Matériaux et conception expérimentale
La bagasse de canne à sucre a été utilisée comme source de déchets lignocellulosiques pour la préparation de la nanocellulose. La bagasse fraîche était lavée avec de l’eau du robinet et de l’eau déionisée, séchée à 60 °C pendant 24 heures, découpée en fragments de 1 à 2 cm, broyée et passée à travers un tamis à 40 mailles. La poudre séchée était stockée dans des sachets de polyéthylène scellés avec du gel de silice à température ambiante et utilisée dans un délai d’un mois. Tous les réactifs, matériaux et équipements utilisés dans cette étude sont listés dans le fichier Tableau des matériaux .
Sauf indication contraire, tous les produits chimiques étaient de qualité analytique et utilisés tels que reçus. L’hydroxyde de sodium, le peroxyde d’hydrogène, l’acide acétique, le nitrate d’argent, le borohydrure de sodium, le 4-nitrophénol, le bleu de méthylène, le nitrate de plomb, l’acide chlorhydrique, l’acide nitrique, le chlorure de sodium, le chlorure de calcium, le chlorure de magnésium, l’éthanol, le réactif Folin-Ciocalteu, le carbonate de sodium et l’acide gaulique ont été utilisés pour le prétraitement, la charge en ag, les tests catalytiques, l’adsorption, la régénération et l’étalonnage analytique. Le nitrate d’argent (réactif ACS, ≥99,0 %), le borohydrure de sodium (≥98,0 %), le réactif Folin-Ciocalteu (1,9–2,1 N) et les spécifications standard de l’acide galoi sont listés dans le tableau des matériaux. Le chitosane, avec un degré de déacétylation de 85 % à 90 %, a été utilisé comme biopolymère secondaire. Les feuilles de thé vert ont été utilisées pour préparer l’extrait aqueux réducteur à la formation de nanoparticules d’Ag, car les polyphénols du thé peuvent agir comme agents réducteurs et stabilisateurs lors de la synthèsed’AgNP 13. Le flux de travail global comprenait l’extraction de cellulose, la préparation de la nanocellulose, la fabrication d’aérogels, la charge d’AgNP, la caractérisation structurelle et les tests fonctionnels, comme illustré à la Figure 1. Les compositions d’échantillons et les paramètres de préparation sont listés dans le Tableau 1.
La bagasse de canne à sucre était prétraitée par lavage, séchage, mouture, traitement alcalin et blanchiment au peroxyde d’hydrogène pour obtenir une pulpe riche en cellulose. La pâte a été transformée en nanocellulose dérivée des déchets par homogénéisation et sonication à haute pression, puis combinée avec le chitosane pour fabriquer des aérogels de nanocellulose/chitosane par congélation et lyophilisation. Les nanoparticules d’agriculture ont été chargées in situ en utilisant de l’AgNO₃ et un extrait de thé vert standardisé comme milieu réducteur. Les aérogels obtenus ont été évalués par des caractérisations structurelles, chimiques, thermiques et mécaniques multimodales, suivies d’évaluations antibactériennes, catalytiques, d’adsorption, de régénération et de libération d’Ag. Ag-WNC/CS-A-3 a été sélectionnée comme formulation optimisée d’aérogel multifonctionnel.
Préparation d’une pulpe riche en cellulose
La poudre de bagasse séchée a été traitée avec un NaOH à 4 % en poids, avec un ratio solide/liquide de 1:20 g/mL. Le mélange a été chauffé à 80 °C pendant 3 heures sous remuage à 500 tr/min. Les fibres traitées étaient filtrées et lavées à l’eau déionisée jusqu’à ce que le filtrat atteigne un pH de 7,0 ± 0,2, puis séchées à 60 °C pendant 12 heures.
Les fibres traitées aux alcalis ont été blanchies avec 3 % de H₂O₂ en poids à pH 11,0 ± 0,2 et 80 °C pendant 2 heures. Le processus de blanchiment a été répété deux fois. La pulpe riche en cellulose obtenue était lavée jusqu’à un pH neutre et stockée dans de l’eau déionisée à 4 °C pendant un maximum de 7 jours. Les contenus en cellulose, hémicellulose, lignine et cendres ont été déterminés par analyse compositionnelle gravimétrique afin de confirmer l’élimination des composants noncellulosiques 14.
Le rendement de la pulpe était calculé comme suit :
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Préparation de nanocellulose dérivée des déchets
Une pâte de cellulose humide équivalente à 5,0 g de masse sèche a été dispersée dans 500 mL d’eau déionisée et pré-homogénisée à 10 000 tr/min pendant 10 minutes. La suspension a ensuite été traitée par homogénéisation à haute pression : deux passages à 300 bars, trois passages à 600 bars, et cinq passages à 900 bars. La température de sortie était maintenue en dessous de 35 °C grâce à un système de circulation de l’eau glacée.
La suspension homogénéisée était sonifiée à 400 W pendant 10 minutes en mode impulsion, avec 3 s allumées et 3 s éteintes. Le navire était maintenu dans un bain de glace pendant la sonication. La suspension finale a été diluée à 1,0 % en poids et stockée à 4 °C. Les suspensions montrant une sédimentation visible ou une séparation de phase après 24 heures ont été supprimées. La préparation de la nanocellulose n’a été acceptée que lorsque le diamètre moyen de la fibre TEM était inférieur à 50 nm et que le potentiel zêta absolu dépassait 25 mV.
Le rendement de la nanocellulose était calculé comme suit :
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Préparation et standardisation de l’extrait de thé vert
La poudre de thé vert, 5,0 g, a été ajoutée à 100 mL d’eau déionisée et chauffée à 80 °C pendant 30 minutes. L’extrait était refroidi, filtré à travers du papier filtre Whatman n°1, centrifugé à environ 7 500 × g pendant 10 minutes (équivalent à environ 8 000 tr/min pour un rayon de rotor de 10,5 cm), filtré à travers une membrane de 0,45 μm, puis stocké à 4 °C pendant un maximum de 48 heures.
La teneur en phénoliques totale a été mesurée à l’aide de la méthode de Folin-Ciocalteu. En résumé, 0,5 mL d’extrait dilué a été mélangé avec 2,5 mL de réactif Folin-Ciocalteu dilué et 2,0 mL de carbonate de sodium à 7,5 % en poids. Après incubation dans l’obscurité pendant 30 minutes, l’absorbance a été mesurée à 765 nm. L’acide gaulois était utilisé comme référence. Seuls les lots d’extraits ayant une teneur en phénolique totale inférieure à ±10 % de la moyenne du lot ont été utilisés pour la réduction de l’AgNP.
Fabrication d’aérogels de nanocellulose/chitosan
Le chitosan a été dissous dans de l’acide acétique à 1,0 vol % pour préparer une solution à 1,0 % en poids, puis remué toute la nuit. La solution était filtrée à travers un maillage en nylon de 100 μm avant utilisation.
Pour la préparation WNC/CS-A, 80 mL de suspension nanocellulose à 1,0 % en poids ont été mélangés avec 20 mL de solution chitosane à 1,0 % en poids à 600 tr/min. Le pH a été ajusté par goutte à 5,5 ± 0,2 à l’aide de 0,1 M de NaOH à un taux inférieur à 0,5 mL/min. Le mélange était jeté si une floculation visible ou une séparation de phase apparaissaient dans les 30 minutes.
Un volume fixe de 5,0 mL de dispersion a été versé dans des moules cylindriques en polypropylène d’un diamètre intérieur de 20 mm et d’une hauteur de 20 mm. Les échantillons ont été congelés à -80 °C pendant 12 h et lyophilisés à -55 °C pendant 48 h sous une pression de chambre inférieure à 20 Pa. Le lyophilisation a été utilisé pour préserver le réseau poreux de nanocellulose lors de la formationd’aérogel 15. WNC-A a été préparé selon la même procédure sans chitosan. L’aérogel sec n’a été accepté que lorsqu’il conservait une forme monolithique et présentait un retrait en hauteur inférieur à 20 %.
Charge verte in situ des nanoparticules d’Ag
Les monolithes séchés de WNC/CS-A ont été immergés dans 30 mL de solution d’AgNO₃ à 1, 3 ou 5 mM pendant 6 heures dans l’obscurité. Les aérogels ont ensuite été transférés dans 30 mL d’extrait standardisé de thé vert et ont réagi à 50 °C pendant 4 heures dans l’obscurité. Après la réduction, les échantillons ont été lavés cinq fois à l’eau déionisée, congelés à -80 °C pendant 6 heures, puis lyophilisés à -55 °C pendant 36 heures. Les derniers échantillons étaient codés Ag-WNC/CS-A-1, Ag-WNC/CS-A-3 et Ag-WNC/CS-A-5. L’immobilisation de l’Ag dans les aérogels de cellulose améliore la récupération du catalyseur et réduit la perte de nanoparticules par rapport aux systèmes AgNPnon supportés 16.
La charge d’ag a été quantifiée par spectroscopie d’émission plasma optique couplée inductivement (ICP-OES). Environ 20 mg d’aérogel chargé en Ag ont été digérés dans de l’acide nitrique dilué à 80 °C, dilués à 50 mL, puis analysés à l’aide d’une courbe d’étalonnage Ag de 0,01–5,0 mg/L. L’efficacité de charge Ag a été calculée comme suit :
(3)
Les indicateurs de procédé vert utilisés pour le rendement, l’utilisation des réactifs, la charge agricole, la libération agricole et l’évaluation de la réutilisation sont résumés dans le tableau 2.
Densité, porosité, absorption d’eau et stabilité dimensionnelle
La densité d’aérogel a été calculée à partir de la masse sèche et du volume géométrique. Les échantillons étaient séchés à 60 °C pendant 6 heures, refroidis dans un dessiccateur, puis mesurés à l’aide d’un étrier numérique à trois positions.
(4)
La porosité était estimée comme suit :
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où ρs a été pris comme 1,50 g/cm 3 pour les solides à base de cellulose.
L’absorption d’eau était mesurée en immergeant des aérogels secs dans de l’eau déionisée pendant 24 heures. Les échantillons ont été tapotés pendant 10 secondes et pesés immédiatement.
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où Ws etW d sont les poids des aérosols humides et secs. La stabilité dimensionnelle a été évaluée en comparant la hauteur et le diamètre avant et après immersion. Au moins cinq monolithes ont été testés par groupe.
Caractérisation morphologique et des structures poreuses
La morphologie de la nanocellulose a été observée par le TEM. Une suspension de 0,005 % en poids a été déposée sur une grille en cuivre revêtue de carbone, colorée à l’acide phosphotungstique à 1 % en poids pendant 60 s, séchée et imagée à 80–120 kV. Au moins 100 fibres issues de trois suspensions indépendantes ont été mesurées à l’aide de la version 1.54 d’ImageJ.
La morphologie des aérogels a été observée par le MEB. Les échantillons ont été fracturés dans de l’azote liquide, montés sur des morceaux d’aluminium, recouverts de sputter d’or pendant 60 s, et imagés à 5–10 kV. Au moins cinq champs ont été enregistrés par échantillon. Une cartographie EDS a été réalisée pour déterminer la répartition des Ag, C, O et N.
L’analyse d’adsorption-désorption d’azote a été réalisée à 77 K. Les échantillons ont été dégazés à 60 °C pendant 12 heures avant analyse. La surface de BET et la distribution de la taille des pores de Barrett-Joyner-Halenda (BJH) ont été calculées car l’accessibilité des pores affecte directement l’adsorption et la performance catalytique dans les aérogels decellulose 17.
FTIR, XRD, XPS et TGA
Des spectres FTIR ont été collectés en mode ATR de 4000 cm-1 à 500 cm-1 à une résolution de 4 cm-1 avec 32 scans par échantillon. Les spectres ont été corrigés à la base et normalisés dans la bande C-O-C de la cellulose autour de 1050 cm-1. La FTIR a été utilisée pour évaluer les groupes fonctionnels liés à la cellulose et à la chitosan ; La formation de l’agriculture a été confirmée par XRD, XPS, EDS et ICP-OES.
La XRD a été réalisée avec du rayonnement cu K-alpha à 40 kV et 40 mA. Les échantillons ont été analysés de 5° à 80° à 5°/min. L’indice de cristallinité de la cellulose a été calculé par la méthode Segal. L’Ag métallique cristallin n’était attribué que lorsque des pics de diffraction proches de 38,1°, 44,3° et 64,4° étaient détectables, et la formation de l’Ag était interprétée conjointement avec XPS, la cartographie EDS et l’ICP-OES plutôt que par la seule XRD.
Le XPS était utilisé pour déterminer la composition élémentaire de surface. Les spectres d’étude ont été enregistrés de 0 eV à 1200 eV, et des spectres haute résolution ont été collectés pour les C 1, O 1, N 1 et Ag 3d. Les énergies de liaison étaient calibrées en C 1s à 284,8 eV. L’ajustement de pointe a été effectué avec la version 2.3.25 de CasaXPS. L’ajustement Ag 3d a été utilisé comme preuve d’appui pour les espèces agricoles de surface ; comme l’analyse des paramètres Auger n’a pas été incluse, les contributions relatives de l’Ag0 métallique et des espèces Ag oxydées ont été interprétées avec prudence.
La TGA a été réalisée sous azote de 30 °C à 700 °C à 10 °C/min. Environ 5 à 8 mg d’échantillon séché ont été utilisés à chaque tir. La température de dégradation d’initiation, la température maximale de dégradation et la masse résiduelle à 700 °C ont été enregistrées.
Essais mécaniques
Les tests de compression étaient réalisés à l’aide d’une machine d’essai universelle équipée d’une cellule de charge de 100 N. Des échantillons cylindriques de 20 mm de diamètre et 20 mm de hauteur ont été comprimés à 50 % de déformation à 2 mm/min. La contrainte de compression à 50 % de déformation et le module de Young en dessous de 10 % de déformation ont été calculés.
La compression cyclique a été réalisée pendant cinq cycles de chargement-déchargement à 50 % de déformation. La récupération de forme était calculée à partir de la hauteur récupérée après chaque cycle. Au moins cinq spécimens ont été testés par groupe. Les échantillons présentant des glissements, déchirures des bords avant 20 % de déformation ou défauts visibles ont été exclus. Des essais mécaniques ont été utilisés pour évaluer la stabilité de la maniabilité lors de l’immersion, de la récupération etde la réutilisation 18.
Essai antibactérien
L’activité antibactérienne a été évaluée contre Escherichia coli et Staphylococcus aureus. Les bactéries ont été cultivées dans un bouillon Luria-Bertani (LB) à 37 °C pendant la nuit et diluées à environ 1 × 106 UFC/mL. La concentration a été vérifiée par comptage des plaques.
Les disques d’aérogel de 10 mm de diamètre et 3 mm d’épaisseur ont été stérilisés par irradiation UV pendant 30 minutes de chaque côté. La stérilité a été confirmée en incubant des aérogels traités dans un bouillon LB à 37 °C pendant 24 heures.
Pour les tests de contact tuant, des disques aérogel stériles ont été incubés dans 2 mL de suspension bactérienne à 37 °C pendant 4 heures, secoués à 120 tr/min. La suspension était diluée en série, plaquée sur LB agar, puis incubée à 37 °C pendant 24 heures. La réduction bactérienne a été calculée comme suit :
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Les témoins comprenaient PBS uniquement, un disque stérile en papier filtrant, WNC-A, WNC/CS-A, une solution d’AgNO₃ avec une concentration d’AgNO₃ équivalente à la libération mesurée d’Ag-WNC/CS-A-3, ainsi qu’un disque antibiotique commercial.
Pour les tests en zone d’inhibition, des disques d’aérogel ont été placés sur des plaques d’agar étalées avec 100 μL de suspension bactérienne. Les plaques ont été incubées à 37 °C pendant 24 heures, et les diamètres des zones d’inhibition ont été mesurés. Chaque test utilisait trois lots indépendants d’aérogel avec des triplicates techniques. Les tests de contact tuant et de zone d’inhibition ont été utilisés car les espèces de contact en surface et d’Ag libérées peuvent contribuer différemment à l’activitéantibactérienne 19.
Réduction catalytique du 4-nitrophénol
L’activité catalytique a été évaluée en réduisant le 4-nitrophénol au 4-aminophénol. Une solution de 4-nitrophénol de 0,10 mM a été mélangée avec du NaBH₄ fraîchement préparé pour obtenir une concentration finale de NaBH₄ de 10 mM. NaBH₄ a été utilisé dans les 30 minutes suivant la préparation. La réaction était protégée de la lumière directe.
Un échantillon d’aérogel de 10,0 mg ± 0,5 mg a été ajouté à 10 mL de solution de réaction à température ambiante. À intervalles de 1 minute, 1 mL d’aliquotes étaient mesurées par spectroscopie UV-Vis de 250 nm à 500 nm et renvoyées dans le récipient de réaction. L’absorption à 400 nm a été utilisée pour surveiller la conversion.
Les témoins comprenaient une réaction sans aérogel, WNC-A, WNC/CS-A, et un contrôle d’adsorption parallèle sans NaBH4 pour distinguer la réduction catalytique de l’adsorption de 4-nitrophénol. Le contrôle d’adsorption sans NaBH4 a été traité comme un blanc à élimination physique ; seule la diminution supplémentaire du système contenant NaBH4 a été interprétée comme une conversion catalytique. La constante de taux pseudo-du premier ordre était calculée comme suit :

La conversion était calculée comme suit :
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Le test de réduction du 4-nitrophénol a été sélectionné car il s’agit d’une réaction standard traçable UV-Vis pour évaluer les catalyseurs Agsupportés 20.
Réutilisation catalytique
L’AG-WNC/CS-A-3 a été réutilisé pendant cinq cycles catalytiques. Après chaque cycle, l’aérogel était retiré, lavé trois fois avec de l’eau déionisée, immergé dans l’eau déionisée pendant 10 minutes, puis lyophilisé à −55 °C pendant 12 heures. La conversion à 15 minutes et l’application k ont été enregistrées pour chaque cycle.
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Après cinq cycles, l’aérogel utilisé a été analysé par le MEB et l’ICP-OES afin d’évaluer la rétention structurelle et la perte d’Ag.
Adsorption bleu de méthylène
Le bleu de méthylène a été utilisé comme colorant modèle cationique. De l’aérogel séché, 20,0 mg ± 0,5 mg, a été ajouté à 50 mL de solution de 50 mg/L MB à un pH de 7,0 ± 0,2. Le mélange a été secoué à 150 tr/min et à 25 ± 1 °C.
À 5, 10, 20, 30, 60, 90, 120 et 180 minutes, 1 mL d’aliquotes ont été prélevées, filtrées à travers une membrane de 0,22 μm et mesurées à 664 nm. La concentration en MB a été calculée à l’aide d’une courbe d’étalonnage de 1 à 50 mg/L avec R2 ≥ 0,995.
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Les données cinétiques ont été ajustées à l’aide de modèles pseudo-premier et pseudo-second ordre. La sélection du modèle a pris en compte R2, l’accord entre q_e calculé et expérimental, ainsi que la distribution résiduelle. MB a été choisi car les aérogels nanocellulose sont couramment évalués pour l’élimination des colorants par interaction électrostatique, liaisons hydrogène et diffusionporeuse de réseau 21.
Adsorption Pb(II)
L’adsorption de Pb(II) a été testée avec une solution de nitrate de plomb. Une solution de fond de 1000 mg/L était diluée avant utilisation. Un aérogel séché, 20,0 mg ± 0,5 mg, a été ajouté à 50 mL de solution 50 mg/L de Pb(II) au pH 5,5 ± 0,2. Le mélange a été secoué à 150 tr/min et à 25 °C ± 1 °C pendant 180 minutes.
Les aliquotes ont été filtrées à travers une membrane de 0,22 μm, acidifiées avec 1 vol % d’acide nitrique, puis analysées par ICP-OES. Des contrôles vierges sans aérogel ont été exécutés au même pH initial que les échantillons d’adsorption, et des contrôles sans Pb(II) ont été inclus pour vérifier les signaux de fond.
Pour l’analyse isotherme, des concentrations de Pb(II) de 10, 25, 50, 75, 100 et 150 mg/L ont été testées pendant 24 heures. Les modèles de Langmuir et de Freundlich ont été utilisés pour l’ajustement d’équilibre. Pb(II) a été utilisé pour évaluer la liaison par des groupes contenant de l’oxygène et de l’azote au sein du réseaud’aérogel 22. Parce que le risque de spéciation et de précipitation de Pb(II) est sensible au pH et au temps de contact, Pb(II) a été principalement interprété à partir de données d’extrémité et d’équilibre/isotherme contrôlées par pH ; Les paramètres du modèle cinétique sont donc rapportés uniquement pour les MB.
pH, ions coexistants et effets de la matrice d’eau
L’effet du pH a été testé à pH 3,0, 5,0, 7,0 et 9,0 pour MB, et à pH 3,0, 4,5, 5,5 et 6,5 pour Pb(II). L’adsorption de Pb(II) n’a pas été testée dans des conditions alcalines pour éviter les précipitations. Le pH initial et final ont été enregistrés, et les séances d’adsorption ont été répétées lorsque la dérive du pH dépassait 0,5 unité. Des témoins blancs à pH même sans aérogel ont été utilisés pour distinguer l’adsorption d’aérogel de la perte ou précipitation de Pb(II) dépendante du pH.
L’effet des ions coexistants a été évalué en ajoutant 10 mM de NaCl, 5 mM de CaCl₂ ou 5 mM de MgCl₂. Une condition à ions mixtes contenant les trois sels a également été testée. Les eaux usées simulées contenaient 10 mM de NaCl, 2 mM de CaCl₂, 2 mM de MgCl₂ et 5 mg/L d’acide humique. Le pH a été ajusté à 7,0 ± 0,2 pour MB et 5,5 ± 0,2 pour Pb(II). Ces tests ont été inclus pour évaluer la performance d’adsorption sous des matrices d’eau pluscomplexes 23.
Régénération par adsorption
Ag-WNC/CS-A-3 a été régénéré pendant cinq cycles d’adsorption. Pour MB, les aérogels chargés étaient immergés dans une solution d’éthanol/eau de 30 mL à 50:50 v/v pendant 2 heures. Pour Pb(II), les aérogels chargés ont été immergés dans 30 mL de 0,05 M HCl pendant 1 heure et lavés à pH 6,5–7,0. Après chaque étape de régénération, les échantillons étaient lyophilisés à -55 °C pendant 12 heures.
(11)
La masse sèche d’aérogel a été enregistrée avant et après chaque cycle. Les échantillons présentant un effondrement visible, une fragmentation ou une perte de masse sèche supérieure à 15 % ont été classés comme structurellement défaillants.
Libération agricole
La libération d’Ag a été testée en immergeant 20,0 ± 0,5 mg d’aérogel chargé en Ag dans 50 mL d’eau déionisée, une solution de NaCl à 0,9 % en poids, ou un tampon acétate pH 5,5 à 25 ± 1 °C. À 24 h et 72 h, 2 mL d’aliquotes ont été prélevées, acidifiées avec 1 vol % d’acide nitrique, puis analysées par ICP-OES. Le volume échantillonné a été remplacé par un nouveau substrat.
La libération d’Ag était rapportée en μg/L et en pourcentage du total chargé d’Ag :
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Ce test a été utilisé pour évaluer si une augmentation de la charge en Ag causait un lessivage Ag inutile tout en maintenant des performances antibactériennes etcatalytiques 24.
Logiciels et traitement des données
Les images SEM et TEM ont été analysées à l’aide de la version 1.54 d’ImageJ. Les spectres FTIR, les motifs XRD, les courbes cinétiques UV–Vis, la cinétique d’adsorption et les graphiques isothermes ont été traités à l’aide d’OriginPro 2024. Les spectres XPS ont été installés avec la version 2.3.25 de CasaXPS. L’analyse statistique et la préparation du graphe ont été réalisées à l’aide de GraphPad Prism 10.
Pour l’ajustement par adsorption, les modèles n’ont pas été sélectionnés uniquement parR2 . L’accord entre la capacité d’adsorption expérimentale et calculée, la distribution des résidus et la plausibilité physique des paramètres a également été prisen compte 25.
Contrôle qualité et analyse statistique
Toutes les expériences ont été réalisées avec des aérogels provenant d’au moins trois lots de fabrication indépendants. Les tests physiques et mécaniques ont utilisé cinq échantillons par groupe. Les tests antibactérien, catalytique, d’adsorption, de régénération et de libération d’Ag utilisaient trois lots indépendants avec des triplicates techniques lorsque cela était applicable.
Les lots d’aérogel n’ont été acceptés que lorsque la variation de densité sèche au sein du même groupe était inférieure à 15 %. Les plaques antibactériennes ont été acceptées lorsque le nombre de colonies était inférieur à 30–300 UFC. Les essais catalytiques ont été répétés lorsque l’absorption initiale à 400 nm variait de plus de 10 % par rapport à la moyenne du lot. Les tests d’adsorption ont été répétés lorsque la dérive du pH dépassait 0,5 unité. Les courbes d’étalonnage ICP-OES et UV–Vis nécessitaient R2 ≥ 0,995.
Les données sont présentées en moyenne ± écart-type. La normalité a été évaluée à l’aide du test de Shapiro–Wilk. Les données normalement distribuées ont été analysées par ANOVA unidirectionnelle suivies du test post hoc de Tukey. Les données non normales ont été analysées par le test de Kruskal-Wallis suivi par le test de comparaison multiple de Dunn. Une valeur p inférieure à 0,05 était considérée comme statistiquement significative. Aucun cas exceptionnel n’a été supprimé sauf si une raison technique documentée était présente.