Name: Fabrication de constructions myogéniques de lingénierie tissulaire (Vidéo) | JoVE Journal
Uploaded: 2009-05-01T00:00:00.000+00:00
Duration: 13 min 43 s
Description: Découvrez la fabrication de constructions myogéniques à base de collagène contenant des myoblastes squelettiques pour la réparation cardiaque. Cette méthode permet de créer des conduits électriques atrioventriculaires in vitro.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

playerTrialDesktop

Ce travail est soutenu par des subventions de recherche du National Institutes of Health (HL068915; HL088206), un Prix du nouveau chercheur du Fonds de recherche Thrasher, et les contributions au Fonds de la conduction cardiaque au Centre hospitalier pour enfants de Boston.

Partie 1: Réunir construire des moules de fonderie <ol><li> Utilisez une lame de rasoir pour réduire de moitié tube en silicone (VWR) et le couper en 3 morceaux cm de long. </li><li> Déposer une goutte d&#39;implant de qualité adhésive silicone RTV (Rhodia) à l&#39;intérieur de chaque extrémité du tube. </li><li> Vite placer un petit morceau (1 cm x 1 cm) de filet de polyester (McMaster-Carr) sur la chute d&#39;adhésif de silicone et de l&#39;aligner avec le bout du tuyau. Cela fournira une surface légèrement surélevé et plate pour la fixation de construire. Répétez l&#39;opération pour l&#39;autre extrémité. </li><li> Laisser le moule à sécher à température ambiante pendant 3 jours. Il est utile de faire 20 à 30 moules à la fois, que ce sont essentiellement à usage unique. </li><li> Une fois la colle est complètement sèche, de stocker ces moules dans un bécher rempli avec de l&#39;éthanol à 70% jusqu&#39;à ce qu&#39;ils soient nécessaires. Cette étape permettra de stériliser les moules et le produit fini est montré dans la figure 1. </li></ol> Partie 2: Préparation pour l&#39;isolation des myoblastes <ol><li> Diluer 1 mg laminine (Sigma) dans 250 ml de 0,22 um, stérilisée par filtration tampon phosphate salin (PBS) contenant 1% de pénicilline / streptomycine (Invitrogen) et Fungizone 1% (Invitrogen). </li><li> Manteau plaques de 150 mm de culture de tissu (BD Falcon) avec 4 ml de la solution diluée laminine partir de l&#39;étape 1.1 et incuber à 37 º C pendant au moins 4 heures avant l&#39;étalement des myoblastes squelettiques primaires. </li><li> Faire le support myoblastes en mélangeant Ham F-10 mélange nutritif (Sigma) avec du FBS à 20% (Atlanta Biologicals), 5 ng / L facteur de croissance basique des fibroblastes (Promega), 1% de pénicilline / streptomycine (Invitrogen), et Fungizone 1% ( Invitrogen). </li><li> Préparer la solution du muscle squelettique de digestion en dissolvant 1 g de ~ 295 U / mg collagénase 2 (Worthington) dans 100 ml 2,4 U / ml Dispase-2 (Roche). Ajouter 0,037 g de CaCl 2 et bien mélanger. Filtre stériliser le tampon de digestion en utilisant un disque filtre de 0,2 um monté sur une seringue de 10 ml et des aliquots conserver à -20 ° C. Placez la quantité nécessaire pour la digestion des tissus à 37 ° C avec les médias des myoblastes. </li></ol> Partie 3: isolement des myoblastes du muscle squelettique <ol><li> En utilisant des pinces et des petits ciseaux, retirez muscles spinaux de rats Lewis morts néonatales par tranchage en bas du dos le long de la moelle épinière, éplucher la peau et les couches du fascia puis exciser les muscles. </li><li> Dans une hotte de culture de tissus, placer les muscles excisés dans un tube conique de 50 ml (BD Falcon) rempli avec 40 ml de 1X Hanks Balanced Salt Solution (HBSS) (Invitrogen) sur la glace. Laisser les bandelettes de muscle pour se déposent au fond du tube et retirez soigneusement la plupart des restes de liquide et de sang par aspiration sous vide avec une pipette stérile Pasteur dans une hotte de la culture (Baker). </li><li> Verser les morceaux de muscle récoltés sur une boîte de culture de 150 mm et enlever le plus de liquide restant possible avec aspiration. En utilisant deux lames de rasoir seul tranchant émincer les tissus d&#39;une pâte épaisse. Verser la solution de digestion préchauffé sur la pâte et transférer le mélange dans un nouveau tube de 50 ml à l&#39;aide d&#39;une pipette de 10 ml. Pendant la digestion enzymatique, le tissu est parfois triturés (sans bulles) avec une pipette 10 ml monté sur un fil pipette-Aid (Drummond). Encore une fois, laisser le tissu de régler et retirer l&#39;excès de liquide. </li><li> Placer le tube sur une plateforme à bascule et digérer à 37 º C pendant environ 30 min. </li><li> Une fois que le muscle est liquéfié, passer la solution à travers une passoire cellule 70 um (BD Falcon) et centrifuger à température ambiante pendant 10 min à 600 xg (Beckman GP). Avec une pipette Pasteur et d&#39;aspiration, enlever autant de liquide que possible et remettre le culot avec 10 mL de milieu de myoblastes chaud. </li><li> Pré-plaque de cellules sur une plaque de culture non couché 150 mm de tissu pendant 15 minutes pour aider à éliminer les fibroblastes. </li><li> Transférer les cellules qui n&#39;ont pas encore attaché à la laminine cultureware enduits et diluer afin qu&#39;il y est une plaque pour tous les 1 à 2 chiots rat. Placer la plaque dans un ensemble incubateur humidifié à 37 ° C avec 5% de CO 2. </li></ol> Partie 4: Moulage des constructions de l&#39;ingénierie tissulaire (5 ml) <ol><li> Après 1 à 2 jours, retirer 10 des 150 plaques myoblastes de culture tissulaire mm de l&#39;incubateur, les rincer deux fois avec 37 ° C PBS 1X, et ajouter 4 ml d&#39;eau tiède 0,05% de trypsine-EDTA à chaque plaque. Retour des plaques dans l&#39;incubateur pendant 5 min. </li><li> Récolter les myoblastes détachées des plaques dans la hotte de la culture et de recueillir le liquide dans un tube de 50 ml (BD Falcon). Utiliser 10 mL de milieu de myoblastes pour le rinçage de toutes les plaques et de combiner cela avec les cellules dans le tube à centrifuger. Pellet les cellules à température ambiante pendant 10 min à 600 xg (Beckman GP) et enlever l&#39;excès de liquide tel que décrit dans l&#39;étape 3.5. </li><li> Resuspendre les cellules myoblastes dans 1,6 mL de milieu de myoblastes et les placer sur la glace. </li><li> En utilisant une pince, retirez soigneusement 4 moules de construire de l&#39;étape 1.5 et les rincer deux fois avec du PBS 1X. Aspiration hors toute trace de PBS avec une pipette Pasteur avant de placer chaque moule dans une cu tissus à 6 puitsPlaque LTURE (BD Falcon). </li><li> Rassemblez les autres réactifs nécessaires pour la préparation de la construction (F10 de Ham 10X, les antibiotiques, collagène de type 1 [3,9 mg / ml] [6] et de Matrigel ™) sur la glace et de garder les médias myoblastes à 37 º C. Combinez 500 ul 10X Ham F10, 100 uL de pénicilline / streptomycine, 100 Fungizone ul, 1,6 ml de collagène, et 750 ™ Matrigel uL dans un tube 15 ml conique. Mélanger la solution pendant 10 secondes en utilisant un mini-Vortexer (VWR) fixé à 10 et les placer sur la glace. </li><li> Ensuite, ajouter 80 ul de NaHCO 3 et la suspension de l&#39;étape myoblastes 3,3 à mélange de l&#39;étape 3.5. Vortex l&#39;ensemble du mélange pendant 10 secondes et retourner le tube pour le seau à glace pendant quelques minutes pour effacer la solution de bulles. </li><li> Soigneusement coulée le mélange dans les moules avant qu&#39;il commence à se solidifier à l&#39;aide d&#39;une pipette de 10 ml. Chaque moule peut contenir environ 1 mL du liquide visqueux. Essayez d&#39;éviter d&#39;introduire des bulles d&#39;air lors de cette procédure. </li><li> Soigneusement transfert de la plaque contenant les constructions exprimées à l&#39;incubateur. Après ~ 30 min, retirez les constructions solidifié de l&#39;incubateur et ajouter prudemment moyennes myoblastes dans chaque puits afin de couvrir le tissu construire. Retour à la plaque de l&#39;incubateur (figure 2). </li></ol> Partie 5: Les résultats représentatifs Lorsque ce protocole est correctement exécutée, la construction des tissus contenant des myoblastes est prêt pour implantation in vivo (c&#39;est à dire lorsqu&#39;il est retiré du moule) ou pour d&#39;autres analyses in vitro après 2 jours. <img src="/files/ftp_upload/1137/Figure1.jpg" alt="" /> Exemples Figure 1. Des moules achevée de construire (voir l&#39;étape 1.5). <img src="/files/ftp_upload/1137/Figure2.jpg" alt="" width="400" height="321" /> Figure 2. Un solidifié myoblastes tissu contenant de construire [1]. <img src="/files/ftp_upload/1137/Figure3.jpg" alt="" /> Figure 3. Sections H &amp; E teinté d&#39;un tissu contenant des myoblastes construire. «A» représente une coupe longitudinale et &quot;B&quot; montre une section transversale.

<ol><li>Choi, Y. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cardiac+conduction+through+engineered+tissue%5BTitle%5D)+AND+%22Am+J+Pathol%22%5BJournal%5D)">Cardiac conduction through engineered tissue.</a> Am J Pathol. 169 (1), 72-85 (2006).</li>
<li>Rando, T. A., Blau, H. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Primary+mouse+myoblast+purification%2C+characterization%2C+and+transplantation+for+cell-mediated+gene+therapy%5BTitle%5D)+AND+%22J+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">Primary mouse myoblast purification, characterization, and transplantation for cell-mediated gene therapy.</a> J Cell Biol. 125 (6), 1275-1287 (1994).</li>
<li>Blau, H. M., Webster, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Isolation+and+characterization+of+human+muscle+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Proc+Natl+Acad+Sci+U+S+A%22%5BJournal%5D)">Isolation and characterization of human muscle cells.</a> Proc Natl Acad Sci U S A. 78 (9), 5623-5627 (1981).</li>
<li>Powell, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Tissue-engineered+human+bioartificial+muscles+expressing+a+foreign+recombinant+protein+for+gene+therapy%5BTitle%5D)+AND+%22Hum+Gene+Ther%22%5BJournal%5D)">Tissue-engineered human bioartificial muscles expressing a foreign recombinant protein for gene therapy.</a> Hum Gene Ther. 10 (4), 565-577 (1999).</li>
<li>Vandenburgh, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Tissue-engineered+skeletal+muscle+organoids+for+reversible+gene+therapy%5BTitle%5D)+AND+%22Hum+Gene+Ther%22%5BJournal%5D)">Tissue-engineered skeletal muscle organoids for reversible gene therapy.</a> Hum Gene Ther. 7 (17), 2195-2200 (1996).</li>
<li>Gallop, P. M., Seifter, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Preparation+and+Properties+of+Soluble+Collagens%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+in+Enzymology%22%5BJournal%5D)">Preparation and Properties of Soluble Collagens.</a> Methods in Enzymology. 6, 635-641 (1963).</li>
</ol>

Expériences sur les animaux ont été effectuées en conformité avec les directives et les règlements énoncés par le soin des animaux et du Comité institutionnel utilisation à l&#39;Hôpital pour enfants de Boston.

Les moules dans lesquels la construction des tissus seront jetés peuvent être faites dans n&#39;importe quelle forme et taille, mais il doit y avoir au moins deux points de fixation. Sinon, la matrice et les cellules forment une structure sphérique et les cellules meurent. Dans le présent protocole, nous décrivons l&#39;utilisation d&#39;un maillage de polyester à cet effet, mais nous avons aussi utilisé avec succès maille d&#39;acier inoxydable. Évidemment, les grands moules, il faudra plus de cellules et un plus grand...

<table><tbody><tr><td>Tuyau en silicone</td><td>VWR international</td><td>60985-724</td><td></td></tr><tr><td>Adhésif en silicone</td><td>Rhodia Silicones</td><td>MED ADH 4300 RTV</td><td></td></tr><tr><td>Maille en polyester</td><td>McMaster-Carr</td><td>93185T17</td><td></td></tr><tr><td>Lamine</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>L2020</td><td></td></tr><tr><td>Milieu nutritif F-10 HAM</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>N6908</td><td></td></tr><tr><td>Sérum de veau fœtal</td><td>Atlanta Biologicals</td><td>S11550</td><td></td></tr><tr><td>Pénicilline/streptomycine</td><td>Invitrogen</td><td>15140</td><td></td></tr><tr><td>Fungizone</td><td>Invitrogen</td><td>15290-018</td><td></td></tr><tr><td>Dispase-2</td><td>Roche Group</td><td>10295825001</td><td></td></tr><tr><td>Collagénase 2</td><td>Worthington Biochemical</td><td>46H8863</td><td></td></tr><tr><td>Facteur de croissance des fibroblastes de base</td><td>Promega Corp.</td><td>G5071</td><td></td></tr><tr><td>Plaques de culture de 150 mm</td><td>BD Biosciences</td><td>353025</td><td></td></tr><tr><td>Trypsine-EDTA 0,05 % (1X)</td><td>GIBCO, by Life Technologies</td><td>25300</td><td></td></tr><tr><td>Solution saline tamponnée de Hanks 1X</td><td>Invitrogen</td><td>14170-112</td><td></td></tr><tr><td>NaHCO&lt;sub&gt;3&lt;/sub&gt; à 7,5 %</td><td>GIBCO, by Life Technologies</td><td>25080-094</td><td></td></tr><tr><td>Filtre cellulaire de 70 &amp;mu;m</td><td>BD Biosciences</td><td>352350</td><td></td></tr><tr><td>Plaques à 6 puits</td><td>BD Biosciences</td><td>353046</td><td></td></tr><tr><td>Flacon conique de 50 mL</td><td>BD Biosciences</td><td>352098</td><td></td></tr><tr><td>Flacon conique de 15 mL</td><td>BD Biosciences</td><td>352099</td><td></td></tr><tr><td>Filtre de 0,2 &amp;mu;m</td><td>Nalge Nunc international</td><td>194-2520</td><td></td></tr></tbody></table>

fabrication de constructions myogéniques de l&#39;ingénierie tissulaire

Fabrication of Myogenic Engineered Tissue Constructs

Malgré le fait que les stimulateurs électroniques sont des dispositifs de sauvetage médical, leur performance à long terme chez les patients pédiatriques peut être problématique du fait des restrictions imposées par la petite taille de l&#39;enfant et leur croissance inévitable. Par conséquent, il ya un véritable besoin pour des thérapies innovantes conçues spécifiquement pour les patients pédiatriques atteints de troubles du rythme cardiaque. Nous proposons qu&#39;une alternative conducteur biologiques constitués d&#39;une matrice à base de collagène autologue contenant des cellules dérivées pourrait mieux s&#39;adapter à la croissance, réduire le besoin de chirurgies récurrentes, et d&#39;améliorer grandement la qualité de vie de ces patients. Dans la présente étude, nous décrivons une procédure pour intégrer primaires du squelette des cultures de cellules myoblastes dans une matrice d&#39;hydrogel à la mode d&#39;une construction des tissus implantables chirurgicalement qui servira comme un conduit électrique entre les chambres supérieures et inférieures du cœur. Finalement, nous prévoyons d&#39;utiliser ce type d&#39;ingénierie tissulaire pour restaurer la conduction électrique auriculo-ventriculaire chez les enfants présentant un bloc auriculo-ventriculaire complet. Compte tenu de cela, nous isolons les myoblastes dans les muscles squelettiques de rats Lewis néonatale et la plaque-les sur la laminine revêtement des boîtes de culture tissulaire en utilisant une version modifiée de protocoles établis<sup&gt; [2, 3]</sup&gt;. Après un à deux jours, les cellules cultivées sont collectés et mélangés avec les antibiotiques, collagène de type 1, Matrigel ™, et NaHCO<sub&gt; 3</sub&gt;. Le résultat est une solution visqueuse uniforme qui peut être coulé dans un moule de près toute forme et taille<sup&gt; [1, 4, 5]</sup&gt;. Pour nos constructions des tissus, nous employons de collagène de type 1 isolées de la peau d&#39;agneau du foetus en utilisant des procédures standard<sup&gt; [6]</sup&gt;. Une fois le tissu a solidifié à 37 ° C, la culture médiatique est soigneusement ajouté à la plaque jusqu&#39;à ce que la construction est submergé. L&#39;ingénierie tissulaire est alors autorisé à se condenser davantage grâce à la déshydratation pour les 2 jours de plus, à quel point il est prêt pour<em&gt; In vitro</em&gt; L&#39;évaluation ou de chirurgie d&#39;implantation.

Ici, nous démontrons la fabrication de base de collagène, le tissu des constructions contenant myoblastes squelettiques. Ces constructions en 3-D modifiés peuvent être utilisés pour remplacer ou réparer des tissus<em&gt; In vivo</em&gt;. Pour nos fins, nous avons conçu ces comme un conduit auriculo-ventriculaire électriques pour la réparation de bloc cardiaque complet<sup&gt; [1]</sup&gt;.

Fabrication de constructions myogéniques de l&#39;ingénierie tissulaire

Bien que les stimulateurs cardiaques électroniques soient des dispositifs médicaux permettant de sauver des vies, leurs performances à long terme chez les patients pédiatriques peuvent être problématiques en raison de...

Cette procédure commence par la récolte de tissu musculaire squelettique à partir de rats Lewis néonatals. À partir de ce tissu, nous isolons des cellules myoblastes. Ces myoblastes sont cultivés dans des boîtes de culture tissulaire pendant deux jours, puis récoltés et mélangés à un mélange de matrice tissulaire à base de collagène.Ce mélange est soigneusement pipeté dans un moule immergé dans un milieu de culture et incubé à 37 degrés Celsius. Bonjour, je suis Christina Pesach du laboratoire de Douglas Cowan, du département d'anesthésiologie de l'hôpital pour enfants de Boston et de la faculté de médecine de Harvard. Aujourd'hui, nous allons vous montrer une procédure permettant de créer un tissu ingénierisé myogénique.Nous utilisons cette procédure pour fabriquer un tissu ingénierisé destiné à être inséré dans le cœur. Notre objectif est d'établir une connexion électrique entre les chambres supérieure et inférieure du cœur, en tant que thérapie alternative à l'implantation d'un stimulateur cardiaque chez les enfants souffrant d'un bloc auriculo-ventriculaire complet. Commençons donc.Dans le montage, un moule de coulage est utilisé pour donner une forme au dispositif tissulaire à

fabrication-of-myogenic-engineered-tissue-constructs

Research

Recherche

JoVE Journal

Biology

Biologie

Méthodes de préparation d'une matrice de gel injectable à partir de tissus décellularisé et l'injecter dans le rat...

La fabrication des matériaux injectables d&#39;origine biologique pour l&#39;ingénierie tissulaire du myocarde

Tissu musculaire d'ingénierie a un grand potentiel pour la médecine régénératrice, comme modèle de la maladie et aussi comme une source alternative pour la viande. Nous décrivons ici la technique d'une construction musculaire, dans ce cas, à partir de cellules souches de souris myoblastes, ainsi que la stimulation par des impulsions électriques.

Les tissus d&#39;ingénierie muscle squelettique de myoblastes murins cellules progénitrices et application d&#39;une stimulation électrique

La génération de tissu myocardique alignés est une exigence essentielle pour adapter les progrès récents de la biologie des cellules souches à des fins utiles en clinique. Ici nous décrivons une approche impression par microcontact pour le contrôle précis de la forme et la fonction cellulaire. Utilisation populations hautement purifiées de cellules souches embryonnaires dérivées progéniteurs cardiaques, nous avons ensuite générer anisotrope tissu fonctionnel du myocarde.

Génération de tissu myocardique alignés fonctionnelle grâce à l&#39;impression par microcontact

Ce système de modèle commence à partir d'un gel de fibrine myofibroblastes peuplée qui peut être utilisé pour étudier collagène endogène (ré) organisation en temps réel de façon non destructive. Le système de modèle est très accordable, comme il peut être utilisé avec des sources différentes de cellules, des additifs moyen, et peut être adapté facilement à des besoins spécifiques.

Ingénierie à base de fibrine constructions de tissu de myofibroblastes et application des contraintes et de déformation à Provoquer Organisation cellulaire et collagène (Re)

Pour créer des structures hautement organisées de tissus complexes, il faut assembler plusieurs types de matériaux et de cellules en un composite intégré.  Cette conception combinatoire intègre des feuilles de cellules stratifiées spécifiques à un organe avec deux matériaux distincts d’origine biologique contenant une base de matrice fibreuse solide, et des cellules endothéliales pour améliorer la formation de nouveaux vaisseaux.

Ingénierie tissulaire: Construction d&#39;un échafaudage 3D multicellulaire pour la livraison de stratifiés feuilles cellulaires

Dans ce travail, nous présentons une technique de fabrication rapide de tissus vasculaires vivants par culture directe de collagène, de cellules musculaires lisses et de cellules endothéliales. De plus, un nouveau protocole pour la caractérisation mécanique des tissus vasculaires modifiés est décrit.

Ingénierie 3D cellularisé collagène Gels pour la régénération tissulaire vasculaire

À ce jour, les défauts des tissus épais sont généralement reconstruits par l’application de lambeaux de tissus autologues ou de tissus modifiés. Dans ce protocole, nous présentons une nouvelle méthode d’ingénierie d’un lambeau de tissu vascularisé portant un pédicule autologue, pour servir de substitut aux lambeaux autologues.

Conçu vascularisé Muscle Flap

Ce protocole décrit une plate-forme de fabrication d’anneaux de tissu auto-assemblés dans des tailles variables à l’aide d’un moule en plastique personnalisé imprimés 3D. PDMS négatifs sont guéris dans le moule 3D-imprimés ; puis agarose est coulé dans les négatifs PDMS durcis. Les cellules sont ensemencées dans les puits d’agarose qui en résulte, où ils agrègent des anneaux de tissu.

Fabrication de puits d’Agarose personnalisé pour l’ensemencement de la cellule et l’anneau de tissu auto-assemblage à l’aide de moules 3D-imprimé

Ce manuscrit décrit un protocole détaillé pour produire des réseaux de microtissus musculaires squelettiques humains en 3D et des tests de fonction in situ en aval mini-invasifs, y compris des analyses de force contractile et de manipulation du calcium.

Évaluation des mesures fonctionnelles de la santé des muscles squelettiques dans les microtissus musculaires squelettiques humains

Ce protocole fournit des méthodes pour générer des tissus cardiaques et musculaires squelettiques modifiés en 3D et décrit leur utilisation dans les modalités de dépistage préclinique des médicaments. Les méthodes décrites utilisent un système de détection magnétique pour faciliter l’évaluation simultanée de 24 tissus en parallèle.

Tests précliniques de médicaments dans des tissus musculaires 3D évolutifs

Une méthode reproductible est présentée pour générer des tissus myocardiques 3D combinant l’écriture par électrofilage fondu (MEW), des échafaudages de polycaprolactone (PCL) et des hydrogels de fibrine avec des cardiomyocytes et des fibroblastes dérivés de hiPSC. Cette technique offre un contrôle précis de l’architecture de l’échafaudage et peut être appliquée dans les tests précliniques de médicaments et la modélisation des maladies cardiaques.

Génération 3D de tissu myocardique humain à l’aide de l’écriture électrofilée à l’état fondu d’échafaudages de polycaprolactone et de cellules cardiaques dérivées de hiPSC

Découvrez la fabrication de constructions myogéniques à base de collagène contenant des myoblastes squelettiques pour la réparation cardiaque. Cette méthode permet de créer des conduits électriques atrioventriculaires in vitro.

Fabrication de constructions myogéniques de l'ingénierie tissulaire

Explorer plus de vidéos