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Article de méthode

Flux de travail pour la réponse photopique négative et le test de vision du bébé

72 vues

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DOI :

10.3791/72062

⸱

7 août 2026

 ,  , 
1National Clinical Research Center for Ocular Diseases, Eye Hospital, Wenzhou Medical University

Dans cet article

Résumé

Cet article présente des flux de travail standardisés pour la réponse photopique négative (PhNR) et le test de vision du bébé, deux modalités électrophysiologiques sous-utilisées mais cliniquement précieuses, afin de réduire la variabilité procédurale et d’améliorer leur utilité diagnostique dans le glaucome et les troubles visuels pédiatriques.

Résumé

Les tests électrophysiologiques visuels sont des outils non invasifs et objectifs largement utilisés en ophtalmologie clinique. Cependant, deux modalités prometteuses, la réponse photopique négative (PhNR), qui évalue la fonction des cellules rétiniennes internes et ganglionnaires, et le test dynamique de vision du bébé basé sur une cible, restent sous-utilisées en pratique clinique malgré leur capacité à fournir des données fonctionnelles objectives précieuses. L’adoption limitée est principalement due à la variabilité procédurale, à de nombreux facteurs de confusion et à des difficultés dans l’interprétation des résultats. Pour relever ces obstacles, des protocoles opérationnels clairs et standardisés sont essentiels afin de maximiser leur potentiel diagnostique. Ici, un flux de travail standardisé 6E est proposé, englobant l’environnement, l’équipement, l’examiné, l’électrode, l’examen et la sortie, conçu pour améliorer la faisabilité clinique et la mise en œuvre de ces tests. Dans une analyse rétrospective, la mise en œuvre du protocole 6E a considérablement augmenté la proportion de nourrissons ayant réussi les tests. Plus précisément, le taux de réussite du test PhNR est passé de 61,54 % à 86,45 % (p < 0,05), tandis que la durée moyenne du test de vision du bébé est passée de 17,44 ± 9,89 min à 13,28 ± 9,24 min (p < 0,05). Ces résultats démontrent que le flux de travail 6E améliore l’utilité clinique et l’efficacité des tests PhNR et de la vision du bébé, soutenant leur application plus large dans le diagnostic et la prise en charge du glaucome et des troubles visuels pédiatriques.

Introduction

L’électrophysiologie visuelle fournit un moyen objectif et quantitatif d’évaluer la fonction des voies visuelles de la rétine aucortex 1,2. Les tests conventionnels tels que l’électrorétinographie de champ complet (ERG) et les potentiels évoqués visuels (VEPs) sont largement utilisés en ophtalmologieclinique 3,4. Cependant, plusieurs techniques spécialisées ayant une valeur clinique avérée restent sous-utilisées dans la pratique courante.

Deux de ces techniques sont la réponse photopique négative (PhNR), une onde négative qui suit l’onde b de l’électrorétinogramme adapté à la lumière (ERG) etreflète la fonction 5,6 des cellules ganglionnaires rétiniennes, et le Baby Vision Test, une modalité d’évaluation visuelle utilisant une approche de test dynamique basée sur des cibles. Le test de vision du bébé utilise un réseau dérivant horizontalement (avec la luminance adaptée à l’arrière-plan) tout en enregistrant les mouvements oculaires. La résolution spatiale augmente progressivement, et l’acuité visuelle (VA) est estimée à partir de la résolution la plus élevée qui suscite un suivistable 7. Bien que les deux techniques se soient avérées utiles dans les milieuxde recherche 7,8, leur adoption clinique généralisée reste limitée.

Plusieurs facteurs contribuent à cet écart. Les enregistrements électrophysiologiques sont susceptibles de nombreux facteurs de confusion, notamment les interférences électromagnétiques, la mise à la terre, le type et le placement des électrodes, les paramètres de stimulation, les facteurs du patient (âge, pupille, réfraction, anesthésie) et les variables environnementales 9,10,11,12. La variabilité procédurale et l’absence de données de référence cohérentes sapent davantage la confiance clinique13.

Pour relever ces défis, des flux de travail détaillés et standardisés pour les examens PhNR et Baby Vision sont proposés. Ces flux de travail reposent sur un cadre structuré 6E basé sur des listes de contrôle (Environnement, Équipement, Candidat, Électrode, Examen et Sortie) qui spécifie explicitement les conditions environnementales, standardise chaque phase de test, de la préparation du patient à la pose des électrodes, et traduit les paramètres techniques en actions pratiques étape par étape. En réduisant la variabilité dépendante de l’opérateur et en minimisant les étapes omises, l’approche 6E améliore directement la reproductibilité intra- et inter-sujets par rapport aux méthodes conventionnelles, moins axées sur les protocoles. Le protocole est conçu pour des contextes cliniques de routine tels que les laboratoires d’ophtalmologie pédiatrique et d’électrophysiologie. L’objectif est de faciliter une adoption clinique plus large de ces outils précieux.

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Protocole

Les procédures décrites ici portent sur la réponse photopique négative (PhNR) et le test de vision du bébé. Toutes les procédures ont été approuvées par le Conseil d’Éthique Institutionnelle (IRB) de l’Hôpital ophtalmologique de l’Université Médicale de Wenzhou (approbation IRB n° H2025-071-K59 pour l’analyse rétrospective). L’exigence de consentement éclairé a été levée en raison du caractère rétrospectif de l’étude. Ce protocole est basé sur le cadre d’examen 6E, qui comprend l’Environnement, l’Équipement, l’Examiné, l’Électrode, l’Examen et la Sortie (Figure 1).

1. Flux de travail pour la réponse négative photopique (PhNR)

  1. Exigences environnementales
    REMARQUE : Les spécifications environnementales décrites ci-dessous sont basées sur une combinaison de recommandations ISCEV, de spécifications opérationnelles du fabricant d’équipements, de normes internationales de sécurité électrique, de recommandations environnementales de laboratoire publiées et de pratiques cliniquespédiatriques 3,4. Lorsque l’ISCEV ne prescrit pas de valeurs numériques, des plages d’opérations pratiques ont été sélectionnées pour assurer des conditions d’enregistrement stables tout en maintenant le confort des patients, en particulier pour les nourrissons et les jeunes enfants.
    1. Conditions d’éclairage
      1. Équiper la salle d’examen pour fournir à la fois une lumière ambiante conventionnelle (200 lux dans cette étude) et une obscurité totale selon le protocole de test.
      2. Maintenir un éclairage ambiant constant sur toutes les sessions d’enregistrement afin de faciliter des enregistrements de haute qualité et d’améliorer la comparabilité entre laboratoires.
      3. Utilisez des luminaires à commutation directe sans gradateurs pour minimiser les interférences électriques du secteur.
        REMARQUE : Un éclairage ambiant constant est essentiel pour collecter des données de référence et obtenir des enregistrementsfiables 4.
    2. Blindage électromagnétique et installation électrique
      1. Situez la salle d’examen loin des sources de champs électromagnétiques puissants, y compris les salles de radiologie, les ascenseurs, les grandes unités de climatisation, les scanners IRM, le matériel de physiothérapie, les réfrigérateurs et les salles de serveurs informatiques.
      2. Installez une électrode de mise à la terre dédiée à basse impédance avec une résistance mesurée à la terre de ≤5 Ω.
      3. Standardisez l’installation de mise à la terre et assurez-vous qu’elle reste indépendante des autres circuits électriques.
      4. Alimenter l’équipement électrophysiologique via une ligne électrique dédiée reliée au tableau de distribution principal et équipée d’un stabilisateur de tension.
        REMARQUE : Les signaux électrophysiologiques visuels sont enregistrés au niveau du microvolt (μV) et sont très sensibles aux interférences électromagnétiques.
      5. Évitez de partager les circuits électriques avec de gros appareils électroménagers.
      6. Disposez tous les câbles d’enregistrement proprement et gardez-les séparés les uns des autres.
        REMARQUE : Ne regroupez pas les câbles de l’amplificateur avec d’autres câbles car le couplage capacitif peut augmenter le bruit électrique.
    3. Température et humidité
      1. Maintenez la température ambiante entre 22 °C et 26 °C.
        REMARQUE : Les variations de température peuvent affecter la cinétique de réponse cellulaire et les amplitudesde réponse 14.
      2. Maintenez une humidité relative entre 30 % et 65 %.
        REMARQUE : Les variations d’humidité peuvent affecter la stabilité et l’impédance des électrodes. Une humidité excessive peut favoriser la corrosion des électrodes, tandis qu’une sécheresse excessive peut augmenter le bruit électrique15.
      3. Utilisez un système dédié de chauffage, ventilation et climatisation pour maintenir la stabilité environnementale.
    4. Contrôle acoustique
      1. Maintenez le bruit de fond en dessous de 30 dB(A) à l’aide de mesures d’isolation acoustique, telles que des fenêtres à double vitrage, des portes insonorisées et un sol en caoutchouc.
      2. Évitez les bruits soudains qui pourraient provoquer des réactions de sursaut ou des artefacts myogéniques lors de l’enregistrement.
      3. Minimisez les sources de vibrations mécaniques et d’interférences acoustiques dans la salle d’examen.
  2. Préparation de l’équipement
    1. Effectuer l’étalonnage et la vérification de routine de tous les instruments de stimulus et d’enregistrement conformément aux recommandationsISCEV 3.
    2. Vérifiez que le système ERG est correctement connecté au stimulateur visuel.
    3. Inspectez toutes les connexions de câbles et assurez-vous qu’elles sont intactes et fonctionnent correctement.
      REMARQUE : Une préparation approfondie de l’équipement est essentielle car un dysfonctionnement de l’appareil peut réduire les taux de réussite des examens, en particulier chez les jeunes enfants ayant une tolérance limitée aux tests.
    4. Désinfectez l’appuie-tête et le menton à l’aide de cotons-tiges imbibés d’alcool avant le test.
    5. Allumez l’ordinateur et attendez que le bureau soit complètement chargé.
    6. Changez l’interrupteur du rocker du stimulateur de O à I.
    7. Lancez le logiciel d’acquisition (Figure supplémentaire 1A).
      REMARQUE : Suivez la séquence d’allumage correcte pour assurer un fonctionnement stable du système.
    8. Sélectionnez le protocole PhNR étendu ISCEV dans le menu d’examen (Figure supplémentaire 1B).
      REMARQUE : Créer un nouveau protocole si le protocole prédéfini n’est pas disponible. Utilisez les réglages suivants : fond bleu, 450 nm à 10 cd/m 2 ; flash rouge, 630 nm à 2,0 cd·s/m 2 ; fréquence de stimulus, 1 Hz ; 50 balayages sans artefact en moyenne (minimum 8 à 10 balayages) ; passe-bande de l’amplificateur, 0,3–300 Hz ; seuil automatique de rejet d’artefacts, ±500 μV 16,17,18. Maintenir des paramètres d’acquisition identiques tout au long de l’étude et entre tous les participants afin d’assurer la comparabilité des données.
    9. Positionnez et mettez au point correctement la caméra avant de commencer l’examen.
  3. Préparation des candidats
    1. Expliquez la procédure au parent ou tuteur.
    2. Informez le parent ou tuteur que l’examen est non invasif et indolore.
    3. Confirmez que l’enfant est éveillé et calme.
    4. Évitez de tester les enfants somnolents, somnolents ou en train de pleureractivement à 19 ans.
      REMARQUE : Nourrissez l’enfant, changez la couche et laissez un repos suffisant avant le test autant que possible.
    5. Utilisez la position de maintien en vol pour les nourrissons de moins de 3 mois avec un mauvais contrôle de la tête.
    6. Asseoir les nourrissons plus âgés sur les genoux d’un parent ou les placer debout lorsque cela est approprié (Figure 2).
      REMARQUE : Stabilisez doucement le nourrisson pendant les tests. Évitez la fixation rigide de la tête. Mettez l’enregistrement en pause si un mouvement excessif ou des pleurs surviennent et reprenez une fois que le nourrisson est calme.
    7. Nettoyez la peau périoculaire avec un coton-tige.
    8. Confirmez le statut d’élève de base.
    9. Injectez une goutte de tropamide à 0,5 % toutes les 3 à 5 minutes pour un total de trois applications.
    10. Confirmez une dilatation adéquate des pupilles après 30 minutes.
      REMARQUE : Informez les parents que la photophobie et la vision floue de près peuvent survenir pendant 4 à 6 heures après la dilatation.
    11. Laissez le patient s’adapter aux conditions photopiques pendant au moins 10 minutes avant l’enregistrement.
  4. Placement des électrodes
    1. Inspectez toutes les électrodes cutanées et confirmez qu’elles sont intactes, non contaminées et exemptes de détérioration (Figure 3).
      REMARQUE : Les électrodes cutanées sont utilisées dans ce protocole car elles sont bien tolérées par les nourrissons et les jeunes enfants et facilitent l’examen chez les patients qui ne peuvent pas être placés confortablement par la pose d’électrodes cornéennes.
    2. Appliquez du gel conducteur sur la peau périoculaire nettoyée.
    3. Remplissez les électrodes de peau avec une pâte conductrice.
    4. Fixez les électrodes avec du ruban médical.
    5. Placez les électrodes actives sur les paupières inférieures.
    6. Placez les électrodes de référence au canthi externe.
    7. Placez l’électrode de terre sur le front (Tableau 1, Figure 4).
    8. Mesurez l’impédance de l’électrode.
    9. Confirmez que l’impédance est inférieure à 10 kΩ et de préférence ≤5 kΩ.
      REMARQUE : Une barre de qualité verte indique une impédance acceptable, tandis qu’une barre de qualité rouge indique une impédance anormale (Figure supplémentaire 1C).
    10. Répétez les étapes 1.4.2–1.4.7 si l’impédance dépasse la plage acceptable.
  5. Exécution de l’examen
    1. Cliquez sur l’icône Identification du patient/Œil et saisissez les informations du patient (Figure supplémentaire 1D).
    2. Sélectionnez test binoculaire.
    3. Placez l’enfant confortablement au poste d’examen.
    4. Ajustez la hauteur de la table et la position du repose-menton.
    5. Revérifiez l’impédance de l’électrode.
    6. Cliquez sur Examen pour commencer l’acquisition (Figure supplémentaire 1D).
    7. Surveillez en continu la forme d’onde et l’indicateur de rejet des artefacts.
    8. Demandez au patient de se fixer sur la cible centrale de fixation.
    9. Encouragez le patient à minimiser les clignements pendant l’acquisition.
    10. Utilisez des indices verbaux pour maintenir l’attention lorsque la coopération est limitée.
      REMARQUE : Le système rejette automatiquement les balayages contenant des artefacts.
    11. Continuez à enregistrer jusqu’à obtenir une forme d’onde fiable.
      REMARQUE : Définissez une forme d’onde fiable comme une contenant au moins 8 à 10 balayages sans artefacts, un rapport signal/bruit (SNR) ≥3, et aucun mouvement visible ni artefacts électriques. Ces critères sont basés sur des analyses statistiques publiées de la signification électrophysiologique du signal et sur les recommandations étendues de PhNR de l’ISCEV tout en tenant compte des niveaux de bruit plus élevés couramment rencontrés lors des enregistrements pédiatriques16, 18, 20.
    12. Arrêtez l’acquisition en appuyant sur S ou en cliquant sur Résultats.
  6. Examen de sortie et rapport
    1. Retirez toutes les électrodes.
      REMARQUE : Les électrodes cornéennes peuvent être utilisées chez les patients coopératifs lorsqu’aucune contre-indication n’est présente.
    2. Nettoie la peau avec un coton-tige.
    3. Désinfectez l’appuie-tête et le menton à l’aide de coton-tiges imbibés d’alcool.
    4. Affichez la forme d’onde moyenne.
    5. Identifiez l’onde a, l’onde b et le creux PhNR.
    6. Mesurez l’amplitude PhNR depuis la ligne de base jusqu’au creux de l’onde négative suivant l’onde B.
    7. Mesurez le temps de pic depuis le début du stimulus jusqu’au creux du PhNR (Figure 5).
    8. Comparez les valeurs mesurées avec les valeurs de référence établies.
    9. Classez une réduction d’amplitude PhNR supérieure à 2 écarts-types en dessous de la moyenne normale comme anormale.
      REMARQUE : Établissez des données normatives spécifiques à chaque appareil autant que possible. Le temps total de préparation et de test est d’environ 25 à 35 minutes. Dans la mesure du possible, établissez des intervalles de référence spécifiques au laboratoire en utilisant des participants sains sélectionnés de manière appropriée. Selon les recommandations actuelles, les nouveaux intervalles de référence devraient idéalement être dérivés d’au moins 120 individus par sous-groupe cliniquement pertinent, tandis que les intervalles de référence transférés ou vérifiés peuvent nécessiter moins de participants après les procédures de validationacceptées 13.

2. Flux de travail pour le test de vision du bébé

  1. Exigences environnementales
    REMARQUE : Les exigences environnementales pour le test de vision du bébé sont identiques à celles décrites pour l’examen PhNR (Section 1.1), incluant la cohérence de l’éclairage, le blindage électromagnétique, la mise à la terre, le contrôle de la température et de l’humidité, ainsi que la gestion acoustique.
    1. Assombrir la pièce au besoin pour minimiser les distractions et faciliter l’attention visuelle.
  2. Préparation de l’équipement
    1. Effectuez l’étalonnage de routine de l’équipement selon les instructions du fabricant et les procédures de laboratoire.
    2. Vérifiez que tous les câbles sont correctement connectés et fonctionnent normalement.
    3. Désinfectez l’appuie-tête et le menton à l’aide de coton-tiges imbibés d’alcool.
    4. Allumez l’ordinateur et lancez le logiciel d’acquisition.
    5. Sélectionnez Vision du bébé dans le menu d’examen.
    6. Sélectionnez la distance de test appropriée selon l’âge de l’enfant (Figure supplémentaire 2A).
    7. Utilisez une distance de test de 33 à 40 cm pour les nourrissons de moins de 3 mois.
      REMARQUE : Des distances de test plus courtes sont utilisées pour les jeunes nourrissons afin d’évaluer des niveaux d’acuité visuelle plus faibles.
    8. Régler la vitesse du stimulus à 7°/s pour les nourrissons de moins de 3 mois (Figure supplémentaire 2B).
    9. Utilisez une distance de test de 33 à 40 cm pour les nourrissons âgés de 3 à 6 mois.
    10. Réglez la vitesse du stimulus à 30°/s pour les nourrissons âgés de 3 à 6 mois (Figure supplémentaire 2C).
    11. Utilisez une distance de test de 100 cm pour les enfants de plus de 6 mois.
    12. Régler la vitesse de stimulus à 10°/s pour les enfants de plus de 6 mois (Figure supplémentaire 2D).
      REMARQUE : Les paramètres de test sont ajustés selon le stade de développement de la fonctionvisuelle 21,22,23. Des vitesses de stimulus plus élevées peuvent améliorer les réponses d’attention et de suivi chez les nourrissons âgés de 3 à 6 mois.
    13. Positionnez et faites la mise au point de la caméra avant de commencer l’examen.
  3. Préparation des candidats
    1. Expliquez la procédure d’examen au parent ou tuteur.
    2. Informez le parent ou tuteur que l’examen est non invasif et indolore.
    3. Confirmez que l’enfant est éveillé et alerte.
      REMARQUE : Nourrissez l’enfant, changez la couche et laissez un repos suffisant avant le test autant que possible.
    4. Utilisez la position de maintien volant pour les nourrissons de moins de 3 mois qui ont un mauvais contrôle de la tête.
    5. Asseoir les enfants plus âgés sur les genoux d’un parent ou les placer debout lorsque cela est approprié (Figure 2).
    6. Nettoyez le front avec un coton-tige-coton.
    7. Confirmez que les pupilles n’ont pas été dilatées pharmacologiquement.
      REMARQUE : Ne réalisez pas le test de vision du bébé après dilatation de la pupille car la mydriase peut affecter le comportement de fixation et la performance visuelle.
  4. Placement de l’électrode : application du point réfléchissant
    1. Inspectez le point réfléchissant et confirmez qu’il est intact et non contaminé.
    2. Nettoyez le front avant d’appliquer le point réfléchissant.
    3. Nettoyez la peau avant d’appliquer le marqueur réfléchissant pour améliorer l’adhérence et garantir un positionnement précis.
      REMARQUE : Le gel conducteur peut être utilisé comme moyen pratique de nettoyage de la peau, mais il n’est pas nécessaire ; Les nettoyants alternatifs sont acceptés.
    4. Placez le point réfléchissant sur le front à égale distance des deux yeux.
    5. Placez le point réfléchissant à environ 10 mm au-dessus du niveau horizontal des yeux (Figure 6).
    6. Confirmez que le point réfléchissant est bien fixé avant de procéder.
  5. Exécution de l’examen
    1. Cliquez sur l’icône Identifiant patient/Œil et saisissez les informations de l’enfant.
    2. Sélectionnez l’œil à tester. Testez d’abord l’œil droit, puis l’œil gauche.
    3. Couvrez l’autre œil avec un occludeur lors des tests monoculaires.
    4. Assurez-vous que l’occluse ne couvre pas le point réfléchissant.
      REMARQUE : Procéder aux tests binoculaires si les tests monoculaires ne peuvent être réalisés.
    5. Cliquez sur l’icône du test d’acuité visuelle (VA) appropriée selon le groupe d’âge de l’enfant.
    6. Placez l’enfant devant l’appareil de test.
    7. Ajustez la hauteur de la table d’examen et la position du repose-menton jusqu’à ce que les yeux soient centrés dans le cadre de la caméra.
    8. Observez la barre de qualité affichée sur l’écran.
    9. Ajustez la position de l’enfant jusqu’à ce que la barre de qualité soit verte.
      REMARQUE : Une barre verte de qualité indique que le système de suivi oculaire a correctement identifié le point réfléchissant et la pupille(s) (Figure 2E supplémentaire).
    10. Acquisition des réponses de suivi
      1. Appuyez sur ENTRÉE ou cliquez sur Examen pour commencer l’acquisition lorsque la barre de qualité est satisfaisante.
      2. Présentez le stimulus de réseau en mouvement et observez la réponse de suivi.
        REMARQUE : La zone de Gabor se déplace horizontalement, et le suivi actif est indiqué par une courbe de stimulus verte.
      3. Notez si l’enfant suit avec succès le stimulus présenté.
      4. Classez un stimulus comme non observé si l’enfant ne le suit pas dans deux ou plusieurs présentations.
      5. Augmentez la fréquence spatiale d’un pas après deux réponses de suivi réussies ou plus dans trois présentations.
      6. Diminuer la fréquence spatiale d’une étape après deux réponses de suivi infructueuses ou plus dans trois présentations.
        REMARQUE : L’acuité visuelle est déterminée à l’aide d’une procédure d’escalier 2-montée, 1-descendance.
      7. Poursuivez les tests jusqu’à ce qu’au moins deux renversements d’escalier soient obtenus ou que la fréquence spatiale maximale soit atteinte.
      8. Déterminer le seuil d’acuité visuelle comme la fréquence spatiale la plus élevée à laquelle l’enfant démontre systématiquement un suivi réussi.
      9. Notez la valeur finale d’acuité visuelle.
      10. Arrêtez l’acquisition en appuyant sur S ou en cliquant sur Résultats.
    11. Répétez l’examen de l’œil du compagnon lors des tests monoculaires.
    12. Appliquez un nouveau point réfléchissant si le point d’origine n’est plus solidement fixé.
  6. Examen de sortie et rapport
    1. Enlève le point réfléchissant.
    2. Désinfectez l’appuie-tête et le menton à l’aide de coton-tiges imbibés d’alcool.
    3. Examinez les courbes de suivi enregistrées.
      REMARQUE : La courbe grise représente la position du stimulus, la courbe bleue le mouvement des yeux, et la courbe noire le mouvement de la tête (Figure 7).
    4. Vérifiez que les données enregistrées répondent aux critères de qualité prédéfinis.
    5. Générez un rapport contenant les courbes de suivi enregistrées et la valeur finale d’acuité visuelle.
    6. Documentez l’identification du patient, la date de l’examen, l’identification de l’examinateur, le statut d’élève, la vigilance et l’historique clinique pertinent.
    7. Documentez le mode d’examen et les paramètres d’acquisition.
    8. Procédures de gestion des artefacts documentaires et résultats de contrôle qualité.
    9. Documentez le seuil final d’acuité visuelle et les données de suivi à l’appui.
    10. Conservez toutes les données d’examen et rapports selon les procédures institutionnelles.
      REMARQUE : Le signalement doit suivre la liste de contrôle standardisée pour le PhNR et le test de vision pour bébé (Tableau supplémentaire 1).

3. Considérations sur la séquence de tests

  1. Effectuez le test de vision du bébé avant l’examen PhNR lorsque les deux tests sont programmés lors de la même visite.
    REMARQUE : Le test de vision du bébé nécessite le statut de pupille naturelle, tandis que l’examen PhNR nécessite une dilatation pharmacologique de la pupille.
  2. Planifiez plusieurs examens électrophysiologiques dans un ordre qui maximise la coopération du patient et minimise la fatigue.

4. Application du cadre 6E

  1. Appliquer le cadre 6E à d’autres examens électrophysiologiques visuels lorsque cela est approprié.
    REMARQUE : Bien que les instructions logicielles décrites ici soient spécifiques au système, le cadre 6E peut être adapté à toute plateforme conforme à l’ISCEV.

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Résultats

L’utilité clinique du flux de travail 6E a été évaluée en comparant les résultats de l’examen avant et après sa mise en œuvre. Plus précisément, les données PhNR ont été analysées durant la période d’un an avant et celle d’un an suivant l’adoption du protocole 6E (Figure 8), ainsi que les données du test de vision du bébé collectées durant les deux ans avant et après la mise en œuvre (Figure 9).

Après...

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Discussion

Bien que les évaluations de la réponse photopique négative (PhNR) et les évaluations automatisées du réseau par suivi oculaire offrent un potentiel substantiel pour l’évaluation objective de la fonction rétinienne interne et de l’acuité visuelle infantile (AV), le PhNR ne nécessitant ni correction réfractive ni surveillancede la fixation 5 , et les méthodes de suivi oculaire fournissant des mesures fiables sans réponsesverbales 7, ces deux ...

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Déclarations de divulgation

Les auteurs n’ont aucun conflit d’intérêts à divulguer.

Remerciements

Les auteurs souhaitent exprimer leur gratitude à tous les participants et aux personnes travaillant sur ces flux de travail.

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Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
Compound tropicamide eye dropsKingyork Group Hebei Univision Pharmaceutical,Tianjin, China8327304Solution ophtalmique de combinaison fixe contenant du tropicamide à 0,5 % et du chlorhydrate de phényléphrine à 0,5 %. Utilisé pour la dilatation pupillaire et la cycloplégie. 
Durapore3M Deutschland GmbH,Neuss,Germany108099995Ruban médical en tissu non élastique résistant de type soie.
GT20 Conductive PasteGREENTEK, Wuhan, China20142072064Pâte conductrice hydrosoluble pour électrodes non adhésives dans l'examen électrophysiologique
GT5 Conductive GelGREENTEK, Wuhan, China20152072150Gel conducteur combiné pour la préparation de la peau et les enregistrements électrophysiologiques
MonpackOne instrumentMetrovision, Perenchies, France20162160840,K211643Système électrodiagnostique intégré pour l'électrophysiologie visuelle. Prend en charge l'ERG flash à champ complet, l'ERG de motif, l'ERG multifocal, le VEP, le VEP multifocal et l'EOG sensoriel et autres. Utilisé dans les hôpitaux et les cliniques par des ophtalmologistes et des professionnels de santé qualifiés.
Vision Monitor SoftwareMetrovision, Perenchies, FranceMon2018F,K211643Plateforme logicielle intégrée pour l'électrophysiologie visuelle. Contrôle la génération de stimuli (flash, motif, multifocal), acquiert des signaux bioélectriques via jusqu'à 5 canaux et traite les données brutes à l'aide d'algorithmes de filtrage spatial et de rejet d'artefacts. Produit des ondes ERG, VEP, EOG numérisées et autres. 

Références

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