7. Gestion post-procédure
    1. Une fois terminé, retirez doucement l’aiguille tout en appliquant une contre-pression délicate avec la main non dominante pour stabiliser les tissus. Appliquez une pression brève et légère sur le site d’insertion avec une gaze stérile pendant 30 à 60 secondes pour obtenir une hémostasie.
    2. Effectuez un dernier balayage échographique de la zone traitée. Scannez le nerf du proximal au distal, dans les plans transverse et longitudinal. Confirmez l’étendue de la séparation nerveuse et écartez toute complication immédiate liée à la procédure, comme des saignements actifs ou la formation d’hématomes.

2. Protocole de réhabilitation post-hydrodissection

REMARQUE : La réhabilitation de la deuxième phase commence 24 heures après la procédure d’hydrodissection. Son objectif principal est d’utiliser la voie neuronale restaurée pour réaliser un remodelage fonctionnel.

  1. Gliding neuronal (mobilisation neurodynamique)
    CONTRE-INDICATIONS : Effectuez cette manœuvre uniquement en l’absence d’inflammation nerveuse aiguë, de rupture nerveuse suspectée, de malignité locale ou d’instabilité sévère (par exemple, fracture aiguë).
    PRÉCAUTIONS : Faites preuve de prudence chez les patients atteints de neuropathie périphérique sévère ou après une réparation nerveuse récente.
    ATTENTION : Interrompez immédiatement la manœuvre si elle se reproduit ou aggrave la douleur radiculaire du patient ou une douleur neurogène aiguë et lancinante.
    1. Positionnez le patient sur position couchée avec le membre inférieur affecté face à l’opérateur. La jambe controlatérale reste détendue, et la cuisse distale est soutenue sur une surface stable. Le genou est fléchi à 20–30°, et la cheville est maintenue en position neutre.
    2. Exécutez la technique comme suit :
      1. Tension : stabiliser le pied du patient. Effectuez lentement la dorsiflexion passive de la cheville avec inversion jusqu’à ce qu’une légère sensation d’étirement neural (et non de douleur) soit ressentie.
      2. Glissée : Tout en maintenant la position de la cheville, fléchissez rythmiquement le genou à 60–70° puis revenez à 20–30°. Cela constitue un seul cycle.
      3. Dosage : Effectuez 10 à 15 cycles. Ramenez brièvement la cheville en position neutre entre les cycles.
  2. Modalités physiques
    1. Appliquer une échographie thérapeutique après une hydrodissection pour améliorer la perfusion microvasculaire locale et réduire l’œdème périneural, ce qui pourrait prolonger l’effet de décompression mécanique en limitant la réadhérence précoce et en soutenant la récupération du microenvironnement neural.
      1. Appliquez un gel de couplage ultrasonore uniformément sur la peau de la zone traitée, couvrant le parcours du NPC depuis la fosse poplitée jusqu’au bord inférieur du col fibulaire.
      2. Réglez le transducteur à ultrasons à une fréquence de 1 MHz, une intensité de 0,5 à 0,8 W/cm2, et fonctionnez en mode pulsé avec un cycle de travail de 20 à 25 % (par exemple, un rapport impulsion de 1:4).
        ATTENTION : Évitez d’utiliser le mode continu sur les nerfs superficiels pour prévenir les blessures thermiques.
      3. Déplacez la tête sonore en mouvements circulaires lents et continus sur la zone à une vitesse d’environ 4 cm/s pendant 8 minutes.
    2. Stimulation électrique neuromusculaire (NMES)
      1. Placez deux électrodes de traitement (d’environ 5 × 5 cm chacune) longitudinalement sur le ventre du muscle tibial antérieur. Placez l’électrode de référence sur le dos du pied.
      2. Réglez le stimulateur pour délivrer une forme d’onde carrée biphasique à 20–25 Hz, avec une largeur d’impulsion de 200–250 μs, et un rapport marche :arrêt de 1:3 à 1:5. Augmentez l’amplitude pour provoquer une contraction de dorsiflexion modérée à forte et indolore. Stimulez pendant 15 à 20 minutes.
        REMARQUE : Ce protocole vise à maintenir la masse musculaire et l’excitabilité pendant la réinnervation.
        Parmi les composantes de rééducation, la formation orientée vers la tâche représente l’intervention centrale étayée par des preuves.
  3. Formation axée sur la tâche
    1. Entraînement à l’allure talon-orteil
      1. Demandez au patient de marcher d’un bout à l’autre du chemin.
      2. Indiquez verbalement au patient de se concentrer sur deux éléments clés : établir le contact initial au sol avec le talon et générer une poussée forte depuis l’avant-pied lors du dégagement des orteils.
      3. Surveillez et faites signe au patient de maintenir une posture du tronc droit et un regard droit tout au long de la marche.
      4. Critères de progression : Augmenter la difficulté lorsque le patient peut effectuer trois marches consécutives avec le bon schéma. Progressez en accélérant, en marchant sur un tapis à poils bas ou en marchant sur un chemin courbé.
    2. Botté latérale avec contrôle des orteils
      1. Placez un ballon de football souple (taille 4 ou 5) au sol à côté du pied touché. Indiquez au patient de se tenir debout tout en supportant la majeure partie de son poids sur la jambe non affectée.
      2. Faites en sorte que le patient utilise la bordure médiale du pied affecté pour taper doucement la boule sur le côté, en se concentrant sur l’inversion contrôlée de la cheville.
      3. Faites en sorte que le patient utilise la bordure latérale du même pied pour taper la balle en arrière, en se concentrant sur la pose plantaire contrôlée de la cheville.
      4. Critères de progression : progressez en augmentant la force/distance du tapotement, en utilisant une balle plus petite ou partiellement dégonflée, ou en effectuant l’activité alors que le patient est debout sur un tapis en mousse avec la jambe non affectée.
    3. Franchissement d’obstacles en plan plat
      1. Placez une série de blocs de mousse à faible densité (par exemple, 5 cm, 10 cm et 15 cm de hauteur) en ligne au sol, espacés d’environ un pas.
      2. Demandez au patient d’approcher le premier obstacle et de le franchir en utilisant la jambe affectée comme jambe de balançoire.
      3. Indiquez au patient de se concentrer sur le levage de la jambe oscillante avec une flexion adéquate des hanches et des genoux pour franchir l’obstacle sans le toucher.
      4. Insistez sur un atterrissage contrôlé sur la jambe affectée, suivi d’une posture stable avant de passer à l’obstacle suivant.
      5. Critères de progression : progresser en augmentant la hauteur des obstacles, en diminuant la largeur de la base de soutien lors de l’atterrissage, ou en faisant marcher le patient sur les obstacles placés en zigzag.
    4. Position debout sur une jambe
      1. Demandez au patient de se tenir debout sur la jambe affectée. Pour des raisons de sécurité, placez-les près d’une surface stable (par exemple, un plan de travail). Laissez le patient utiliser un léger soutien du bout des doigts sur la surface pour l’équilibre.
      2. Demandez au patient de maintenir la position sur une jambe avec le genou légèrement fléchi. L’objectif pour chaque répétition est de maintenir la position jusqu’à 30 secondes.
      3. Critères de progression : progresser en réduisant progressivement le soutien du bout des doigts à l’absence de support, en faisant fermer les yeux au patient, ou en effectuant la posture sur une surface instable (par exemple, un coussin d’équilibre en mousse).
    5. Marche d’escaliers
      1. Faites pratiquer le patient sur une marche de hauteur standard (environ 15 cm). Assurez-vous qu’une rampe est disponible.
      2. Pour l’ascension, demandez au patient de mener avec la jambe affectée, en se concentrant sur le contrôle concentrique nécessaire pour soulever le poids du corps.
      3. Pour la descente, demandez au patient d’abaisser le corps avec la jambe affectée, en se concentrant sur le contrôle excentrique afin d’obtenir un mouvement lent et régulier.
      4. Critères de progression : progresser en réduisant progressivement l’utilisation de la rampe, en augmentant le nombre de marches franchies consécutivement, en portant un objet léger ou en s’entraînant sur des escaliers de différentes hauteurs.
        REMARQUE : Le tableau 1 résume le protocole de réhabilitation post-hydrodissection.

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Résultats

Récupération fonctionnelle
Selon le protocole intégré, l’angle jambe-pied lors de la dorsiflexion volontaire maximale est passé de 142° avant l’intervention à 104° post-intervention, ce qui représente une réduction de 38° (mesurée en position assise ; Figure 3). Ce gain fonctionnel s’accompagnait de la normalisation de la biomécanique de la démarche. L’analyse de la démarche avant traitement a montré des altération caractéristiques de la ...

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Discussion

Cet article présente une approche intégrée combinant l’hydrodissection guidée par ultrasons avec une rééducation structurée pour la prise en charge de l’enfermement du nerf péronien commun réfractaire (NPC). La récupération fonctionnelle observée illustre une synergie potentielle : une intervention structurelle précise crée les conditions physiques nécessaires, que le réentraînement neuromoteur peut ensuite exploiter pour restaurer la fonction.

La réussite de ...

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Déclarations de divulgation

Les auteurs déclarent qu’ils n’ont aucun conflit d’intérêts à divulguer.

Remerciements

Nous exprimons notre sincère gratitude à l’équipe médicale impliquée dans cette étude pour leur expertise professionnelle et leur assistance dévouée. Nous exprimons également notre plus sincère remerciement au patient pour sa participation, sa coopération et pour avoir accordé son consentement à partager ce cas à des fins éducatives.

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Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
50% Glucose InjectionChina Otsuka Pharmaceutical Co., Ltd.25G95J1Composant de l'injecté (1 mL, concentration finale de 5%)
Pansement AdhésifZhende Medical Co., Ltd.N2206070111-2Couvrir le site d'insertion de l'aiguille après la procédure
Coussinet d'ÉquilibreZhangjiagang Aonfit Trading Co., Ltd.ATZJ383Outil de progression pour l'entraînement debout sur une jambe
Aiguille de Bloc Nerveux à Bout Obtuse (22 G ou 25 G, 50–80 mm)Zhejiang Kindly Medical Devices Co., Ltd.C20251117Pour l'hydrodissection guidée par ultrasons en plan
Blocs en MousseZhangjiagang Aonfit Trading Co., Ltd.ATY0520Obstacles pour l'entraînement de franchissement au sol
Désinfectant à l'IodophorShandong Xiaoboshi Disinfection Technology Co., Ltd.20250902KDésinfection de la peau avant l'insertion de l'aiguille
Injection de LidocaineHunan Kelun Pharmaceutical Co., Ltd.R24101103Composant de l'injecté
Injection de MécobalaminEisai China Inc.230658Support neurotrophique dans l'injecté (1 mL)
Protège-Matelas MédicalZhende Medical Supplies Co., Ltd.20250911CProtéger la surface de positionnement du patient
Dispositif de Stimulation Électrique NeuromusculaireBeijing Yaoyangkangda Medical Equipment Co., Ltd.KT-90BDoit délivrer une onde carrée biphasée.
Injection de Chlorure de Sodium (0,9%)China Otsuka Pharmaceutical Co., Ltd.25I89B4Diluant pour l'injecté
Ballon de Football SouplePeak (China) Co., Ltd.YQ03207Cible pour l'entraînement de coup de pied latéral
Gaze StérileHenan Yadu Industrial Co., Ltd.2509CA3138Appliquer une pression sur le site de ponction
Gants en Latex StérilesBeijing Ruijing Latex Products Co., Ltd.2025072425Maintenir la technique aseptique
Couvercle de Sonde StérileZhejiang Chun'an County Renhe Medical Products Industry and Trade Co., Ltd.A1440EPCouverture stérile pour la sonde à ultrasons
Seringue Stérile (10 mL)Zhejiang Longde Pharmaceutical Co., Ltd.202601076Préparer le volume total d'injecté (10 mL)
Dispositif d'Ultrasons ThérapeutiqueShanghai Xibei Huachao Intelligent Medical Technology Co., Ltd.Sonosail 2Avec tête de transducteur de 1 MHz pour une application pulsée.
Gel à UltrasonsHangzhou Kaipule Medical Equipment Co., Ltd.KL-250Couplage acoustique pour l'imagerie par ultrasons
Système à UltrasonsFujifilm SonoSite Co., Ltd.SIIAvec fonction Doppler couleur. Utiliser un transducteur à réseau linéaire haute fréquence (10–15 MHz).

Références

  1. Fortier, L. M., et al. An update on peroneal nerve entrapment and neuropathy. Orthop Rev (Pavia). 13 (2), 24937 (2021).
  2. Liu, Z., et al. Prognostic factors in patients who underwent surgery for common peroneal nerve injury: a nested case-control study. BMC Surg. 21 (1), 11 (2021).
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