Ce protocole compare les lasers à diode, au thulium et à l'erbium pour la désinfection intracanalaire dans un modèle ex vivo de canal radiculaire contaminé par Enterococcus faecalis, en évaluant l'efficacité antibactérienne et la température à la surface externe de la racine afin d'identifier des paramètres d'irradiation sûrs et efficaces.
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Article de recherche
Lasers au thulium, à l'erbium et à diode pour la décontamination endocanal : activité anti-Enterococcus faecalis et sécurité thermique ex vivo
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11 septembre 2026
Dans cet article
Résumé
Résumé
L'irrigation assistée par laser s'est imposée comme un adjuvant prometteur pour la désinfection des canaux radiculaires ; toutefois, les données comparant directement différents systèmes laser dans des conditions expérimentales standardisées restent limitées. Cette étude ex vivo a comparé l'efficacité antibactérienne et la sécurité thermique d'un laser à diode de 808 nm, d'un laser au thulium de 1940 nm et d'un laser à l'erbium de 2940 nm pour la décontamination intracanalaire contre Enterococcus faecalis. Des spécimens humains de canaux radiculaires infectés, standardisés, ont été traités selon des paramètres d'irradiation cliniquement pertinents. L'efficacité antibactérienne a été évaluée par la réduction du nombre d'unités formant colonies (UFC) et par l'analyse des courbes de croissance bactérienne, tandis que la sécurité thermique a été évaluée en mesurant les variations de température à la surface externe de la racine pendant l'irradiation laser. Les trois systèmes laser ont montré une activité antibactérienne supérieure à celle des témoins traités au sérum physiologique. Le laser à l'erbium a obtenu le taux d'inhibition moyen le plus élevé (99,0 %) à 30 mJ pendant 30 s, tout en maintenant l'augmentation de température à la surface externe de la racine en dessous du seuil de sécurité thermique accepté de 10 °C. Le laser au thulium a produit une activité antibactérienne comparable, mais a dépassé le seuil de sécurité thermique à ses réglages d'irradiation les plus élevés. Le laser à diode a montré une efficacité antibactérienne moindre et des augmentations de température plus importantes que les lasers au thulium et à l'erbium dans les conditions testées. Dans les limites de ce modèle ex vivo, le laser à l'erbium de 2940 nm a démontré le meilleur équilibre entre efficacité antibactérienne et sécurité thermique, représentant ainsi une approche adjuvante prometteuse pour la désinfection intracanalaire.
Introduction
La principale cause de la pulpite et de la parodontite apicale est une infection bactérienne du système canalaire radiculaire1. Selon une étude, Enterococcus faecalis a été identifié comme l'isolat bactérien prédominant chez les patients présentant une infection chronique ou récidivante après un traitement endodontique2,3. Cette bactérie possède de nombreux facteurs de virulence, notamment la formation de biofilms ; elle peut pénétrer les tubules dentinaires jusqu'à une profondeur de 800 µm et survivre dans des conditions limitées en nutriments2,3. Ces propriétés contribuent à sa résistance aux désinfectants canalaire standards utilisés pendant le traitement canalaire, ainsi qu'aux mécanismes de défense naturels de l'organisme. Par conséquent, l'incapacité à éliminer complètement tous les E. faecalis résiduels du système canalaire radiculaire constitue une cause importante d'échec du traitement endodontique4.
Le traitement actuel des canaux radiculaires associe un débridement mécanique par instrumentation à une irrigation chimique afin d'éliminer les micro-organismes du système canalaire5. Bien que l'instrumentation mécanique soit très efficace pour réduire les populations bactériennes, de nombreuses zones de l'anatomie complexe du canal radiculaire restent inaccessibles à l'instrumentation seule5. Par conséquent, les agents irrigants chimiques jouent un rôle important dans la désinfection du système canalaire. Des études ont toutefois montré que même les agents chimiques les plus puissants ne parviennent pas à éliminer complètement les biofilms bactériens6. De plus, certains agents chimiques utilisés lors du traitement endodontique peuvent compromettre l'intégrité structurale de la dentine6,7. Afin d'améliorer l'efficacité de la désinfection et d'obtenir une élimination plus complète des biofilms bactériens du système canalaire, plusieurs méthodes d'activation des agents irrigants ont été explorées. Parmi celles-ci, l'irrigation activée par laser s'est révélée l'une des alternatives les plus prometteuses8. Les lasers à diode, au thulium et à l'erbium ont également été évalués quant à leur potentiel de produire des effets photothermiques et photomécaniques capables de perturber les parois cellulaires bactériennes et les biofilms9.
L'interaction entre chacun de ces types de laser et les tissus avec lesquels ils interagissent varie considérablement selon la longueur d'onde. Les lasers à diode, qui émettent généralement de la lumière à des longueurs d'onde comprises entre 808 et 980 nm, sont absorbés par les chromophores présents dans les tissus biologiques, provoquant une réaction photothermique au cours de laquelle les protéines sont dénaturées et les bactéries tuées10. Les lasers au thulium fonctionnent à 1940 nm et présentent une forte absorption par l'eau. Par conséquent, les lasers au thulium se sont révélés particulièrement adaptés aux environnements humides, notamment les canaux radiculaires remplis de solution d'irrigation11. En raison de leur forte absorption de l'eau, les lasers au thulium peuvent rapidement chauffer et vaporiser les fluides lorsqu'ils sont utilisés dans des canaux radiculaires irrigués. Cette vaporisation génère des ondes de choc qui peuvent aider à perturber les biofilms bactériens. Les lasers à l'erbium, en particulier ceux fonctionnant à 2940 nm, possèdent le coefficient d'absorption de l'eau le plus élevé parmi les lasers dentaires12. Dans les canaux irrigués, cette propriété peut provoquer une vaporisation explosive et des ondes de choc qui détachent mécaniquement les bactéries et les tuent, tout en limitant potentiellement la transmission de chaleur à la dentine environnante13.
Bien que l'intérêt pour la technologie laser en endodontie continue de croître, de nombreux aspects restent inconnus concernant les paramètres cliniques optimaux pour les différents systèmes laser. Les méthodes actuelles d'utilisation clinique reposent généralement sur l'expérience empirique ou sur les recommandations des fabricants, avec un soutien limité par des données probantes14. De plus, la plupart des études publiées à ce jour ont évalué les effets antimicrobiens des lasers ; toutefois, un aspect important de la thérapie laser a fait l'objet d'une attention relativement moindre : le risque de lésions thermiques aux tissus parodontaux. Il est généralement admis qu'une augmentation de la température de la surface externe de la racine supérieure à 10 °C peut entraîner des dommages permanents au ligament parodontal et à l'os environnant15. Il semble qu'aucune comparaison directe publiée n'existe à l'heure actuelle entre différents systèmes laser évaluant systématiquement à la fois leur efficacité antimicrobienne et leur sécurité thermique dans des conditions expérimentales contrôlées.
Le but principal de cette étude ex vivo était d'analyser et de comparer l'efficacité antimicrobienne et la sécurité thermique de trois systèmes laser — un laser à diode de 808 nm, un laser au thulium de 1940 nm et un laser à l'erbium de 2940 nm — pour éliminer le biofilm de E. faecalis des parois des canaux radiculaires. Afin d'identifier les combinaisons de paramètres permettant une élimination bactérienne efficace tout en préservant la sécurité thermique, cette étude a évalué des paramètres d'irradiation cliniquement pertinents. On s'attend à ce que ces résultats aident les cliniciens à choisir des approches assistées par laser sûres et efficaces pour la désinfection endodontique.
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Protocole
Cette étude a été menée conformément aux normes éthiques de l'Hôpital municipal n°4 de Shanghai, École de médecine de l'Université Tongji, et a été approuvée par le comité d'éthique institutionnel (numéro d'approbation : 2026013-001). Les dents humaines extraites utilisées dans cette étude ont été collectées auprès de patients ayant subi une extraction dentaire pour des raisons orthodontiques ou parodontologiques. Un consentement éclairé écrit a été obtenu de tous les participants avant la collecte des échantillons. Aucune intervention clinique supplémentaire n'a été réalisée dans le cadre de cette étude. L'étude a été menée conformément aux exigences institutionnelles relatives à l'utilisation de dents humaines extraites.
Préparation et critères de sélection des échantillons
Un total de 141 dents permanentes monoradiculaires (incisives mandibulaires et prémolaires) récemment extraites a été reçu du service de stomatologie affilié à l'Université Tongji au Shanghai Fourth People’s Hospital. Toutes les dents ont été extraites pour des raisons orthodontiques ou parodontales. Un consentement éclairé a été obtenu auprès de chaque patient. Ont été incluses dans cette étude les dents dont la racine mesurait au moins dix millimètres, mesurée à l’aide d’un détecteur parodontal, les dents intactes sans lésions carieuses ni fissures, avec une formation radiculaire complète et une courbure radiculaire inférieure à dix degrés selon la méthode de Schneider. Ont été exclues les dents présentant plusieurs canaux, une calcification canalaire, une résorption interne ou un traitement endodontique antérieur. Après l’extraction, tout tartre visible et les résidus de tissus mous ont été éliminés à l’aide d’un instrument parodontal. Les dents ont ensuite été conservées dans une solution saline à 0,9 % à 4 °C jusqu’à leur utilisation afin d’éviter la déshydratation, et toutes les expériences ont été réalisées dans les trois mois suivant l’extraction. Les échantillons ont été répartis dans les groupes expérimentaux selon une séquence prédéfinie d’attribution alternée. Plus précisément, les échantillons ont été attribués séquentiellement à chaque groupe de manière alternée jusqu’à atteindre la taille d’échantillon requise pour chaque groupe. Aucun calcul formel de puissance a priori n’a été effectué. La taille de l’échantillon a été choisie en se basant sur des études ex vivo comparables antérieures, le nombre de combinaisons de paramètres d’irradiation évaluées et la disponibilité des dents extraites éligibles.
Préparation et stérilisation du canal radiculaire
La couronne de chaque dent a été retirée au niveau de la jonction cémento-émail à l’aide d’une scie à diamant à basse vitesse sous refroidissement continu par eau afin d’obtenir un segment radiculaire standardisé de 10 mm. La longueur de travail a été déterminée à 1 mm du foramen apical à l’aide d’un fichier K de taille 10. Les canaux radiculaires ont été préparés à l’aide du système rotatif en nickel-titane ProTaper Universal selon les instructions du fabricant, en suivant la séquence S1, S2, F1, F2 et F3 jusqu’à l’obtention d’une taille apicale de préparation F3. Pendant l’instrumentation, les canaux ont été irrigués avec environ 2 mL d’hypochlorite de sodium à 5,25 % après l’utilisation de chaque fichier rotatif, ce qui a donné un volume total d’irrigation d’environ 10 mL par canal. Un rinçage final a été effectué avec 5 mL d’EDTA à 17 % pendant 1 minute, suivi de 5 mL de solution saline stérile. Le foramen apical a été scellé avec une résine composite fluide afin de créer un système canalaire fermé. Les racines préparées ont été stérilisées par autoclavage à 121 °C pendant 20 minutes, conservées dans une solution saline tamponnée au phosphate stérile (PBS) à 4 °C, puis inoculées avec des bactéries dans les 24 heures suivant la stérilisation.
Souche bactérienne et conditions de culture
E. faecalis ATCC 29212 a été utilisée pour établir le modèle de canal radiculaire infecté. La souche a été cultivée sur gélose au bouillon cerveau-cœur (BHI) à 37 °C pendant 24 h en conditions aérobies. Une colonie isolée a été transférée dans un bouillon BHI et incubée à 37 °C pendant 18 à 24 h. La suspension bactérienne a été ajustée à environ 1,5 × 108 UFC/mL, ce qui correspond à un étalon McFarland 0,5, en utilisant une densité optique à 600 nm (DO600) comprise entre 0,08 et 0,10.
Mise en place de E. faecalis Modèle de canal radiculaire infecté
Pour établir un modèle de biofilm en canal radiculaire infecté, la surface externe de chaque racine stérilisée a été recouverte de deux couches de vernis à ongles incolore afin d'empêcher la pénétration bactérienne à travers le cément. La région apicale a été recouverte après que le foramen apical eut été obturé avec un composite résineux fluide, tandis que l'orifice du canal est resté découvert pour permettre l'inoculation bactérienne. À l'aide d'une micropipette stérile, 10 µL du E. faecalis la suspension a été transférée dans chaque canal radiculaire individuel afin de remplir toute la longueur du canal sans débordement. Les échantillons inoculés ont ensuite été placés individuellement dans des plaques de culture stériles à 24 puits, avec ajout de 1,5 mL de bouillon BHI dans chaque puit. Les échantillons ont été mis en culture à 37°C en conditions aérobies pendant 21 jours. Le milieu de culture a été éliminé et remplacé tous les 2 jours par du bouillon BHI stérile frais afin d'assurer un apport continu en nutriments pour la croissance bactérienne et d'éliminer les débris cellulaires accumulés. Aucune inoculation supplémentaire avec E. faecalis n'a été effectuée lors du changement de milieu. À l'issue de la période d'incubation, tous les échantillons viables ont été lavés une fois au PBS pour éliminer les bactéries planctoniques faiblement adhérentes avant les tests expérimentaux. Deux échantillons choisis aléatoirement ont été utilisés pour visualiser la formation de biofilm mature et la pénétration bactérienne dans les tubules dentinaires par microscopie électronique à balayage (MEB). Les spécimens ont été fixés dans du glutaraldéhyde à 2,5 % à 4°C pendant 24 h, rincés trois fois au PBS, déshydratés par une série graduée d'éthanol (30 %, 50 %, 70 %, 80 %, 90 % et 100 %), chaque étape durant 10 min, puis divisés longitudinalement, séchés à l'air, montés sur des supports en aluminium, recouverts par pulvérisation d'or et examinés au MEB.
Groupes expérimentaux et protocoles d'irradiation laser
Les 135 échantillons de racines infectées ont été répartis en trois groupes expérimentaux principaux selon le système laser utilisé : le groupe laser à diode 808 nm, le groupe laser au thulium 1940 nm et le groupe laser à l'erbium 2940 nm. Chaque groupe laser comprenait 45 échantillons, subdivisés ultérieurement selon les paramètres d'irradiation. Le laser à diode a été utilisé à des puissances moyennes de 1,0, 1,5 ou 2,0 W, chaque réglage de puissance étant appliqué pendant 10, 20 ou 30 s, conduisant à neuf sous-groupes comportant trois échantillons par sous-groupe. Le laser au thulium a été utilisé à des puissances moyennes de 1,5, 2,5 ou 3,5 W, chaque réglage de puissance étant appliqué pendant 10, 20 ou 30 s, donnant également lieu à neuf sous-groupes avec trois échantillons par sous-groupe. Le laser à l'erbium fonctionnait en mode d'impulsion super-courte à une fréquence fixe de 15 Hz. Des énergies d'impulsion de 10, 20 ou 30 mJ ont été appliquées pendant 10, 20 ou 30 s, générant ainsi neuf sous-groupes avec trois échantillons par sous-groupe. Les lasers à diode 808 nm et au thulium 1940 nm ont tous deux fonctionné en mode continu.
Au total, six échantillons supplémentaires ont été inclus, trois échantillons étant attribués à chacun des groupes de contrôle négatif et positif. Le groupe de contrôle négatif a été traité avec une solution saline stérile, tandis que le groupe de contrôle positif a été traité avec de l'hypochlorite de sodium (NaOCl) à 5,25 % pendant 30 s.
Pour les groupes au laser, un protocole d'irradiation standardisé a été suivi. La fibre optique a été introduite dans le canal radiculaire jusqu'à la longueur de travail et déplacée en un mouvement spiralé lent et continu du tiers apical vers le tiers coronal pendant toute la durée de l'irradiation. Des fibres ou embouts spécifiques au laser ont été utilisés plutôt qu'une fibre interchangeable unique. Le laser à diode de 808 nm a été acheminé à travers une fibre émettrice terminale de 200 µm, le laser au thulium de 1940 nm à travers une fibre émettrice terminale de 200 µm, et le laser à l'erbium de 2940 nm à travers un embout émetteur radial de 400 µm. La fibre ou l'embout d'acheminement a été retiré à une vitesse d'environ 1 mm/s. Une fois l'orifice du canal atteint, il a été réinséré jusqu'à la longueur de travail, et le mouvement spiralé apical vers coronal a été répété jusqu'à l'achèvement de la durée d'irradiation prévue.
Pour les lasers au thulium et à l'erbium, les canaux ont été maintenus remplis de sérum physiologique stérile pendant l'irradiation afin de simuler une activation laser assistée par l'eau. Environ 10 µL de sérum physiologique stérile ont été introduits dans chaque canal pour le remplir jusqu'au niveau de l'orifice canalaire avant l'irradiation. Le sérum physiologique a été renouvelé avant chaque cycle d'irradiation, si nécessaire, afin de maintenir un canal rempli de liquide tout au long du traitement. Pour le groupe laser à diode, les canaux ont été séchés à l'aide de points de papier stériles avant l'irradiation, car le laser à diode de 808 nm présente une absorption relativement faible dans l'eau et a été utilisé pour produire un effet antibactérien photothermique direct à l'intérieur du canal. En revanche, les lasers au thulium de 1940 nm et à l'erbium de 2940 nm présentent une absorption dans l'eau nettement plus élevée et ont donc été utilisés dans des canaux remplis de sérum physiologique afin de faciliter des effets photothermiques et photomécaniques médiés par l'eau. Le traitement au laser a été répété une fois par jour pendant trois jours consécutifs.
Mesure de la température de la surface radiculaire externe
Les variations de température en temps réel sur la surface radiculaire externe ont été mesurées pendant la première journée d'irradiation laser. Chaque échantillon radiculaire a été fixé verticalement sur un support d'éprouvette à température ambiante (22 °C ± 1 °C). Un thermocouple de type K relié à un thermomètre numérique a été placé en contact ferme avec le tiers moyen de la surface radiculaire externe, perpendiculairement à l'axe longitudinal de la racine. La sonde du thermocouple a été positionnée à l'aide d'une pince réglable et fixée à la surface de la racine avec un ruban adhésif résistant à la chaleur afin de maintenir un contact ferme et constant tout au long de la mesure. La sonde du thermocouple a été étalonnée avant chaque session de mesure à l'aide d'eau bouillante (100 °C) et d'un mélange glace-eau (0 °C). Les relevés de température ont été enregistrés à des intervalles de 50 ms pendant toute la durée d'irradiation (10, 20 ou 30 s). La température de base et la température maximale enregistrée pendant ou immédiatement après l'irradiation laser ont été mesurées pour chaque échantillon. L'augmentation de température entre la température de base et la température maximale a été calculée sous la forme de ΔT. Une valeur de ΔT supérieure à 10 °C a été considérée comme le seuil pouvant entraîner des lésions des tissus parodontaux.
Évaluation microbiologique : dénombrement des colonies et taux d'inhibition
Afin de déterminer l'effet antibactérien des traitements au laser, des échantillons ont été prélevés après chaque traitement au laser. Le canal a été séché à l’aide de points de papier stériles. Un nouveau fichier stérile Hedström de taille 40 a été utilisé pour chaque prélèvement afin d’obtenir des copeaux de dentine à partir des parois du canal, évitant ainsi toute contamination croisée entre les échantillons. Chaque copeau de dentine a été transféré dans un tube microcentrifuge distinct contenant 1 mL de PBS stérile. Les tubes ont été vigoureusement agités au vortex pendant 30 secondes afin de libérer les bactéries des copeaux de dentine. Des dilutions sériées dix fois successives, allant de 10−1 à 10−6, ont été préparées en transférant 100 µL de la suspension bactérienne dans 900 µL de PBS stérile à chaque étape de dilution. Des aliquots (30 µL) de chaque dilution ont été étalés sur des boîtes de gélose infusion cerveau-cœur distinctes, puis incubés à 37°C pendant 24 heures. Les colonies ont été dénombrées et exprimées en unités formant colonies (UFC). Chaque dilution a été ensemencée en triple, et le nombre moyen de colonies provenant des trois boîtes a été utilisé pour l’analyse. Les boîtes ont été codées avant le dénombrement, et l’investigateur effectuant le dénombrement des colonies était aveugle quant aux attributions des traitements.
Ici, C est le nombre moyen de CFU du groupe témoin négatif (sérum physiologique) et T est le nombre moyen de CFU du groupe expérimental.
Analyse de la courbe de croissance bactérienne
L'effet de divers traitements laser sur la cinétique de croissance bactérienne a été étudié en traçant des courbes de croissance. Le jour 3 après le traitement laser final, les canaux ont été rincés avec 5 mL de solution saline stérile. Le contenu des canaux a été prélevé à l’aide de points de papier stériles, puis transférés dans un tube de centrifugation contenant 5 mL de bouillon BHI. Le tube a été agité au vortex pour mettre en suspension les bactéries dans le bouillon. La suspension bactérienne a été ajustée à 1 × 106 UFC/mL. La concentration bactérienne a été ajustée en fonction des mesures d’OD600, à l’aide d’une courbe de calibration établie précédemment pour E. faecalis ATCC 29212, puis confirmée par dénombrement des colonies viables. Un aliquot de 200 µL de la suspension a été ajouté dans chaque puits d’une microplaque stérile à 96 puits. En outre, 20 µL d’huile minérale stérile ont été ajoutés dans chaque puits afin de minimiser l’évaporation. La microplaque a été placée dans un spectrophotomètre-incubateur maintenu à 37 °C, et l’OD600 a été mesurée chaque heure pendant 24 heures. Avant chaque mesure d’OD600, la microplaque a été agitée en rotation à environ 300 tr/min pendant 10 secondes afin d’assurer une suspension bactérienne homogène. Chaque échantillon a été testé en cinq puits réplicats.
Analyse statistique
Toutes les données numériques sont présentées sous forme de moyenne ± écart type (ET). Les analyses statistiques ont été réalisées à l'aide du logiciel SPSS version 26.0. La distribution des données a été évaluée à l'aide du test de Shapiro–Wilk. Une analyse de la variance (ANOVA) a été utilisée pour comparer plus de deux groupes, suivie du test de Tukey de différence significative honnête (HSD) pour les comparaisons par paires. Les comparaisons entre deux groupes ont été effectuées à l'aide d'un test t pour échantillons indépendants. L'homogénéité des variances a été vérifiée à l'aide du test de Levene avant l'application des tests paramétriques. Lorsque l'hypothèse d'homogénéité des variances n'était pas respectée, une correction de Welch a été appliquée, selon les cas. Le seuil de significativité statistique a été fixé à P < 0,05. Les graphiques ont été réalisés à l'aide du logiciel GraphPad Prism version 9.0.
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Résultats
Activité antibactérienne de différents traitements au laser contre E. faecalis
L'efficacité antibactérienne des trois systèmes laser contre E. faecalis a été évaluée en déterminant le nombre d'UFC après trois traitements consécutifs. Les résultats sont présentés dans la Figure 1 et la Figure supplémentaire 1. Le groupe témoin négatif au sérum physiologique stérile a montré une croissance bactérienne importante, avec une valeur moyenne d...
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Discussion
La présente étude ex vivo a comparé l'efficacité antibactérienne et la sécurité thermique des lasers à diode 808 nm, au thulium 1940 nm et à l'erbium 2940 nm pour l'élimination de E. faecalis biofilms provenant de canaux radiculaires infectés. Les trois systèmes laser ont démontré une inhibition bactérienne supérieure à celle du NaOCl à 5,25 % ; toutefois, leur efficacité antibactérienne et leurs profils thermiques différaient sensiblement. Le laser à l'erbium à 2940 nm a obtenu l'équilibre global le plus favora...
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Déclarations de divulgation
Conflit d'intérêts :
Les auteurs déclarent qu'ils n'ont aucun intérêt concurrent lié à cette étude. Aucun conflit d'intérêt financier ou non financier n'existe, y compris en matière d'emploi, de consultations, de possession d'actions, d'honoraires ou de témoignage d'expert rémunéré.
Remerciements
Cette étude a été soutenue par le programme de recherche médicale de la Commission de la santé du district de Hongkou.
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Matériaux
| Nom | Entreprise | Numéro de catalogue | Commentaires |
|---|---|---|---|
| Solution saline à 0,9 % | Beyotime | ST341-500ml | Stockage, irrigation et contrôle négatif des dents |
| Tube microcentrifuge de 1,5 mL | Axygen | MCT-150-C | Prélèvement d'échantillons et dilution sériée |
| Plaque de culture 24 puits | Corning | 3524 | Incubation du biofilm |
| Microplaque 96 puits | Corning | 3599 | Essai de courbe de croissance bactérienne |
| Autoclave | Tuttnauer | 2540E | Stérilisation des racines préparées |
| Agar Brain Heart Infusion (BHI) | BD Biosciences | 211065 | Culture bactérienne et dénombrement des UFC |
| Bouillon Brain Heart Infusion (BHI) | BD Biosciences | 237500 | Culture bactérienne et analyse de la courbe de croissance |
| Vernis à ongles transparent | Beyotime | C0187 | Scellement de la surface externe de la racine |
| Scie diamantée (basse vitesse) | Buehler | IsoMet Low Speed Saw | Sectionnement de la couronne |
| Thermomètre numérique (compatible avec thermocouple de type K) | OMEGA Engineering | HH802U | Mesure de la température de la surface externe de la racine |
| Enterococcus faecalis ATCC 29212 | American Type Culture Collection (ATCC) | ATCC 29212 | Souche bactérienne |
| Acide éthylènediaminotétraacétique (EDTA), 17 % | Sigma-Aldrich | E9884 | Rinçage final du canal |
| Composite résine fluide | 3M ESPE | 6031A2 | Scellement du foramen apical |
| GraphPad Prism | GraphPad Software | Version 9.0 • RRID: SCR_002798 | Génération de graphiques |
| Fichier Hedström, taille 40 | Dentsply Maillefer | 80603010042 | Prélèvement de copeaux de dentine |
| Fichier K, taille 10 | Dentsply Maillefer | 800-0210 | Détermination de la longueur de travail |
| Système laser à fibre dopée au thulium, 1940 nm | Menovex Medical Technology (Shenzhen) Co., Ltd. (Arpadent) | TN20 | Irradiation laser |
| Système laser Er:YAG, 2940 nm | PointNix Co., Ltd. | Modular-beam | Irradiation laser |
| Système laser à diode, 808 nm | elexxion AG | Claros Nano | Irradiation laser |
| Micro-pipette | Eppendorf | 3123000063 | Inoculation des échantillons |
| Huile minérale (stérile) | Sigma-Aldrich | M5904 | Prévention de l'évaporation pendant l'essai de courbe de croissance bactérienne |
| Système de fichier rotatif en nickel-titane (préparation F3) | Dentsply Sirona | ProTaper Gold | Préparation du canal radiculaire |
| Fibre optique pour laser à fibre dopée au thulium, 1940 nm | Menovex Medical Technology (Shenzhen) Co., Ltd. (Arpadent) | 400 µm de diamètre | Irradiation laser |
| Fibre optique pour laser Er:YAG, 2940 nm | PointNix Co., Ltd. | 600 µm de diamètre | Irradiation laser |
| Fibre optique pour laser à diode, 808 nm | elexxion AG | elexxion longlife 200, 200 µm (Art. No. 10063) | Irradiation laser |
| Probe parodontale | Hu-Friedy | PCPUNC156 | Mesure de la longueur de la racine |
| Scalpel parodontal | Hu-Friedy | SJ34-35 | Élimination du tartre et des tissus mous |
| Solution tampon phosphate (PBS) | Gibco / Thermo Fisher Scientific | 10010023 | Lavage et dilution bactérienne |
| Pointes de pipette (10 µL, 200 µL, 1000 µL) | Axygen | T-300 / T-200-Y / T-1000-B | Manutention des liquides |
| Statif | Biosharp | BS-IT-01 | Fixation de l'échantillon de racine |
| Microscope électronique à balayage (MEB) | Hitachi High-Technologies | TM4000Plus | Imagerie du biofilm |
| Incubateur agitateur | Thermo Fisher Scientific | MaxQ 4000 | Incubation des cultures en bouillon |
| Hypochlorite de sodium (NaOCl), 5,25 % | Sigma-Aldrich | 425044 | Irrigation du canal et contrôle positif |
| Spectrophotomètre/incubateur (lecteur de microplaque) | BioTek / Agilent Technologies | Epoch 2 | Mesures de densité optique à 600 nm (OD600) |
| SPSS | IBM | Version 26.0 • RRID: SCR_002865 | Analyse statistique |
| Points de papier stériles | Dentsply Maillefer | Absorbent Paper Points, ISO 20, conicité 0,02, 28 mm | Séchage du canal et prélèvement bactérien |
| Palpeur de thermocouple (type K) | OMEGA Engineering | 88000 | Mesure de température |
| Agitateur vortex | Scientific Industries | Vortex-Genie 2 | Mélange des suspensions bactériennes |
Références
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- Love RM. Enterococcus faecalis: a mechanism for its role in endodontic failure. Int Endod J. 2001;34(5):399-405.
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