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L’étude a été menée conformément aux directives de Pharmacologie et Toxicologie Cliniques de Base et de Toxicologie pour les études expérimentaleset cliniques 25. Tous les protocoles expérimentaux sur les animaux ont été approuvés par le Comité d’éthique animale du Second Hôpital Affilié de la Faculté de Médecine de l’Université du Zhejiang (Approbation n° 20230102), et toutes les expériences ont été réalisées conformément aux directives du Comité d’éthique animale. L’étude a été menée conformément aux directives de l’ARRIVE.
Dépistage des composants clés et cibles via la pharmacologie en réseau
Composantes actives de Fritillaria cirrhosa D. Don, Lonicera japonica Thunb., Glehnia littoralis F. Schmidt ex Miq., et Adenophora stricta Miq. ont été consultés depuis la base de données des systèmes de pharmacologie de médecine traditionnelle chinoise (TCMSP ; consulté le 12 mars 2024). Les composés candidats ont été dépistés selon les critères suivants de l’ADME : biodisponibilité orale (OB) ≥ 30 %, ressemblance du médicament (DL) ≥ 0,18, et perméabilité au Caco-2 ≥ −0,425. Les composés répondant aux trois critères ont été conservés comme principes actifs candidats pour des analyses ultérieures.
La structure canonique SMILES, le système simplifié de saisie de lignes moléculaires d’entrée (SMILES) du β-sitosterol a été obtenue sur PubChem (consulté le 18 mars 2024) et importée dans SwissTargetPrediction (consulté le 21 mars 2024) pour la prédiction de cibles. Homo sapiens a été choisi comme espèce ciblée. Les cibles potentielles ont été prédites sur la base de la similarité structurelle 2D et 3D entre β-sitosterol et les ligands connus dans la base de données. Les cibles prédites avec une probabilité supérieure à 0 ont été conservées, et les entrées en double ont été supprimées.
Les gènes associés à la BPCO ont été extraits de la Therapeutic Target Database (TTD ; consultée le 25 mars 2024) et de la Comparative Toxicogenomics Database (CTD ; consultée le 28 mars 2024) en utilisant le mot-clé « chronic obstructive pulmonary disease ». Après la suppression des gènes dupliqués, les gènes associés à la MPOC ont été croisés avec les cibles β-sitosterol prévues afin d’identifier des cibles candidates potentiellement impliquées dans les effets thérapeutiques du β-sitosterol contre la BPCO.
Amarrage moléculaire du β-sitosterol et de la RG
La structure tridimensionnelle du β-sitotérol au format SDF a été extraite de la base de données PubChem (consulté le 2 juin 2026), tandis que la structure cristalline du récepteur glucocorticoïde (GR) a été obtenue auprès de la Research Collaboratory for Structural Bioinformatics Protein Data Bank (RCSB PDB ; consulté le 3 juin 2026). Après la préparation standard des structures du ligand et des récepteurs, l’amarrage moléculaire a été réalisé via la plateforme en ligne CB-Dock2 (consulté le 3 juin 2026). Les fichiers de ligands et de récepteurs préparés ont été téléchargés sur la plateforme, et les calculs d’amarrage ont été effectués en utilisant les paramètres par défaut.
Analyse d’enrichissement fonctionnel de l’ontologie génique (GO) et Kyoto Encyclopedia of Genes and Genomes (KEGG)
Tous les gènes cibles prédits du β-sitosterol ont été soumis à des analyses d’enrichissement fonctionnel GO et d’enrichissement des voies KEGG. Les résultats d’enrichissement, incluant des processus biologiques significativement enrichis, des composants cellulaires, des fonctions moléculaires et des voies de signalisation, ont été triés et stockés dans le Fichier Supplémentaire 1 pour une analyse bioinformatique ultérieure.
Modélisation animale et regroupement
La taille de l’échantillon a été fixée à six animaux par groupe sur la base d’une étude antérieure ayant réalisé une analyse de puissance a priori à l’aide du logiciel G*Power (α = 0,05, puissance = 0,80) et démontré que n = 6 était suffisant pour détecter des différences biologiquement pertinentes dans des conditions expérimentalescomparables 26. Les mâles C57BL/6 souris âgées de 6 à 8 semaines (20 ± 2 g) ont été répartis aléatoirement dans cinq groupes : groupe témoin, groupe modèle BPCO, groupe MPOC + dexaméthasone (DEX), groupe BPOC + β-sitosterol, et groupe MPOC + DEX + β-sitotérol. Les souris étaient hébergées dans des conditions de laboratoire standard (25 °C, cycle clair/obscurité de 12 heures) avec un accès libre à la nourriture et à l’eau standard, et ont été laissées à s’acclimater pendant une semaine avant l’expérimentation.
Pour l’établissement du modèle BPCO, les souris ont été placées dans une chambre d’exposition à la fumée de cigarette intégrale (63 cm × 55 cm × 45 cm) et exposées à la fumée de cigarette traditionnelle pendant 12 semaines. Chaque cigarette contenait 10 mg de goudron, 0,9 mg de nicotine et 10 mg de monoxyde de carbone. L’exposition à la fumée a été réalisée deux fois par jour (5 jours par semaine) à 9h30 et à 15h00, avec de la fumée générée par 18 cigarettes injectées dans la chambre pendant 90 minutes par session27.
Pour évaluer les effets thérapeutiques des interventions, l’administration de médicaments a été initiée après 8 semaines d’exposition à la fumée de cigarette et s’est poursuivie pendant les 4 semaines restantes. À partir de la 9e semaine, les souris des groupes traités respectifs ont reçu quotidiennement une administration intragastrique de DEX (1 mg/kg)28 ou de β-sitosterol (50 mg/kg)29,30 1 h avant l’exposition à la fumée de cigarette. Des études pharmacocinétiques antérieures ont rapporté une biodisponibilité orale d’environ 4 % pour le β-sitotérol chezles rongeurs 31. De plus, plusieurs études sur la souris ont utilisé des doses allant de 20 à 50 mg/kg 32. Par conséquent, une dose de 50 mg/kg a été choisie afin d’assurer une exposition systémique adéquate tout en restant dans la fourchette couramment utilisée dans les études précliniques.
Les souris du groupe témoin ont été exposées à l’air filtré de la pièce, tandis que celles des groupes modèle et traité ont reçu un volume équivalent de solution physiologique normale en véhicule. À la fin de la période expérimentale, les souris étaient profondément anesthésiées avec de l’isoflurane jusqu’à la perte du réflexe pédal, puis euthanasiées par exsanguination via la collecte sanguine de l’aorte abdominale. La cavité thoracique a été immédiatement ouverte, et les tissus pulmonaires bilatéraux intacts ont été soigneusement excisés, rincés avec du sérum physiologique phosphaté (PBS) glacé, puis placés sur la glace. Pour la collecte du liquide de lavage bronchoalvéolaire (BALF), la trachée a été canulée et lavée avec du PBS froid stérile, qui a été doucement instillé puis retiré à plusieurs reprises pour collecter le liquide de lavage. Les tissus pulmonaires et les échantillons de BALF ont été conservés sur la glace puis traités pour des analyses en aval.
Culture cellulaire BEAS-2B
Les cellules épithéliales bronquiques humaines BEAS-2B ont été maintenues dans le Modified Eagle Medium/F12 (DMEM/F12) de Dulbecco, contenant 10 % de sérum bovin fœtal (FBS) et 1 % de pénicilline/streptomycine sous 5 % de CO₂ à 37 °C.
Préparation de l’ESC et exposition aux cellules BEAS-2B
Les cellules BEAS-2B ont été lavées avec du sérum physiologique tamponné phosphate et ensemées en plaques à 24 puits en triple liaison à une densité de 5 × 104 cellules par puits. Après 12 heures de culture, les cellules ont atteint environ 60 % de confluence et ont ensuite été exposées à l’EEC. Le CSE a été préparé de manière fraîche comme décrit précédemment, avec des modificationsmineures 33. Pendant un court moment, une cigarette commerciale non filtrée était continuellement brûlée, et la fumée principale était projetée en bulle dans 10 mL de milieu sans sérum à l’aide d’une pompe à vide à un débit constant de 1,05 L/min (environ −11 kPa de pression négative) pendant environ 5 minutes jusqu’à ce que la cigarette soit complètement brûlée. La solution obtenue a d’abord été soumise à une préfiltration pour éliminer les grosses particules impures, puis stérilisée via un filtre microporeux stérile de 0,22 μm pour éliminer les particules résiduelles ; la solution d’origine résultante a été définie comme 100 % CSE. Tout le CSE fraîchement préparé était utilisé pour le traitement cellulaire immédiatement après filtration sans stockage. Les cellules ont été stimulées avec un milieu contenant 2,5 % de CSE. Après 24 heures de traitement de l’ECS, les surnadants de culture ont été collectés et stockés à -40 °C pour une analyseultérieure 34.
Réaction en chaîne quantitative en temps réel par polymérase (RT-qPCR)
L’ARN total a été extrait des cellules BEAS-2B à l’aide d’un kit d’extraction totale d’ARN et transcrit en ADN c à l’aide d’un kit de transcription inverse selon les instructions du fabricant. La RT-qPCR a ensuite été réalisée à l’aide d’un système de détection PCR en temps réel et d’un mix maître qPCR basé sur SYBR Green. Toutes les expériences RT-qPCR ont été menées avec trois réplicés biologiques et trois réplications techniques par échantillon afin d’assurer la fiabilité des données.
Chaque réaction qPCR a été effectuée sur un volume total de 20 μL, contenant 10 μL de mélange maître SYBR Green qPCR, 0,4 μL d’amorce directe, 0,4 μL d’amorce inverse, 2 μL de gabarit d’ADNc dilué et 7,2 μL d’eau sans RNase. Les conditions d’amplification étaient les suivantes : dénaturation initiale à 95 °C pendant 3 minutes, suivie de 40 cycles de dénaturation à 95 °C pendant 10 s et de recuit/extension à 60 °C pendant 30 s. Les niveaux relatifs d’expression génique ont été calculés à l’aide de la méthode 2−ΔΔCt, le GAPDH servant de gène de référence interne. Les séquences d’amorces utilisées dans cette étude sont mentionnées dans le Tableau Supplémentaire 1.
Analyse des espèces réactives intracellulaires de l’oxygène (ROS)
La production intracellulaire de ROS dans les cellules BEAS-2B a été évaluée à l’aide du diacétate fluorogénique de sonde fluorogénique 2′,7′-dichlorodihydroescéine (DCFH-DA) et analysée par cytométrie en flux. Lors de l’acquisition cytométrique en écoulement, une stratégie standard de diffusion directe (FSC) et de diffusion latérale (SSC) a été appliquée pour exclure les débris cellulaires et sélectionner des cellules uniques intactes. Un total de 10 000 événements cellulaires valides ont été obtenus pour chaque échantillon. Les longueurs d’onde d’excitation et d’émission ont été réglées respectivement à 488 nm et 525 nm. Les données cytométriques en flux ont ensuite été analysées pour quantifier l’intensité de fluorescence ROS intracellulaire.
Détermination du niveau de malondiadéhyde (MDA)
La teneur en MDA intracellulaire a été mesurée à l’aide d’un kit de test de peroxydation lipidique selon les instructions du fabricant. En résumé, des cellules BEAS-2B traitées ont été prélevées et lysées, puis centrifugées à basse température pour collecter le surnageant. La réaction colorimétrique à l’acide thiobarbiturique (TBA) a ensuite été réalisée, et l’absorption a été mesurée à 532 nm à l’aide d’un lecteur de microplaques. Les niveaux relatifs de MDA ont été calculés selon la courbe standard.
Évaluation de la sénescence cellulaire
La sénescence cellulaire a été évaluée à l’aide d’un test de détection de sénescence basé sur l’activité β-galactosidase (SA-β-gal) associée à la sénescence. Les cellules SA-β-gal-positives ont été quantifiées par cytométrie en flux. Parallèlement, les niveaux d’expression de l’ARNm des marqueurs associés à la sénescence p53 et p21 ont été déterminés par RT-qPCR.
Essai de prolifération cellulaire
La prolifération cellulaire a été évaluée à l’aide d’un kit de test de viabilité cellulaire colorimétrique. L’absorbance a été mesurée à 450 nm à l’aide d’un lecteur de microplaques.
Analyse de démontage GR
La transfection cellulaire a été réalisée à l’aide d’un réactif de transfection à base de lipides. Les oligonucléotides suivants ont été transfectés : l’ARN interférant petit (si-GR) ciblant les récepteurs glucocorticoïdes et le petit ARN interférant témoins négatif (si-NC). Les séquences siRNA candidates ciblant la RG ont été conçues à l’aide de la plateforme de bioinformatique en ligne siDirect 2.0. Après la transfection, les cellules ont été cultivées pendant 48 heures, et tous les siARN ont été utilisés à une concentration finale de 50 nM. L’efficacité du knockdown a été vérifiée en mesurant l’expression de l’ARNm de la GR à l’aide de RT-qPCR.
Les groupes témoins des véhicules ont été inclus à la fois dans les expériences de traitement au β-sitosterol et de transfection. Pour une intervention β-sitosterol, les cellules traitées uniquement avec le solvant du véhicule servaient de groupe témoin du véhicule (noté CSE+0). L’analyse statistique a confirmé qu’aucune différence significative n’a été observée entre les groupes témoins du véhicule et témoins vierge.
Analyse statistique
Tous les résultats quantitatifs ont été exprimés en moyenne ± écart-type de trois expériences in vitro biologiquement indépendantes. Les analyses statistiques ont été réalisées à l’aide d’un logiciel d’analyse statistique. Le test de Shapiro–Wilk a été utilisé pour examiner la normalité de la distribution des ensembles de données avant les tests statistiques ; La correction post-hoc de Bonferroni a été adoptée pour ajuster les valeurs de P lors des comparaisons multiples après analyse de la variance (ANOVA). Les comparaisons entre deux groupes ont été évaluées par un test t de Student non apparié, tandis qu’une ANOVA unidirectionnelle ou bidirectionnelle a été utilisée pour les comparaisons multi-groupes. Une valeur p ≤ 0,05 était considérée comme statistiquement significative.