Déclaration éthique :
Tous les participants ont été pleinement informés de l'objectif de notre expérience et ont signé un formulaire de consentement éclairé. Cette recherche a été approuvée par le comité d'éthique de l'hôpital affilié de Longyan de l'université médicale du Fujian (numéro d'approbation : LYREC2023-k007-01). Toutes les procédures ont été réalisées conformément aux lignes directrices, aux réglementations en vigueur et à la Déclaration d'Helsinki.
Inclusion des participants, critères d'éligibilité et collecte des échantillons
Un total de 211 individus diagnostiqués avec un rhume allergique (RA) et de 180 participants en bonne santé (non-RA) ont été recrutés au sein du service d'oto-rhino-laryngologie du cabinet externe de l'Hôpital affilié de Longyan de l'Université médicale du Fujian entre janvier 2023 et mai 2025. Les critères de diagnostic du RA ont été adoptés à partir des lignes directrices de la Société chinoise d'allergologie pour le diagnostic et le traitement du rhume allergique17. Les patients devaient présenter au moins deux symptômes cliniques de RA, notamment des démangeaisons nasales, des éternuements, une congestion nasale ou un écoulement nasal. En outre, l'examen de la muqueuse nasale devait révéler une pâleur et un œdème, et le résultat du test cutané de prick (SPT) ou du test d'IgE sérique devait être positif. Le test de prick a été réalisé par un personnel spécialisé dans la salle de dépistage des allergènes du cabinet externe afin de garantir l'exactitude et la cohérence des résultats. Tous les patients atteints de RA ont rempli le questionnaire sur la qualité de vie dans la rhino-conjonctivite (RQLQ) et ont été évalués selon le score total des symptômes nasaux (TNSS) avec l'aide du personnel médical, et les scores ont été enregistrés pour une analyse ultérieure.
Des volontaires sains subissant des examens physiques de routine à l'hôpital ont été recrutés pour former le groupe sans RA. Les participants éligibles ne présentaient ni antécédents personnels ni familiaux de RA, ni antécédents d'asthme ou d'autres maladies allergiques, ni sinusite chronique ou autres maladies inflammatoires de la cavité nasale, ni infection des voies respiratoires au cours du mois précédent. De plus, les personnes ayant des antécédents de maladies graves cardiaques, hépatiques, pulmonaires ou rénales, ou de toute tumeur maligne, ont été exclues de l'étude.
Des échantillons de sang veineux périphérique ont été prélevés chez les deux groupes de volontaires. Une partie du sang veineux anticoagulé a été utilisée pour l'extraction de l'ADN et l'extraction de l'ARN plasmatique. Une autre partie du sang veineux a été séparée afin d'obtenir du sérum, utilisé pour la détection de facteurs sériques (immunoglobuline E (IgE), interleukine-4 (IL-4), IL-6 et IL-10).
Extraction de l'ADN :
200 µL d'échantillons de sang veineux périphérique ont été utilisés pour l'extraction de l'ADN à l'aide d'un kit d'extraction de l'ADN génomique à partir de sang total (voir Tableau des matériels). Les échantillons de sang ont été recueillis dans des tubes anticoagulants contenant de l'héparinate de lithium, puis aliquotés et congelés à -20 °C pour stockage. Les procédures opérationnelles spécifiques doivent strictement suivre les instructions du kit. Enfin, 100 µL de tampon d'élution ont été utilisés pour éluer l'ADN. La pureté des échantillons d'ADN extraits a été déterminée à l'aide d'un analyseur d'acides nucléiques/protéines (spectrophotomètre) (le rapport OD₂₆₀/OD₂₈₀ se situait entre 1,8 et 2,0). Les échantillons d'ADN après analyse ont été stockés à -20 °C en vue de leur utilisation ultérieure dans les expériences de génotypage ultérieures.
Détection du génotype
Un kit de génotypage SNP TaqMan était disponible pour détecter la répartition des génotypes miR-146a rs2910164. Les informations relatives au kit ont été saisies dans la liste des consommables. Le volume total de la réaction PCR était de 10 µL, contenant 5 µL de Master Mix, 0,5 µL de mélange d'amorces et de sondes de typage, 10 ng d'ADN matrice et de l'eau sans RNase. L'amplification de l'ADN a été réalisée à l'aide de l'appareil de PCR quantitative en temps réel Roche LightCycler 480 II avec détection fluorescente. Conditions de réaction : dénaturation initiale à 95 °C pendant 10 min ; 40 cycles (15 secondes à 95 °C, 1 min à 60 °C), avec lecture de la fluorescence FAM/VIC à 60 °C. Une fois l'amplification terminée, les signaux de double fluorescence FAM/VIC recueillis ont été analysés à l'aide du logiciel LightCycler 480, et les données de génotype ont été traitées statistiquement. Un signal FAM unique représente un génotype homozygote, un signal VIC unique représente un autre génotype homozygote, et la présence des deux signaux indique un génotype hétérozygote. Les échantillons présentant des signaux anormaux ou des résultats incohérents lors de la répétition seront testés à nouveau. Chaque expérience a été réalisée en incluant un contrôle sans matrice et un contrôle positif pour assurer la qualité. Tous les échantillons ont fait l'objet de trois réplicats techniques.
RT-qPCR
L'extraction totale des microARN (miARN) du plasma a été réalisée à partir de 100 µL de plasma en utilisant un kit dédié d'extraction de miARN. Les informations relatives au kit ont été saisies dans la liste des consommables. La concentration en ARN a été déterminée à l'aide d'un spectrophotomètre. Le rapport OD₂₆₀/OD₂₈₀ des échantillons de miARN extraits et validés était compris entre 1,8 et 2,0. Une quantité de 200 ng d'ARN a été utilisée pour la transcription inverse afin de synthétiser l'ADN complémentaire (ADNc), selon les instructions standard du kit. La transcription inverse a été effectuée dans un volume total de 20 µL, comprenant une incubation à 42 °C pendant 60 min, suivie d'une inactivation à 85 °C pendant 5 min. La réaction de qPCR a été préparée selon le protocole établi, dans un volume total de 20 µL. Le mélange réactionnel a été préparé comme suit : 10 µL de pré-mélange pour qPCR, 0,4 µL d'amorce sens, 0,4 µL d'amorce antisens, 1 µL de matrice d'ADNc et 8,2 µL d'eau sans RNase. Des amorces spécifiques pour miR-146a et le gène de référence interne U6 ont été utilisées. L'amplification a été réalisée à l'aide de l'appareil de PCR quantitative en temps réel Roche LightCycler 480 II. Les conditions de cyclage thermique en qPCR étaient les suivantes : dénaturation initiale à 95 °C pendant 30 s, suivie de 40 cycles de dénaturation à 95 °C pendant 5 s et d'hybridation-élongation à 60 °C pendant 30 s. Tous les échantillons ont fait l'objet de trois réplicats techniques. Les données expérimentales ont été analysées à l'aide du logiciel LightCycler 480. En utilisant U6 comme référence interne pour corriger les variations entre échantillons, on calcule d'abord ΔCt (valeur de Ct de miR-146a - valeur de Ct de U6), puis ΔΔCt (ΔCt du groupe expérimental - ΔCt du groupe témoin), et enfin le niveau d'expression relative de miR-146a est obtenu par 2⁻ΔΔCt.
ELISA
Les concentrations sériques d'IgE, d'IL-4, d'IL-6 et d'IL-10 ont été mesurées à l'aide de kits ELISA. Les procédures expérimentales ont été réalisées conformément au mode d'emploi. Les étapes spécifiques étaient les suivantes : premièrement, la solution de lavage concentrée a été diluée, et les standards ont été dilués de manière progressive afin de préparer les solutions de travail pour la courbe d'étalonnage. Deuxièmement, 50 µL de diluant, de solution standard et d'échantillon à tester ont été ajoutés dans les puits et incubés à 37 °C pendant 60 min. Après l'incubation, les puits ont été lavés trois fois avec la solution de lavage. Ensuite, 50 µL de solution de travail d'anticorps marqué par une enzyme ont été ajoutés, puis les plaques ont été incubées à 37 °C pendant 30 min. Une fois l'incubation terminée, le liquide a été éliminé, les puits ont été lavés à nouveau, puis la solution chromogène a été ajoutée et incubée pendant 15 min à 37 °C à l'abri de la lumière. Après l'ajout de la solution d'arrêt, l'absorbance a été mesurée à 450 nm à l'aide d'un lecteur de microplaques. Les concentrations des échantillons ont été calculées à partir de la courbe d'étalonnage. Chaque échantillon a été testé trois fois. Les données présentant un coefficient de variation inférieur à 10 % ont été considérées comme valides. Des puits témoins et des puits blancs ont été prévus durant l'expérience pour le contrôle qualité. La plage de détection et la sensibilité du kit étaient conformes aux spécifications indiquées dans le manuel du fabricant.
Statistiques des données
Les données expérimentales ont été analysées à l'aide des logiciels SPSS et GraphPad Prism 9. Les données sont présentées sous forme de moyenne ± écart-type (moyenne ± SD). Le test de Shapiro-Wilk a été utilisé pour évaluer la normalité des variables continues, et le test de Levene a été appliqué pour vérifier l'homogénéité des variances. La comparaison des variables continues entre les deux groupes a été effectuée à l'aide du test t pour échantillons indépendants. Une ANOVA à un facteur suivie du test post-hoc de Tukey a été réalisée pour les comparaisons entre plusieurs groupes, et une ANOVA à deux facteurs a été utilisée pour évaluer les effets principaux de deux facteurs indépendants ainsi que leur effet d'interaction. Les valeurs aberrantes ont été identifiées et exclues selon la règle des 3 écarts-types. Aucune donnée manquante n'a été détectée dans cette étude. La courbe caractéristique de fonctionnement du récepteur (ROC) a été utilisée pour analyser l'efficacité diagnostique de miR-146a dans la rhinite allergique (AR). Les paramètres pertinents de la courbe ROC et les intervalles de confiance à 95 % ont été calculés à l'aide d'algorithmes statistiques intégrés. Une analyse de corrélation de Pearson a été utilisée pour mesurer la corrélation linéaire entre l'expression de miR-146a et les concentrations des facteurs sériques. Des analyses de régression logistique univariée et multivariée ont été menées pour identifier les facteurs de risque de la rhinite allergique (AR). Les variables présentant une valeur p < 0,05 lors de l'analyse univariée ont été incluses dans le modèle de régression logistique multivariée. Une valeur de p < 0,05 a été considérée comme statistiquement significative.