Profils d'expression de la MPO et associations exploratoires avec la survie dans le cancer du sein
Afin de décrire les profils d'expression de MPO dans divers ensembles de données sur le cancer, nous avons analysé les données de séquençage ARN de MPO provenant de l'ensemble de données pancancéreux du TCGA et observé une expression réduite de MPO dans les tissus tumoraux de carcinome urothélial de la vessie (BLCA), de carcinome invasif du sein (BRCA), de glioblastome multiforme (GBM), de carcinome épidermoïde de la tête et du cou (HNSC), de chromophobe rénal (KICH), de carcinome hépatocellulaire (LIHC), d'adénocarcinome pulmonaire (LUAD), de carcinome épidermoïde du poumon (LUSC), d'adénocarcinome du pancréas (PAAD), d'adénocarcinome de la prostate (PRAD) et de carcinome thyroïdien (THCA), ainsi qu'une expression accrue de MPO dans l'adénocarcinome du côlon (COAD), le carcinome papillaire rénal (KIRP) et d'autres tissus (Figure 2A). Nous avons ensuite évalué les associations entre l'expression de MPO et les résultats cliniques pour chaque type de cancer. Dans la cohorte TCGA-BRCA, les comparaisons appariées et non appariées ont montré une expression de MPO plus faible dans le tissu tumoral que dans le tissu normal ou adjacent (Figure 2B,C). Après stratification des échantillons tumoraux de TCGA-BRCA selon le seuil médian d'expression tumorale de MPO, l'analyse de Kaplan-Meier a révélé que les patients présentant une expression plus élevée de MPO avaient un intervalle sans progression plus long (Hazard Ratio (HR) = 0,67, p = 0,028) (Figure 2D). La survie globale (OS) (p = 0,296 ; Figure supplémentaire 1A) et la survie spécifique au décès (DSS) (p = 0,18 ; Figure supplémentaire 1B) n'étaient pas statistiquement significatives. La courbe ROC tumeur versus normal suggérait une séparation entre les groupes de tissus dans cet ensemble de données (Figure 2E), mais cette analyse ne doit pas être interprétée comme une validation diagnostique clinique. Cette discrimination exploratoire pourrait être influencée par la source des échantillons normaux, les effets de lot, la pureté tumorale et les différences de composition tissulaire. L'expression de MPO était également associée au stade pathologique T (Figure 2F) et à la répartition des sous-types PAM50 (Figure 2G). Des images représentatives d'immunohistochimie (IHC) de MPO provenant de tissus mammaires normaux adjacents et de tissus cancéreux du sein ont été incluses comme références qualitatives au niveau protéique (Figure 2H). Les zones encadrées indiquent les régions montrées à un grossissement plus élevé. Les images d'aperçu à 20× incluent des barres d'échelle de 100 µm, tandis que les images à plus fort grossissement à 40× incluent des barres d'échelle de 50 µm.
Analyses de corrélation et d'enrichissement de la MPO dans la cohorte TCGA-BRCA
L'analyse de corrélation de Pearson a identifié les 30 gènes les plus fortement corrélés positivement avec MPO, qui présentaient une uprégulation coordonnée selon le gradient d'expression de MPO (Figure 3A), tandis que les 30 gènes les plus fortement corrélés négativement présentaient un profil d'expression inverse (Figure 3B). Au niveau des voies biologiques, l'expression de MPO était significativement et positivement associée à plusieurs scores de signatures liées au cancer, notamment le score de la signature de réponse inflammatoire (r = 0,41 ; Figure 3C), les marqueurs d'EMT (r = 0,264 ; Figure 3D) et le score du jeu de gènes associés aux espèces réactives de l'oxygène (ROS) (r = 0,415 ; Figure 3E), suggérant que l'expression de MPO est corrélée aux états transcriptionnels inflammatoires/oxydatifs et de type mésenchymateux dans la cohorte TCGA-BRCA.
Le regroupement non supervisé des gènes associés à la MPO a permis de stratifier davantage les tumeurs selon des profils d'expression correspondant à des annotations cliniques, notamment le stade pathologique T et les sous-types intrinsèques PAM50 (Figure 3F). Afin d'explorer d'éventuelles connexions entre les gènes associés à la MPO, nous avons construit un réseau d'interactions protéine-protéine (PPI) à l'aide de STRING, révélant un module interconnecté parmi plusieurs gènes corrélés à la MPO (Figure 3G). Dans ce réseau PPI, ESR1, FOXA1, XBP1, GATA3 et KRT18 présentaient une forte connectivité au sein de ce module dérivé de la corrélation. Ces résultats identifient des gènes dont l'expression varie conjointement avec celle de la MPO, mais n'établissent ni la pathogenèse liée à la MPO ni le sens de la causalité. L'analyse de l'expression différentielle entre les groupes à forte et faible expression de la MPO a révélé des différences transcriptomiques résumées dans le diagramme en volcan (Figure 3H). Un total de 1 159 gènes surexprimés et de 854 gènes sous-exprimés ont été identifiés, fournissant des données d'entrée pour les analyses d'enrichissement ultérieures.
Nous avons ensuite examiné la pertinence fonctionnelle des gènes différentiellement exprimés (DEG) entre les groupes MPO-élevé et MPO-faible à l'aide du package clusterProfiler dans R. L'analyse d'enrichissement de l'ontologie génique (GO) a indiqué que ces DEG étaient principalement impliqués dans des processus biologiques liés à l'immunité, notamment la régulation de la signalisation par récepteurs membranaires liés à la réponse immunitaire et l'immunité médiée par les lymphocytes, avec un enrichissement également observé dans des composants cellulaires tels que le complexe du récepteur des cellules T et des fonctions moléculaires associées à l'activité d'activateur de récepteur (Figure 4A). De manière cohérente, l'analyse des voies KEGG a mis en évidence des voies associées à l'immunité et à l'inflammation, notamment l'interaction cytokine–récepteur de cytokine, la signalisation chimioquines, la signalisation par récepteur des cellules T, la cytotoxicité médiée par les cellules tueuses naturelles, la différenciation Th1/Th2 et Th17, la signalisation NF-κB, l'immunodéficience primaire et le réseau immunitaire intestinal pour la production d'IgA (Figure 4B).
Afin d'intégrer davantage la directionnalité d'expression aux termes fonctionnels, le tracé GO a été utilisé pour calculer des scores Z au niveau des termes à partir des valeurs |log2FC| des gènes différentiellement exprimés, ce qui a de nouveau mis en évidence des programmes transcriptionnels enrichis en voies immunitaires, tels que la réponse immunitaire humorale, l'immunité médiée par les leucocytes ou les lymphocytes, l'activation de la réponse immunitaire et la transduction du signal (Figure 4C). Une analyse d'enrichissement des ensembles de gènes (GSEA) basée sur la liste de gènes classés a également révélé un enrichissement des voies du système immunitaire, notamment le système immunitaire adaptatif, l'interaction cytokine–récepteur de cytokine et la dégranulation des neutrophiles (Figure 4D–G). Étant donné que MPO est un gène associé aux cellules myéloïdes et aux neutrophiles, ces enrichissements sont interprétés comme une indication que les échantillons à forte expression de MPO présentent des signaux transcriptionnels immunitaires/myéloïdes plus marqués, plutôt que comme une preuve que MPO lui-même remodèle le microenvironnement immunitaire.
Corrélation entre l'expression de la MPO et l'infiltration des cellules immunitaires dans le cancer du sein
Nous avons évalué la relation entre l'expression de la MPO et les caractéristiques du microenvironnement tumoral dans la cohorte TCGA-BRCA. L'application de l'algorithme ESTIMATE a révélé des corrélations positives significatives entre l'expression de la MPO et le score ESTIMATE (R = 0,347, p < 0,001), le score immunitaire (R = 0,361, p < 0,001) et le score stromal (R = 0,232, p < 0,001) (Figure 5A). La répartition de ces scores selon les échantillons est présentée dans la Figure 5B. Une analyse à l'aide de la ressource TIMER/TIMER2.0 a indiqué que l'expression de la MPO était associée aux niveaux d'infiltration estimés des principales populations de cellules immunitaires, notamment les cellules B, les cellules T CD8+, les neutrophiles, les cellules T CD4+, les macrophages et les cellules dendritiques dans la cohorte TCGA-BRCA (Figure 5C). Ce profil d'association a été davantage évalué à l'aide de scores d'enrichissement des cellules immunitaires basés sur la ssGSEA pour 24 types de cellules immunitaires. Après correction du taux de faux positifs selon la méthode de Benjamini–Hochberg, l'expression de la MPO s'est révélée positivement associée à plusieurs scores d'enrichissement des cellules immunitaires, notamment les cellules T, les cellules B, les cellules cytotoxiques, les sous-ensembles de cellules dendritiques, les macrophages, les sous-ensembles de cellules T auxiliaires, les cellules T régulatrices, les cellules T CD8+, les cellules NK, les mastocytes et les neutrophiles (Figure 5D). Ces résultats sont interprétés comme des associations liées à la composition immunitaire, et non comme une preuve que la MPO contrôle directement l'infiltration des cellules immunitaires. Une carte thermique a été générée afin de visualiser les profils d'enrichissement des cellules immunitaires au niveau des échantillons dans la cohorte TCGA-BRCA (Figure 5E). Nous avons ensuite comparé les scores d'enrichissement des cellules immunitaires estimés par ssGSEA entre les groupes de tumeurs définis comme ayant une expression élevée ou faible de la MPO selon la médiane. Plusieurs scores d'enrichissement des cellules immunitaires différaient entre les deux groupes, notamment les cellules dendritiques activées (aDC), les cellules B, les cellules T CD8+, les cellules cytotoxiques, les neutrophiles, les cellules T, les Treg, les cellules Th1, les cellules Th2, les cellules Th17, les cellules T γδ, les cellules T auxiliaires folliculaires (TFH), les cellules à gènes hautement variables (HVG), les cellules T mémoire effectrices, les cellules T mémoire centrales et les cellules T auxiliaires (Figure 5F,G). De plus, une déconvolution basée sur CIBERSORT utilisant la matrice de signature LM22 a été réalisée afin d'estimer les fractions relatives des 22 types de cellules immunitaires, et les profils de composition des cellules immunitaires obtenus sont présentés dans la Figure 5H.
Analyse de la méthylation de l'ADN du gène MPO dans la cohorte TCGA-BRCA
En utilisant le même seuil médian d'expression de la MPO dans les tumeurs, les échantillons TCGA-BRCA ont été répartis en groupes MPO-élevée et MPO-basse, et les profils de méthylation de l'ADN ont été visualisés pour chaque groupe (Figure 6A). Certains sites CpG sélectionnés au sein du locus MPO présentaient des associations avec la survie dans l'analyse MethSurv, notamment les sites cg22331200, cg14619064 et cg11151395 (Figure 6B–G). Ces résultats liés à la méthylation ont été interprétés comme des annotations épigénétiques exploratoires et nécessitent une validation indépendante avant que des conclusions pronostiques ou mécanistiques puissent être établies.
Association entre l'expression de la MPO et les réseaux géniques liés aux neutrophiles dans le cancer du sein
La cohorte TCGA-BRCA a été utilisée pour examiner l'association entre l'expression de MPO et les gènes liés aux neutrophiles. Un réseau PPI basé sur STRING a été construit pour les gènes associés aux neutrophiles, et les gènes centraux ont été priorisés selon la topologie du réseau (Figure 7A). Les 20 principaux gènes centraux ont ensuite été évalués en fonction de leur corrélation avec l'expression de MPO. Comme le montre le graphique en bâtonnets, MPO présentait principalement des corrélations positives avec plusieurs médiateurs liés aux neutrophiles, des associations plus fortes étant observées pour des composants de la signalisation chimiotactique/immunité innée tels que CCL5, CCL2 et TLR2, ainsi que TLR4, CXCR4, TNF et MMP9 (Figure 7B).
Afin de caractériser davantage le modèle de co-régulation parmi ces gènes centraux, nous avons visualisé leurs relations par paires à l'aide d'un diagramme en cordes et d'une carte thermique de corrélation, ce qui a révélé d'importantes corrélations positives entre les gènes au sein du module central, en accord avec un programme transcriptionnel inflammatoire associé aux neutrophiles (Figure 7C,D). Dans leur ensemble, ces résultats indiquent qu'une expression plus élevée de MPO s'accompagne d'une expression coordonnée d'un réseau génique lié aux neutrophiles dans le cancer du sein.
Annotation des facteurs de transcription candidats pour MPO
Afin d'explorer les facteurs de transcription candidats potentiellement associés à MPO, des ressources publiques sur les facteurs de transcription, notamment KnockTF, ChIP-Atlas et GTRD, ont été interrogées et croisées. Les facteurs de transcription candidats ont ensuite été synthétisés à l'aide d'une analyse de corrélation et d'une priorisation fondée sur un réseau. Un résumé graphique est présenté dans la figure supplémentaire 2, et les résultats complets sous forme de tableau sont fournis dans le fichier supplémentaire 2. Étant donné que ces bases de données intègrent des preuves provenant de contextes expérimentaux hétérogènes, le chevauchement entre bases de données et le degré dans le réseau ont été utilisés uniquement pour l'annotation et la priorisation des candidats. Ces résultats n'ont pas été interprétés comme une preuve fonctionnelle d'une régulation transcriptionnelle directe de MPO dans le cancer du sein. Les facteurs candidats, notamment MYC, sont donc présentés comme des annotations exploratoires supplémentaires plutôt que comme des régulateurs en amont validés.
Regroupement au niveau de la cellule unique et analyse descriptive de la communication intercellulaire stratifiée selon le signal MPO
Pour annoter les types cellulaires, nous avons d'abord effectué une analyse d'expression spécifique aux groupes basée sur des marqueurs canoniques pour chaque lignée. Les niveaux d'expression moyens et le pourcentage de cellules exprimant ces gènes clés dans les groupes sont présentés, ce qui soutient l'annotation ultérieure (Figure 8A). En conséquence, les groupes cellulaires annotés sont visualisés sur un graphique de projection et d'approximation de variété uniforme (UMAP), dans lequel chaque population est codée par couleur selon son type identifié, notamment les cellules dendritiques plasmocytoïdes, les cellules endothéliales, les cellules myoépithéliales, les cellules épithéliales en division, les plasmocytes, les lymphocytes T cytotoxiques, les cellules tumorales épithéliales, les cellules B, les lymphocytes T CD4 activés, les monocytes–macrophages, les fibroblastes et les lymphocytes T conventionnels (Figure 8B). La carte thermique affiche les niveaux d'expression de gènes sélectionnés à travers les groupes cellulaires (C1-C8). Chaque ligne représente un gène et chaque colonne représente un groupe cellulaire. Le dégradé de couleur indique les niveaux d'expression, le rouge correspondant à une forte expression et le bleu à une faible expression. Le dendrogramme de gauche regroupe les gènes présentant des profils d'expression similaires (Figure 8C). Le score associé à la MPO a été calculé pour chaque cellule à l'aide du jeu de gènes associés à la MPO fourni dans le Fichier Supplémentaire 1. AUCell, Seurat AddModuleScore et l'analyse d'enrichissement de jeu de gènes à l'échelle d'un échantillon unique (ssGSEA) ont été utilisés pour calculer les scores par cellule. Les scores obtenus par les trois méthodes ont été normalisés par Z-score, ajustés à une plage comparable et intégrés afin de produire un score composite associé à la MPO destiné à l'analyse descriptive ultérieure (Figure 8D).
Cette analyse des interactions cellule-cellule a comparé les profils de communication ligand-récepteur inférés entre des groupes cellulaires stratifiés selon le signal associé à la MPO, incluant le réseau d'interactions, les cartes thermiques des profils de signalisation, le graphique en bulles de la signalisation sortante et le graphique en bulles de la signalisation entrante (Figure 8E–H). Étant donné que le signal MPO était dispersé au niveau monocellulaire et que sa distribution apparente parmi les types cellulaires annotés pourrait être influencée par des effets de dropout, d'ARN ambiant, de doublets et d'incertitude dans l'annotation, ces graphiques de communication doivent être interprétés comme des sorties descriptives du flux de travail. Ils ne démontrent pas que les cellules exprimant la MPO médient ou contrôlent la communication intercellulaire. Un signal MPO détectable a été observé dans un nombre limité de cellules, notamment des cellules tumorales épithéliales annotées et des monocytes-macrophages (Figure 8I). Étant donné que la MPO est classiquement associée aux lignées neutrophiles/myéloïdes, ce profil doit être validé dans des jeux de données unicellulaires indépendants ou par des méthodes expérimentales orthogonales.
Analyse de sensibilité exploratoire scTenifoldKnk basée sur des cellules MPO-positives rares
Plusieurs échantillons 10x Genomics ont été intégrés, puis normalisés et sélectionnés pour les gènes à haute variabilité (HVG), suivis d'une réduction de dimensionnalité par ACP, de la construction d'un graphe de plus proches voisins (k-NN) et d'un regroupement de type Louvain. Les profils d'expression canoniques des gènes marqueurs selon les groupes ont été résumés à l'aide d'un DotPlot, facilitant l'annotation ultérieure des types cellulaires (Figure 9A). La visualisation UMAP a montré les populations cellulaires annotées au niveau monocellulaire dans le jeu de données intégré (Figure 9B). Les marqueurs canoniques de lignage (par exemple, EPCAM et KRT8/KRT18 pour les cellules épithéliales ; PTPRC pour les cellules immunitaires ; MS4A1 pour les cellules B ; LST1/S100A8/S100A9 pour les cellules myéloïdes ; PECAM1 pour les cellules endothéliales ; et COL1A1 pour les lignages de fibroblastes/muscle lisse) présentaient des profils d'expression spécifiques à chaque groupe, confirmant l'annotation des types cellulaires (Figure 9C). Des diagrammes en barres empilées stratifiés par échantillon ont indiqué que chaque échantillon contenait plusieurs groupes, avec une variation globale limitée d'un lot à l'autre (Figure 9D).
L'expression de MPO était relativement faible dans le jeu de données à cellule unique, avec seulement 85 cellules positives pour MPO détectées initialement (Figure 9E). Étant donné ce nombre limité, une expansion par voisinage basée sur les plus proches voisins (KNN) a été utilisée uniquement pour définir un sous-ensemble local de voisinage MPO destiné à une analyse de sensibilité exploratoire. Ce sous-ensemble élargi ne doit pas être interprété comme une population purement positive pour MPO, car il peut inclure des cellules voisines exprimant faiblement ou indétectablement MPO. Au sein de ce sous-ensemble de voisinage MPO, une extinction virtuelle de MPO a été réalisée à l'aide de scTenifoldKnk, en tant qu'analyse computationnelle de sensibilité. Le diagramme en volcan résultant, l'analyse de déplacement de la variété, la visualisation de l'alignement des variétés, les résultats d'enrichissement GO/KEGG et les gènes présentant les plus forts déplacements (Figure 9F-N) ont mis en évidence des programmes transcriptionnels candidats liés à la présentation de l'antigène, à l'activation des myéloïdes/lymphocytes, à la production de cytokines et aux voies liées au phagosome. Ces résultats doivent être interprétés comme des sorties exploratoires de sensibilité transcriptionnelle, et non comme une preuve directe que MPO régule mécaniquement ces voies dans le cancer du sein. Des jeux de données indépendants à cellule unique et une validation expérimentale orthogonale, telles que l'immunohistochimie, la cytométrie en flux, la qPCR ou des tests fonctionnels, seront nécessaires pour confirmer ces observations.
Extraction exploratoire des interactions médicament–gène et annotation ADMET
À titre d'extension exploratoire de l'analyse centrée sur la MPO, des informations sur les interactions médicament-gène ont été extraites de DGIdb. Un résumé graphique est présenté dans la figure supplémentaire 3, et les résultats au niveau des composés sont fournis dans le tableau supplémentaire 3. La requête DGIdb a renvoyé un ensemble hétérogène de composés chimiques associés à la MPO, incluant des composés ayant une plausibilité clinique limitée ou des profils toxicologiques défavorables. Par conséquent, ces composés issus de bases de données n'ont pas été considérés comme des candidats thérapeutiques pour le cancer du sein selon l'analyse actuelle. Des informations liées à l'ADMET ont été résumées afin de fournir une annotation préliminaire des propriétés physico-chimiques, pharmacocinétiques et toxicologiques prédites. La récupération de composés à partir de bases de données et l'annotation ADMET ne sont pas équivalentes à une priorisation clinique de médicaments. Ces résultats servent donc uniquement d'annotations chimiques de niveau de criblage et illustrent la nécessité d'un filtrage rigoureux pharmacologique, toxicologique et clinique avant qu'un composé puisse être envisagé pour une investigation thérapeutique. Les principaux résultats de cette étude portent sur l'association entre l'expression de la MPO et les caractéristiques transcriptionnelles liées aux cellules immunitaires/myéloïdes.
DISPONIBILITÉ DES DONNÉES :
Les données transcriptomiques et cliniques de TCGA-BRCA ont été obtenues à partir du portail Genomic Data Commons (https://portal.gdc.cancer.gov ; téléchargées le 26 août 2025 ; version/libération des données 202208). Le jeu de données unicellulaire GSE161529 a été obtenu à partir de la base Gene Expression Omnibus (https://www.ncbi.nlm.nih.gov/geo/query/acc.cgi?acc=GSE161529). Aucune nouvelle donnée de séquençage n’a été générée dans cette étude. Les scripts d’analyse sont accessibles publiquement à l’adresse suivante : https://github.com/tengfeitcm/MPO.

Figure 1 : Organigramme du processus de collecte et d'analyse des données. Veuillez cliquer ici pour visualiser une version agrandie de cette figure.

Figure 2 : Profils d'expression de la MPO et associations exploratoires avec la survie dans le cancer du sein. (A) Les niveaux d'expression de la MPO ont été analysés dans 33 types de cancers distincts et leurs tissus normaux adjacents à l'aide de la base de données TCGA. (B) Des échantillons non appariés ont été sélectionnés à partir du jeu de données TCGA-BRCA afin d'analyser l'expression de l'ARNm de la MPO dans les tissus tumoraux et normaux du sein. (C) Des échantillons appariés ont été sélectionnés à partir du jeu de données TCGA-BRCA afin d'analyser l'expression de l'ARNm de la MPO dans les tissus tumoraux et normaux du sein. (D) Analyse de Kaplan-Meier du délai de progression de la maladie (PFI) chez des patients stratifiés selon le seuil médian d'expression tumorale de la MPO dans la cohorte TCGA-BRCA. (E) Courbe ROC exploratoire évaluant la discrimination entre tumeur et tissu normal basée sur l'expression de la MPO dans le jeu de données transcriptomiques public analysé. (F) Expression de la MPO selon les différents stades pathologiques T. (G) Expression de la MPO selon les sous-types moléculaires PAM50, avec les étiquettes des sous-types indiquées. (H) Images représentatives d'immunohistochimie (IHC) de la MPO dans un tissu mammaire normal adjacent et un tissu cancéreux du sein. Les zones encadrées indiquent les régions montrées à un grossissement plus élevé. Les images d'aperçu à 20× incluent des barres d'échelle de 100 µm, tandis que les images à 40× à plus fort grossissement incluent des barres d'échelle de 50 µm. Ces images sont présentées comme des références qualitatives au niveau protéique et n'ont pas été utilisées pour une analyse morphométrique ou statistique quantitative. Veuillez cliquer ici pour visualiser une version agrandie de cette figure.

Figure 3: Analyse des corrélations et de l'expression différentielle associées à MPO dans le cancer du sein. (A) Les 30 principaux gènes codants positivement corrélés à l'expression de MPO au niveau ARNm, basés sur les coefficients de corrélation de Pearson provenant de la base de données TCGA. (B) Les 30 principaux gènes codants négativement corrélés à l'expression de MPO au niveau ARNm, basés sur les coefficients de corrélation de Pearson. (C) Nuages de points illustrant les corrélations de Spearman entre MPO et les gènes surexprimés lors de la réponse inflammatoire. (D) Nuages de points illustrant les corrélations de Spearman entre MPO et les gènes surexprimés par les marqueurs de transition épithélio-mésenchymateuse (EMT). (E) Nuages de points illustrant les corrélations de Spearman entre MPO et les gènes surexprimés par les espèces réactives de l'oxygène (ROS). (F) Carte thermique des groupes de gènes associés à MPO basée sur la signification clinique (stade T et PAM50). (G) Réseau d'interactions protéine-protéine (PPI) prédit à l'aide de la base de données STRING pour les protéines associées à MPO. (H) Diagramme en volcan des gènes différentiellement exprimés entre les groupes de tumeurs à expression élevée et faible de MPO, définis selon la médiane, dans la cohorte TCGA-BRCA. Veuillez cliquer ici pour visualiser une version agrandie de cette figure.

Figure 4 : Analyse d'enrichissement de MPO dans le cancer du sein. (A) Analyse d'enrichissement de l'ontologie génique des 2 013 gènes différentiellement exprimés entre les groupes à forte et faible expression de MPO. (B) Analyse d'enrichissement des voies de la Kyoto Encyclopedia of Genes and Genomes (KEGG) pour les 2 013 gènes différentiellement exprimés. (C) Visualisation intégrée de l'enrichissement de l'ontologie génique combinant les termes enrichis avec la direction de la différentielle d'expression et les valeurs de |log2FC|. (D) Graphique d'enrichissement représentatif de l'analyse GSEA pour un ensemble de gènes liés à l'immunité associé à MPO ; le nom de l'ensemble de gènes, le score d'enrichissement normalisé et la valeur q de FDR sont indiqués dans le panneau. (E) Graphique d'enrichissement représentatif de l'analyse GSEA pour un autre ensemble de gènes liés à l'immunité associé à MPO ; le nom de l'ensemble de gènes, le score d'enrichissement normalisé et la valeur q de FDR sont indiqués dans le panneau. (F) Graphique d'enrichissement représentatif de l'analyse GSEA pour un autre ensemble de gènes liés à l'immunité associé à MPO ; le nom de l'ensemble de gènes, le score d'enrichissement normalisé et la valeur q de FDR sont indiqués dans le panneau. (G) Graphique d'enrichissement représentatif de l'analyse GSEA pour un autre ensemble de gènes liés à l'immunité associé à MPO ; le nom de l'ensemble de gènes, le score d'enrichissement normalisé et la valeur q de FDR sont indiqués dans le panneau. Veuillez cliquer ici pour visualiser une version agrandie de cette figure.

Figure 5: Corrélation entre l'enrichissement en cellules immunitaires et l'expression de la MPO dans le cancer du sein. (A) Diagrammes de dispersion montrant les corrélations entre l'expression de la MPO et le score ESTIMATE, le score immunitaire et le score stromal. (B) Boîtes à moustaches illustrant les différences de score ESTIMATE, de score immunitaire et de score stromal entre les groupes de tumeurs à forte et faible expression de la MPO définis par la médiane. (C) Analyse basée sur TIMER/TIMER2.0 montrant les associations entre l'expression de la MPO et l'infiltration estimée des principales populations de cellules immunitaires. (D) Graphique en bâtonnets montrant les corrélations de Spearman entre l'expression de la MPO et les scores d'enrichissement estimés par ssGSEA pour 24 types de cellules immunitaires. Les valeurs de p issues de multiples corrélations entre cellules immunitaires ont été ajustées à l'aide de la méthode de taux de fausses découvertes de Benjamini–Hochberg. (E) Carte thermique illustrant les profils d'enrichissement en cellules immunitaires au niveau des échantillons dans la cohorte TCGA-BRCA. (F) Boîtes à moustaches montrant le premier ensemble de différences de scores d'enrichissement en cellules immunitaires estimés par ssGSEA entre les groupes de tumeurs à forte et faible expression de la MPO définis par la médiane ; les comparaisons entre groupes ont été effectuées à l'aide du test de Wilcoxon avec correction de Benjamini–Hochberg. (G) Boîtes à moustaches montrant le second ensemble de différences de scores d'enrichissement en cellules immunitaires estimés par ssGSEA entre les groupes de tumeurs à forte et faible expression de la MPO définis par la médiane ; les comparaisons entre groupes ont été effectuées à l'aide du test de Wilcoxon avec correction de Benjamini–Hochberg. (H) Graphique en barres empilées montrant les fractions de cellules immunitaires estimées par CIBERSORT selon la matrice de signature LM22 pour 22 types de cellules immunitaires dans les groupes de tumeurs à faible et forte expression de la MPO définis par la médiane. Veuillez cliquer ici pour visualiser une version agrandie de cette figure.

Figure 6 : Analyse de la méthylation de l'ADN du gène MPO dans le cancer du sein. (A) Carte thermique montrant les profils de méthylation de MPO dans les groupes définis selon la médiane comme ayant une expression élevée (MPO-high) ou faible (MPO-low) de MPO. (B) Courbe de survie de Kaplan-Meier illustrant la signification pronostique de la méthylation au site cg27456487. (C) Courbe de survie de Kaplan-Meier illustrant la signification pronostique de la méthylation au site cg02668773. (D) Courbe de survie de Kaplan-Meier illustrant la signification pronostique de la méthylation au site cg07110356. (E) Courbe de survie de Kaplan-Meier illustrant la signification pronostique de la méthylation au site cg11151395. (F) Courbe de survie de Kaplan-Meier illustrant la signification pronostique de la méthylation au site cg14619064. (G) Courbe de survie de Kaplan-Meier illustrant la signification pronostique de la méthylation au site cg22331200. Veuillez cliquer ici pour visualiser une version agrandie de cette figure.

Figure 7: Analyse des corrélations entre MPO et les gènes associés aux neutrophiles au niveau ARNm à l'aide de la base de données TCGA. (A) Visualisation du réseau d'interactions protéiques, illustrant les interactions entre la protéine centrale et d'autres protéines. (B) Analyse de corrélation des 20 principaux gènes associés aux neutrophiles avec MPO, montrant les coefficients de corrélation et la distribution des valeurs P pour différents gènes. (C) Diagramme en cordes des corrélations entre les 20 principaux gènes associés aux neutrophiles, représentant visuellement l'intensité et le sens des associations géniques. (D) Carte thermique des corrélations des 20 principaux gènes associés aux neutrophiles, affichant les coefficients de corrélation et les niveaux de significativité à travers des dégradés de couleur et des marqueurs statistiques. Veuillez cliquer ici pour visualiser une version agrandie de cette figure.

Figure 8 : Analyse de regroupement au niveau cellulaire unique et analyse de la communication cellule-cellule associée à la MPO dans le jeu de données de cellules uniques du cancer du sein. (A) DotPlot des gènes marqueurs canoniques selon les groupes pour l'annotation des types cellulaires. (B) Visualisation UMAP des populations cellulaires annotées. (C) Carte thermique des gènes marqueurs sélectionnés selon les groupes cellulaires. (D) DotPlot résumant les scores associés à la MPO selon les types cellulaires annotés, calculés à l’aide d’AUCell, de ssGSEA et de Seurat AddModuleScore, basés sur le jeu de gènes fourni dans le Fichier Supplémentaire 1. (E) Réseau d’interactions cellule-cellule illustrant la communication entre les cellules tumorales épithéliales stratifiées selon le signal associé à la MPO et les autres types cellulaires ; la largeur des arêtes représente l’intensité de l’interaction et la taille des nœuds reflète l’activité globale d’interaction. (F) Cartes thermiques montrant les profils de signalisation sortants et entrants selon les types cellulaires. (G) Graphique en bulles des voies de signalisation sortantes des cellules tumorales épithéliales stratifiées selon le signal associé à la MPO vers d'autres types cellulaires. (H) Graphique en bulles des voies de signalisation entrantes provenant d'autres types cellulaires vers les cellules tumorales épithéliales stratifiées selon le signal associé à la MPO. (I) Distribution de l’expression de la MPO selon les types cellulaires annotés. Veuillez cliquer ici pour visualiser une version agrandie de cette figure.

Figure 9 : Analyse d'un atlas unicellulaire et inhibition virtuelle exploratoire des résultats liés à la sensibilité à la MPO. (A) DotPlot montrant l'expression des gènes marqueurs canoniques au sein des groupes unicellulaires ; la taille des points représente le pourcentage de cellules exprimant chaque marqueur, et l'intensité de la couleur représente le niveau d'expression moyen. (B) Visualisation UMAP des populations unicellulaires annotées, chaque couleur représentant un type cellulaire ou un groupe distinct. (C) Visualisation UMAP de l'expression des gènes marqueurs clés, montrant la distribution d'expression des gènes marqueurs pour les types cellulaires, incluant les cellules myéloïdes. (D) Graphique à barres empilées des proportions des groupes cellulaires selon les échantillons. (E) Visualisation UMAP de l'expression du gène MPO. (F) Tracé en violon montrant les métriques de contrôle qualité du séquençage unicellulaire. (G) Tracé de regroupement des gènes marqueurs clés. (H) DotPlot des gènes marqueurs canoniques au niveau du groupe. (I) Tracé en volcan des gènes modifiés dans l'analyse de sensibilité par inhibition virtuelle. (J) Nuage de points du déplacement en fonction de la significativité. (K) Tracé des flèches d'alignement de variété. (L) Analyse d'enrichissement des termes BP de l'ontologie génétique (GO) pour les gènes issus de la sortie d'inhibition virtuelle. (M) Analyse d'enrichissement des voies KEGG pour les gènes issus de la sortie d'inhibition virtuelle. (N) Les 20 gènes présentant le plus fort déplacement de variété après exclusion de MPO. Veuillez cliquer ici pour visualiser une version agrandie de cette figure.
Figure supplémentaire 1 : Analyses de survie supplémentaires pour MPO dans la cohorte TCGA-BRCA. (A,B) Ce fichier contient des analyses supplémentaires de survie de Kaplan-Meier pour (A) la survie globale et (B) la survie spécifique à la maladie, stratifiées selon le seuil médian d'expression tumorale de MPO. Ces analyses sont fournies comme analyses complémentaires des résultats de la Figure 2D et n'étaient pas statistiquement significatives dans la cohorte actuelle.Veuillez cliquer ici pour télécharger ce fichier.
Figure supplémentaire 2 : Annotation exploratoire des facteurs de transcription candidats pour MPO. (A) Diagramme de Venn montrant l'intersection des facteurs de transcription candidats provenant de trois ressources publiques sur les facteurs de transcription. (B) Résultats de la comparaison de l'expression de MYC. (C) Carte thermique des corrélations entre facteurs de transcription avec étiquettes de lignes et de colonnes. (D) Résultats de la corrélation entre MPO et MYC. (E) Résultats de l'analyse de survie pour MYC. (F) Résultats de la courbe ROC pour MYC. Les résultats liés à MYC sont présentés uniquement à titre d'annotations supplémentaires de facteurs de transcription candidats et ne servent pas à étayer des conclusions mécanistiques sur des régulateurs en amont.Veuillez cliquer ici pour télécharger ce fichier.
Figure supplémentaire 3 : Résultats exploratoires de la récupération de médicaments et de gènes à partir de DGIdb pour MPO. Les nœuds gris représentent le gène MPO, les nœuds orange représentent les entrées récupérées de petites molécules, et les lignes de connexion indiquent les relations médicament–gène prédites par la base de données.Veuillez cliquer ici pour télécharger ce fichier.
Tableau supplémentaire 1 : La matrice de signature des cellules immunitaires LM22 utilisée pour l'analyse de déconvolution des cellules immunitaires basée sur CIBERSORT portant sur 22 types de cellules immunitaires. Les symboles des gènes ont été harmonisés, les entrées en double ont été supprimées, et les gènes disponibles ont été croisés avec les matrices d'expression correspondantes de TCGA-BRCA ou de GSE161529 avant l'analyse en aval.Veuillez cliquer ici pour télécharger ce fichier.
Tableau supplémentaire 2 : Liste des gènes liés aux neutrophiles utilisée pour l'analyse STRING/PPI, la priorisation des gènes centraux et l'analyse de corrélation entre MPO et les gènes centraux. Veuillez cliquer ici pour télécharger ce fichier.
Tableau supplémentaire 3 : Résultats exploratoires de la récupération de médicaments et de gènes via DGIdb et annotations ADMET pour MPO. Ce fichier contient les enregistrements d'interactions chimiques-gènes associés à MPO récupérés à partir de DGIdb, ainsi que des annotations au niveau des composés prédites pour les propriétés physicochimiques, pharmacocinétiques et liées à la toxicité. Ces résultats sont fournis uniquement comme annotations chimiques préliminaires et ne doivent pas être interprétés comme des listes de candidats thérapeutiques. Ils n'établissent ni l'inhibition de MPO, ni l'engagement de la cible, ni la spécificité ou la sélectivité du ligand, ni la sécurité, l'efficacité thérapeutique ou l'adéquation clinique. Les valeurs de ce tableau représentent les paramètres physicochimiques prédits et les caractéristiques de type médicament pour les composés listés. La masse moléculaire est exprimée en grammes par mole (g/mol). Les valeurs d'accepteurs et de donneurs de liaisons hydrogène indiquent respectivement les nombres prédits d'accepteurs et de donneurs de liaisons hydrogène. Le coefficient de partition octanol-eau de Moriguchi indique la lipophilie prédite. Les violations des règles de Lipinski indiquent le nombre de critères de la règle des cinq de Lipinski non satisfaits par chaque composé. Le score de biodisponibilité représente le score prédit lié à la biodisponibilité orale, et la surface polaire topologique fait référence à la surface polaire topologique prédite.Veuillez cliquer ici pour télécharger ce fichier.
Fichier supplémentaire 1 : Liste des gènes associés à la MPO utilisée pour le calcul de signature unique cellule avec AUCell, Seurat AddModuleScore et ssGSEA. Veuillez cliquer ici pour télécharger ce fichier.
Fichier supplémentaire 2 : Résultats exploratoires d'annotation des facteurs de transcription et des miARN candidats pour MPO. Ce fichier contient des résultats d'annotation de facteurs de transcription candidats et de miARN issus de bases de données et basés sur des ressources publiques, notamment KnockTF, ChIP-Atlas, GTRD et TargetScan. Ces annotations sont fournies uniquement à des fins d'exploration et de priorisation des candidats, et ne doivent pas être interprétées comme une preuve fonctionnelle d'une régulation en amont de MPO dans le cancer du sein.Veuillez cliquer ici pour télécharger ce fichier.