Cette étude a été réalisée conformément aux principes de la Déclaration d’Helsinki. L’approbation a été accordée par le Comité d’éthique de l’hôpital affilié de la Seconde Université de Médecine du Shandong, École de médecine clinique, Université de Médecine Seconde du Shandong (numéro d’approbation : wyfy-2023-ky-124). Un consentement éclairé a été obtenu de tous les sujets impliqués dans l’étude. Les réactifs et l’équipement utilisés sont listés dans le tableau des matériaux.
1. Sujets expérimentaux
Le calcul de la taille de l’échantillon a été effectué à l’aide du logiciel G*Power 3.1 basé sur un test t d’échantillon indépendant. Une taille d’effet moyenne (d de Cohen = 0,5, largement utilisée dans les études observationnelles cliniques), un test à deux bras, α = 0,05, et une puissance (1 − β) = 0,95 ont été fixées. Le calcul indiquait qu’au moins 105 participants étaient requis par groupe. Enfin, 182 patientes atteintes de cancer du sein et 147 patientes présentant des lésions mammaires bénignes ont été inscrites, et la taille réelle de l’échantillon des deux groupes a largement dépassé la taille minimale requise, assurant une puissance statistique suffisante pour étayer les conclusions de l’étude et contrôlant le risque d’erreur de type II dans une fourchette acceptable. Tous les participants ont été strictement et consécutivement inscrits selon des critères unifiés d’inclusion et d’exclusion.
De 2023 à 2024, tous les patients étaient inscrits à l’Hôpital affilié de la Seconde Université de Médecine du Shandong, École de médecine clinique, Université de Médecine Seconde du Shandong. Lésions bénignes : Les lésions non malignes ont été confirmées par la pathologie. Cancer du sein : les tumeurs malignes ont été confirmées par la pathologie. Des échantillons de sang veineux ont été prélevés sur tous les participants après un jeûne nocturne. Les échantillons de sang veineux ont été anticoagulés puis centrifugés pour séparer le plasma, conformément strictement aux procédures standard, puis transférés à −80 °C pour un stockage à long terme, qui a ensuite été utilisé pour l’extraction de miARN. Tous les échantillons de plasma étaient strictement limités à un maximum de deux cycles de congélation-dégel avant l’extraction de l’ARN afin d’éviter la dégradation des miARN. Tous les patients étaient pleinement informés du protocole de l’étude et ont volontairement fourni un consentement éclairé écrit avant l’inscription.
Critères d’inclusion pour les patientes atteintes de cancer du sein : (1) Patientes atteintes d’un cancer du sein primaire confirmé de manière pathologique. (2) Aucun traitement chirurgical avant l’inscription. (3) Ne pas avoir reçu de traitement de radiothérapie ou de chimiothérapie avant la collecte de l’échantillon.
Critères d’inclusion pour les patientes atteintes de maladie mammaire bénigne : (1) Lésions mammaires bénignes confirmées pathologiquement. (2) Sans autres tumeurs malignes systémiques ni lésions précancéreuses. (3) Non enceinte et non lactante. (4) Pas d’infection aiguë grave ni de maladie inflammatoire chronique.
Critères d’exclusion pour les patientes atteintes de cancer du sein et de lésions mammaires bénignes : (1) Infection mammaire grave ou maladie critique aiguë. (2) Dysfonction sévère du foie ou des reins, ou maladie auto-immune. (3) Patients ayant reçu une hormonothérapie dans les 6 mois.
2. Examen par échographie Doppler
Les seins bilatéraux de la patiente ont été examinés en profondeur sur quatre quadrants à l’aide d’une échographie Doppler. Une échographie bidimensionnelle a été utilisée pour enregistrer les caractéristiques de la lésion, notamment les limites, la forme, l’écho interne, les ondes d’écho postérieures et le rapport d’image de la lésion. L’imagerie Doppler couleur a été appliquée pour évaluer les paramètres du flux sanguin de la lésion, notamment l’indice de résistance (RI), l’indice de pulsatilité (PI) et la vitesse maximale du flux sanguin (Vmax). Les signaux de flux sanguin ont été classés selon un système de classification précédemmentsignalé 18 : Grade 0 : Aucun signal de circulation sanguine ; Grade I : signal de circulation sanguine minimale ; Grade II : La longueur du signal de flux sanguin dépasse la moitié du diamètre de la lésion ; Grade III : Signal de circulation sanguine abondante.
3. Définition positive pour le diagnostic par échographie du cancer du sein
Cela comprenait (1) des frontières ambiguës ; (2) Forme irrégulière ; (3) Écho interne inégal ; (4) Écho arrière affaibli ; (5) Format d’aspect >1 ; (6) RI > 0,70 ; (7) PI > 1,50 ; (8) Débit sanguin maximal (Vmax)> 18,00 cm/s ; (9) Signal de circulation sanguine ≥ grade II. Toute lésion répondant à l’un des critères suspects ci-dessus est classée comme échographie positive, tandis que celles sans caractéristiques suspectes sont considérées comme échographies négatives.
4. Réaction en chaîne quantitative de polymérases à fluorescence en temps réel (RT-qPCR)
Les miARN plasmatiques ont été extraits à l’aide d’un kit spécialisé d’extraction de miARN. Les échantillons d’ARN extraits avec succès ont été utilisés pour synthétiser l’ADNc à l’aide de kits spécialisés de transcription inverse de miARN. Conditions de réaction de transcription inverse pour miR-362-3p : Le volume total de cette réaction était de 20 μL. La procédure de réaction PCR était la suivante : (1) Le mélange était incubé à 37 °C pendant 15 minutes, (2) La réaction de transcription inverse était réalisée pendant 50 minutes à 42 °C, (3) L’enzyme était inactivée pendant 5 minutes à 95 °C. Le produit était stocké à 4 °C. Les conditions de réaction qPCR : Le volume total du système de réaction était de 20 μL. Les conditions d’amplification ont été réalisées comme suit : (1) L’ADN a été pré-dénaturé, et la polymérase d’ADN a été activée à 95 °C pendant 2 minutes. (2) Les brins d’ADN recuit et s’étendent pendant 30 s à 60 °C. Les deux étapes ci-dessus ont été réalisées sur un total de 40 cycles. L’expression relative du gène a été calculée par la formule 2-(ΔΔCt). L’expression relative du miR-362-3p a été calibrée par U6. Pour justifier l’utilisation de U6 comme contrôle endogène, la stabilité de U6 a été évaluée à l’aide de l’algorithme BestKeeper dans la cohorte plasmatique. Le coefficient de variation (CV) des valeurs de U6 Ct sur tous les échantillons était inférieur à 2 %, indiquant une forte stabilité d’expression. Par conséquent, U6 a été validé et sélectionné comme gène de référence pour la normalisation de l’expression de miR-362-3p dans la présente étude. La séquence aval des amorces a été fournie par le kit. Les séquences d’amorces étaient les suivantes :
miR-362-3p : GCCGAGAACACACCTATTCA.
U6 : CTCGCTTCGGCAGCACATATATACT.
5. Courbe de caractéristique de fonctionnement du récepteur (ROC)
L’indice de Youden a été utilisé pour déterminer la valeur de seuil optimale de miR-362-3p dans le diagnostic du cancer du sein en calculant les valeurs de sensibilité et de spécificité de la courbe ROC. Le modèle diagnostique combiné a été construit en utilisant la régression logistique binaire dans SPSS, avec miR-362-3p, RI et PI entrés comme variables indépendantes. Les variables ont été incluses par la méthode Enter pour générer la valeur de probabilité prédite du diagnostic combiné pour chaque sujet. La formule de la probabilité de prédiction (PRE) :
. Les courbes ROC ont été tracées selon le PRE. Le test de Delong a été utilisé pour comparer les différences de valeurs de zone sous la courbe (AUC) entre différentes courbes ROC.
6. Définition des paramètres de résultat
Le critère principal de jugement était l’efficacité diagnostique globale du modèle combiné de miR-362-3p plasmalogique et d’échographie Doppler pour le cancer du sein, le diagnostic pathologique étant la référence d’excellence. Les paramètres secondaires de jugement comprenaient la performance diagnostique de l’échographie Doppler seule et du plasma miR-362-3p seul.
7. Statistiques de données
Les niveaux d’expression de miR-362-3p et des courbes ROC des deux groupes de patients ont été analysés à l’aide de logiciels statistiques et graphiques. Le test t a été utilisé pour comparer les différences de variables continues entre les deux groupes. Le test du chi-carré et la méthode de la table quadruple ont été analysés à l’aide de SPSS 26.0. Le test du chi carré a été utilisé pour évaluer les différences statistiques des variables catégorielles ; la combinaison à deux indices (miR-362-3p + échographie Doppler) était considérée comme l’analyse principale, représentant une conclusion qualitative diagnostique courante en pratique clinique ; s’il y avait des caractéristiques suspectes dérivées de la classification BI-RADS (Breast Imaging Reporting and Data System), la lésion était considérée comme positive ; la méthode du tableau quadruple a été utilisée pour calculer la spécificité, la valeur prédictive positive, la valeur prédictive négative et la précision du diagnostic combiné de l’échographie Doppler et du miR-362-3p. Les résultats diagnostiques entre l’échographie Doppler et miR-362-3p comprenaient un vrai positif (a), un faux positif (b), un faux négatif (c) et un vrai négatif (d). Formule de calcul : Sensibilité = a / (a + c) ; Spécificité = d / (d + b) ; Valeur prédictive positive = a / (a + b) ; Valeur prédictive négative = d / (d + c) ; Précision = (a + d) / (a + b + c + d). Les trois méthodes de diagnostic (miR-362-3p, échographie et diagnostic combiné) ont été réalisées à l’aide du test Pearson χ2 pour les tableaux de contingence R×C. P < 0,05 était considéré comme statistiquement significatif.