Name: Cartographie optique des coeurs de rats perfusés de Langendorff (Vidéo) | JoVE Journal
Uploaded: 2009-08-11T19:00:00.000+00:00
Duration: 11 min 48 s
Description: Découvrez la cartographie optique des cœurs de rats perfusés de Langendorff avec le colorant di-8-ANEPPS. Cette technique haute résolution permet d'étudier l'activité électrique cardiaque et la propagation des potentiels d'action en temps réel.

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Ce travail est soutenu par des subventions de recherche du National Institutes of Health (HL068915; HL088206) et les contributions au Fonds de la conduction cardiaque au Centre hospitalier pour enfants de Boston.

Partie 1: Préparer les solutions et le système coeur isolé perfusé <ol><li> Le matin de l'expérience, L 4,0 de Krebs-Henseleit solution est préparée comme décrit précédemment [5, 6]. </li><li> 11 mmol / L 2,3-butanedione monoxime (BDM) est dissous dans 1,0 L de Krebs-Henseleit solution décantée du perfusat préparé à l'étape 1.1. </li><li> Un montant supplémentaire de 150 ml de Krebs-Henseleit est retiré de la perfusat préparé à l'étape 1.1 et mélangé avec 5 mol / L di-8-ANEPPS (dilué à partir d'un 10 mmol / L des stocks dissous dans le diméthylsulfoxyde (DMSO)). </li><li> Ces trois solutions sont transférés à chemise d'eau en verre réservoirs (Radnoti) où ils sont pré-chauffé à 41,0 ° C et oxygéné avec un bulleur submergé (Radnoti) à l'aide de 0,2 um-filtrée à 95% d'O 2; 5% de CO 2 gazeux. Solutions à partir des 3 réservoirs de stock sont pompés vers le système mural de Langendorff avec Masterflex ™ L / S pompes péristaltiques et de faible absorption de tube en silicone (Cole-Parmer). </li><li> Avant le montage, le système de Langendorff verrerie (Radnoti) est méticuleusement lavées avec E-TOXA-CLEAN réactif (Sigma-Aldrich) et rincés à fond avec 0,1 M / L HCl, 100% d'éthanol et d'eau distillée. </li><li> L'appareil de Langendorff sans recirculation a été construit pour fournir 70 mm Hg à pression constante de 3 réservoirs séparés oxygénée, qui sont séparés du cœur avec les serpentins de chauffage à chemise d'eau et les pièges à bulles (Radnoti) [7]. Les trois lignes de perfusion indépendantes convergent au-dessus du coeur à deux robinets à 3 voies, nous permettant de contrôler précisément la livraison des solutions préparées dans les étapes 1.1 à 1.3. Chemise d'eau verrerie est connecté en série avec tube MASTERFLEX BPT PharMed (Cole-Parmer) et chauffé à 39 ° C avec de l'eau distillée en utilisant deux circulateurs E100 (Lauda). La perte de chaleur par le tube de silicone traité au platine (Cole-Parmer) qui relie les réservoirs à pression tête pour les serpentins de chauffage et de pièges à bulles abouti à un 37 ° C perfusat d'atteindre le coeur. </li></ol> Partie 2: Récolte du coeur de rat et de mettre en place une perfusion de Langendorff <ol><li> Pour provoquer une profonde anesthésie générale dans 200 à 250 g chez le rat Lewis, 100 mg / kg de kétamine et 10 mg / kg de xylazine est injecté dans la cavité péritonéale. A ce mélange, on ajoute 500 U / kg d'héparine pour éviter la coagulation du sang et l'ischémie myocardique durant la procédure d'explantation. </li><li> Pour un accès facile vers le cœur et gros vaisseaux, la paroi thoracique antérieure est retirée. Après cela, les tissus environnants est soigneusement disséquée et le sac péricardique ouvert. </li><li> Après identification de la veine cave inférieure, ce navire est ligaturé avec de la soie 5-0 (Ethicon) et de l'ensemble cœur-poumon bloc est explanté. Tissulaire est immédiatement placé dans glacée de Krebs-Henseleit solution contenue dans un bécher de 50 ml sur la glace. </li><li> L'aorte ascendante est rapidement identifié et disséqué par les tissus environnants. Une taille appropriée canule (Harvard Apparatus) est inséré dans l'aorte, en prenant soin d'éviter d'interrompre la perfusion obligatoire des artères coronaires en insérant la canule trop loin dans la racine aortique. La canule est fixée au aorte ascendante avec de la soie 5-0 (Ethicon). </li><li> Le coeur de rat est alors placé sur l'appareil de Langendorff sans introduire de bulles d'air dans la canule. Rétrograde perfusion coronaire vasculaire est désormais établi avec la chaleur, oxygénée de Krebs-Henseleit solution à partir de la pression de tête décrite à l'étape 1.6. </li><li> Tissulaire supplémentaire, y compris les poumons, est désormais supprimé et le coeur est perfusé pendant 20 minutes afin de permettre la récupération de la fonction et à stabiliser le rythme. Pendant ce temps, une sonde de température très mince thermocouple (Cole-Parmer) est introduit dans la cavité ventriculaire gauche et suturé en place avec 5-0 Prolène suture (Ethicon). La sonde est reliée à un thermo-régulateur (Digi-Sense) pour s'assurer que la température du cœur est maintenue à 37 ° C en ajustant les paramètres de la pompe de circulation d'eau. Motion à partir perfusat dégoulinant de l'apex cardiaque est minimisé en plaçant un morceau de gaze dans le récipient d'effluents. </li></ol> Partie 3: coeur de charge avec un colorant potentiométrique et d'acquérir des signaux électroencéphalographiques et optiques <ol><li> Di-8-ANEPPS (Invitrogen) est chargé dans le cœur par le passage à la ligne de perfusion contenant le mélange de Krebs-Henseleit avec le colorant fluorescent à l'aide d'un robinet. De plus, une canule 18G est placé dans l'oreillette gauche et / ou à droite et 50 ml supplémentaires de solution de colorant est lentement administré dans chacune de ces chambres, car ils ne sont pas suffisamment perfusé avec un colorant introduit dans les artères coronaires. </li><li> Pendant la procédure de chargement, 3 dérivations (Harvard Apparatus) sont délicatement placés sur la surface du cœur qui n'est pas face à l'optique utilisée pour la cartographie. Electrode n o 1 est positionné sur la partie postérieure apicale du ventricule gauche, n o 2 sur l'oreillette gauche, et N <su> p&gt; o 3 comme une électrode de référence sur la racine aortique (figure 1). Les signaux auriculaires et ventriculaires électrographique sont ensuite amplifiés, numérisés et affichés à côté des signaux optiques en utilisant le logiciel (redshirt Imaging) (figure 2). Un oscilloscope (Tektronix TDS modèle 1002) est également utilisée pour visualiser l'ECG de surface s en temps réel et d'assurer une stimulation adéquate. </su></li><li> ECG amplificateur (Hugo Sachs Elektronik) paramètres: Filtre passe-haut: 0,1 Hz Filtre passe-bas: 150 Hz </li><li> La caméra CMOS (redshirt Imaging) et macroscope est positionné en utilisant les réglages XYZ afin que la surface du cœur est au point et centré dans le cadre d'acquisition. La caméra et l'optique sont montés sur une table anti-vibrations (Minus K Technology) afin de minimiser les fréquences de résonance. Dans le même temps, la stimulation d'une électrode coaxiale (Harvard Apparatus) contrôlé par un cas isolé, S48-stimulation électrique unitaire (herbe), est placé sur l'oreillette droite et le cœur est au rythme de 300 battements par minute (figure 1). </li><li> Stimulation électrique (Grass) paramètres: Tarif: 5 impulsions par seconde Délai: 0,2 ms Durée: 2 ms Volts: 6-12 V Mode: Répéter Pulse: Simple </li><li> Pour les enregistrements optiques qui manquent les artefacts de mouvement de la contraction, le cœur doit être découplée électromécanique. Nous faisons cela en commutation à nouveau les lignes de perfusion de Krebs-Henseleit solution qui contient 11 mmol / L BDM. Entre les acquisitions, le coeur est perfusé avec inaltérée de Krebs-Henseleit pour aider à préserver la viabilité de la préparation. </li><li> Les paramètres d'enregistrement sont fixés à l'aide du logiciel (imagerie redshirt) avec les paramètres d'acquisition suivants: Configuration: 2000 Hz; 128x128 matrice de pixels Intervalle de trame: 0,5 ms Gain Amplificateur Appareil photo: 5x On-Chip Gain: 8x-12m ² bien- Obturateur: 500 ms de retard Nombre de cadres: 4000 Durée: 2000 ms </li><li> Toutes les lumières de la pièce et les équipements sont hors tension ou blindés pour éliminer le bruit de fond pendant l'enregistrement. La lumière s'allume au coeur uniquement pendant l'enregistrement optique de réduire la photo-blanchiment et la toxicité de teinture. L'obturateur source de lumière est contrôlée avec une impulsion de 5 V livré via le panneau de contrôle au moyen d'un D-à-Un conseil à l'ordinateur (imagerie redshirt). </li></ol> Partie 4: Analyser les informations d'acquisition à l'aide du logiciel d'imagerie redshirt <ol><li> Suite à l'acquisition, les données sont traitées en utilisant différents paramètres de filtre. Nous utilisons généralement les paramètres par défaut sauf si l'ajustement de la bande d'arrêt / filtre passe, qui est fixé avec la limite à gauche à 44,0 et la limite à droite à 98,0. Plus tard, les informations enregistrées sont traitées et un film est généré (imagerie redshirt). </li><li> Les données provenant d'une acquisition correspond à l'activation locale électrique à 16 384 sites sur la surface du coeur sur une période de 2 secondes. Le logiciel permet à ces signaux locaux d'être directement comparés entre eux et avec les enregistrements électroencéphalographiques auriculaire et ventriculaire. Les données sont ensuite visualisées par une cartographie locale activation électrique de la couleur et le rendu cette information comme une animation montrant l'activation spatio-temporelle électrique sur la surface cardiaque. Pour créer une telle animation, nous utilisons le logiciel pour: <ul><li> temporellement et / ou filtrer les données spatialement </li><li> Sélectionnez une heure de début et de fin pour l'animation </li><li> signaux optiques carte de la couleur selon l'intensité lumineuse de chaque pixel de repos </li><li> superposer les données couleur résultante avec une image du cœur </li><li> générer l'animation </li></ul></li></ol> Partie 5: Les résultats représentatifs Si la préparation du cœur perfusé était immobile pendant l'enregistrement, les signaux optiques montrent un pic distinct pour chaque pixel impliqués dans un changement de l'intensité des émissions de di-8-ANEPPS. Les films correspondants (Figures 3 et 4) montrent un front d'onde d'excitation se propager sur toute la surface épicardique du cœur ainsi que les enregistrements électroencéphalographiques acquises simultanément (Figure 2). <img src="/files/ftp_upload/1138/Figure3.jpg" alt="Schéma de configuration cardiaque de Langendorff pour l’étude de la stimulation cardiaque, mettant en évidence les composants numérotés." data-altupdatedat="1754907201000" data-alt="Figure 1"> Figure 1. Une photographie d'une préparation de Langendorff perfusé coeur illustrant les positions de l'électrode de stimulation sur l'oreillette droite et l'ECG conduit comme décrit dans l'étape 3.2. <img src="/files/ftp_upload/1138/Figure4thumb.jpg" alt="Schéma de processus biologique avec signaux ; Analyse des données des résultats de la microscopie à fluorescence." border="0" data-altupdatedat="1754907201000" data-alt="Figure 2"> Figure 2. Représentant des signaux optiques et des enregistrements électroencéphalographiques d'un coeur de rat perfusé Lewis. Le panneau A montre une image de la surface épicardique utilisés pour l'imagerie optique. La position des pixels choisis pour démontrer les changements dans l'émission de fluorescence au cours du temps dans le groupe B sont indiquées par des flèches colorées. Signaux électroencéphalographiques sont présentés dans le Panneau de C avec la ligne rouge indiquant l'activation auriculaire et la ligne de lumière bleue qui correspond au signal ventriculaire. S'il vous plaîtve.com/files/ftp_upload/1138/Figure4.jpg "&gt; cliquez ici pour voir une version agrandie de cette figure.

<ol><li>Efimov, I. R., Nikolski, V. P., Salama, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Optical+imaging+of+the+heart%5BTitle%5D)+AND+%22Circ+Res%22%5BJournal%5D)">Optical imaging of the heart.</a> Circ Res. 95 (1), 21-33 (2004).</li>
<li>Hucker, W. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Images+in+cardiovascular+medicine.+Optical+mapping+of+the+human+atrioventricular+junction%5BTitle%5D)+AND+%22Circulation%22%5BJournal%5D)">Images in cardiovascular medicine. Optical mapping of the human atrioventricular junction.</a> Circulation. 117 (11), 1474-147 (2008).</li>
<li>Entcheva, E., Bien, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Macroscopic+optical+mapping+of+excitation+in+cardiac+cell+networks+with+ultra-high+spatiotemporal+resolution%5BTitle%5D)+AND+%22Prog+Biophys+Mol+Biol%22%5BJournal%5D)">Macroscopic optical mapping of excitation in cardiac cell networks with ultra-high spatiotemporal resolution.</a> Prog Biophys Mol Biol. 92 (2), 232-257 (2006).</li>
<li>Entcheva, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Fluorescence+imaging+of+electrical+activity+in+cardiac+cells+using+an+all-solid-state+system%5BTitle%5D)+AND+%22IEEE+Trans+Biomed+Eng%22%5BJournal%5D)">Fluorescence imaging of electrical activity in cardiac cells using an all-solid-state system.</a> IEEE Trans Biomed Eng. 51 (2), 333-341 (2004).</li>
<li>Stamm, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Rapid+endotoxin-induced+alterations+in+myocardial+calcium+handling%3A+obligatory+role+of+cardiac+TNF-alpha%5BTitle%5D)+AND+%22Anesthesiology%22%5BJournal%5D)">Rapid endotoxin-induced alterations in myocardial calcium handling: obligatory role of cardiac TNF-alpha.</a> Anesthesiology. 95 (6), 1396-1405 (2001).</li>
<li>Choi, Y. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cardiac+conduction+through+engineered+tissue%5BTitle%5D)+AND+%22Am+J+Pathol%22%5BJournal%5D)">Cardiac conduction through engineered tissue.</a> Am J Pathol. 169 (1), 72-85 (2006).</li>
<li>Skrzypiec-Spring, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Isolated+heart+perfusion+according+to+Langendorff---still+viable+in+the+new+millennium%5BTitle%5D)+AND+%22J+Pharmacol+Toxicol+Methods%22%5BJournal%5D)">Isolated heart perfusion according to Langendorff---still viable in the new millennium.</a> J Pharmacol Toxicol Methods. 55 (2), 113-126 (2007).</li>
<li>Fedorov, V. V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Application+of+blebbistatin+as+an+excitation-contraction+uncoupler+for+electrophysiologic+study+of+rat+and+rabbit+hearts%5BTitle%5D)+AND+%22Heart+Rhythm%22%5BJournal%5D)">Application of blebbistatin as an excitation-contraction uncoupler for electrophysiologic study of rat and rabbit hearts.</a> Heart Rhythm. 4 (5), 619-626 (2007).</li>
</ol>

Expériences sur les animaux ont été effectuées en conformité avec les directives et les règlements énoncés par le soin des animaux et du Comité institutionnel utilisation à l&#39;Hôpital pour enfants de Boston.

L&#39;ablation du cœur de rats anesthésiés doivent être effectués rapidement pour éviter une ischémie myocardique. Si la perfusion d&#39;ischémie coronarienne ou insuffisance se produit, le coeur se développeront probablement des arythmies et peut devenir un infarctus. En outre, ces coeurs montrera insuffisante émission de fluorescence pour les enregistrements informatifs et des analyses ultérieures. Avant de charger le colorant, les cellules du myocarde doivent être adéquatement perfusés avec une solution de Krebs-Hens...

<table><tbody><tr><td>CardioCMOS-SM128f</td><td>Équipement</td><td>RedShirtImaging, LLC</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Logiciel CardioPlex</td><td>Équipement</td><td>RedShirtImaging, LLC</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Source lumineuse LED LUXEON 460-490 nm </td><td>Équipement</td><td>Lumileds Lighting, US, LLC, San Jose, CA 95131 USA</td><td>LXHL-PB02</td><td></td></tr><tr><td>Amplificateur ECG Type 689 Hugo Sachs Elektronik</td><td>Équipement</td><td>Harvard Apparatus</td><td>730149</td><td></td></tr><tr><td>Miroir dichroïque 505 nm</td><td>Équipement</td><td>Semrock</td><td>FF505-SDi01-25x36</td><td></td></tr><tr><td>Filtre d'émission passe-haut 605 nm</td><td>Équipement</td><td>SciMedia</td><td></td><td></td></tr><tr><td>THT Sideways</td><td>Équipement</td><td>SciMedia</td><td>25 BM-8</td><td></td></tr><tr><td>Support à rotule miniature</td><td>Équipement</td><td>Harvard Apparatus</td><td>BS4 73-0177</td><td></td></tr><tr><td>Jeu d'électrodes de stimulation petites</td><td>Équipement</td><td>Harvard Apparatus</td><td>BS4 73-0160</td><td></td></tr><tr><td>Plateforme d'isolation des vibrations BM-6 sur table</td><td>Équipement</td><td>Technology Inc., Inglewood, CA 90301</td><td>25 BM-6</td><td></td></tr><tr><td>Électrode ECG monopolaire</td><td>Équipement</td><td>Harvard Apparatus</td><td>BS4 73-0200</td><td></td></tr><tr><td>Pompe péristaltique SCI 400</td><td>Équipement</td><td>Watson-Marlow Pumps Group</td><td>401U/D1</td><td></td></tr><tr><td>Pompe péristaltique MasterFlex Easy Load II</td><td>Équipement</td><td>Cole-Parmer</td><td>Modèle 77201-60</td><td></td></tr><tr><td>Tuyau Marprene n°14</td><td>Équipement</td><td>Watson-Marlow Pumps Group</td><td>902.0016.016</td><td></td></tr><tr><td>Tuyau MasterFlex</td><td>Équipement</td><td>PharMed, Westlake, OH 44145 USA</td><td>06485-25</td><td></td></tr><tr><td>Stimulateur à impulsions carrées S48</td><td>Équipement</td><td>Grass Technologies</td><td>Modèle S48</td><td></td></tr><tr><td>Unité d'isolation transformateur RF SIU5</td><td>Équipement</td><td>Grass Technologies</td><td>Modèle SIU5</td><td></td></tr><tr><td>Réservoir à double enceinte de 5 litres</td><td>Équipement</td><td>Radnoti Glass Technology Inc.</td><td>120142-5</td><td></td></tr><tr><td>Réservoir à double enceinte de 2 litres</td><td>Équipement</td><td>Radnoti Glass Technology Inc.</td><td>120142-2</td><td></td></tr><tr><td>Réservoir à double enceinte de 0,5 litre</td><td>Équipement</td><td>Radnoti Glass Technology Inc.</td><td>120142-0</td><td></td></tr><tr><td>Réservoir à double enceinte de 0,25 litre</td><td>Équipement</td><td>Radnoti Glass Technology Inc.</td><td>120142-025</td><td></td></tr><tr><td>Bobine de chauffage de 10 ml</td><td>Équipement</td><td>Radnoti Glass Technology Inc.</td><td>158822</td><td></td></tr><tr><td>Trappe à bulles de compliance</td><td>Équipement</td><td>Radnoti Glass Technology Inc.</td><td>130149</td><td></td></tr><tr><td>Cannule à déconnexion Luer</td><td>Équipement</td><td>Harvard Apparatus</td><td>72-1444</td><td></td></tr><tr><td>Robinet trois voies, FLL vers MLT, sans capuchons de port</td><td>Équipement</td><td>Harvard Apparatus</td><td>BS4 72-2630</td><td></td></tr><tr><td>Thermomètre à thermocouple</td><td>Équipement</td><td>Cole-Parmer</td><td>WU-91100-40</td><td></td></tr><tr><td>Microsonde flexible Ultra Fine série IT </td><td>Équipement</td><td>PhysiTemp Instruments Inc., Clifton, NJ 07013 USA</td><td>IT-24P</td><td></td></tr><tr><td>Oscilloscope Tektronix TDS 1002</td><td>Équipement</td><td>Tektronix, Inc.</td><td>TDS 1002B</td><td></td></tr><tr><td>Monooxime de 2,3-butanédione </td><td>Réactif</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>B0753</td><td></td></tr><tr><td>Chlorhydrate de kétamine</td><td>Réactif</td><td>Hospira Inc.</td><td>RL-0065</td><td></td></tr><tr><td>Xylazine</td><td>Réactif</td><td>Lloyd, Inc.</td><td>LB15705A</td><td></td></tr><tr><td>E-TOXA-CLEAN&amp;#174;</td><td>Réactif</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>E9029</td><td></td></tr><tr><td>Di-8-ANEPPS</td><td>Réactif</td><td>Invitrogen</td><td>D-3167</td><td></td></tr></tbody></table>

cartographie optique des coeurs de rats perfusés de langendorff

Optical Mapping of Langendorff-perfused Rat Hearts

Cartographie optique de la surface cardiaque avec sensibles au voltage colorants fluorescents est devenu un outil important pour étudier l&#39;excitation électrique dans des modèles expérimentaux qui vont à l&#39;échelle de cultures de cellules d&#39;organes entiers<sup&gt; [1, 2]</sup&gt;. Utiliser l&#39;état de l&#39;art des systèmes d&#39;imagerie optique, la génération et la propagation des potentiels d&#39;action au cours du rythme cardiaque normal ou long initiation et le maintien des arythmies peuvent être visualisées presque instantanément<sup&gt; [1]</sup&gt;. Le dernier disponible dans le commerce de systèmes peuvent fournir des informations à très haute résolution spatio-temporelle et étaient basées sur matériel conçu initialement développé pour surmonter les obstacles imposés par plus conventionnelles des méthodes électrophysiologiques<sup&gt; [1]</sup&gt;. Les progrès de la haute résolution et haute vitesse Complementary metal-oxyde-semiconducteur (CMOS) caméras et intensément-lumineux, les diodes électroluminescentes (LED) ainsi que la tension des colorants sensibles, l&#39;optique, et les filtres ont commencé à faire l&#39;acquisition de signaux électriques pratique pour les biologistes cellulaires cardiovasculaires qui sont plus habitués à travailler avec des microscopes. Bien que la nouvelle génération de caméras CMOS peut acquérir 10 000 images par seconde sur une matrice de pixels 16 384, selon le type de préparation des échantillons, établi de longue date des technologies d&#39;acquisition de fluorescence tels que des barrettes de photodiodes, systèmes laser à balayage, et refroidi à couplage de charge (CCD caméras) ont encore des avantages distincts par rapport à la gamme dynamique, rapport signal-bruit, et l&#39;efficacité quantique<sup&gt; [1, 3]</sup&gt;. Dans la présente étude, des coeurs de rats ont été perfusés Lewis<em&gt; Ex vivo</em&gt; Avec un perfusat cristalloïdes (Krebs-Henseleit solution) à 37 ° C sur un appareil de Langendorff modifié. Après une période de stabilisation de 20 minutes, les cœurs étaient par intermittence perfusés avec 11 mmol / L 2,3-butanedione monoxime pour éliminer la contraction associée mouvement pendant l&#39;acquisition des images. Pour la cartographie optique, nous avons chargé les cœurs avec la sonde à réponse rapide potentiométrique di-8-ANEPPS<sup&gt; [4]</sup&gt; (5 mmol / L) et brièvement illuminé la préparation avec 475 ± 15 nm lumière d&#39;excitation. Lors d&#39;une deuxième période typique 2 de l&#39;éclairage, la lumière&gt; 605 nm émise par la préparation cardiaque a été imagé avec un appareil photo CMOS haute vitesse connecté à un macroscope horizontale. Pour cette démonstration, les cœurs étaient rythme à 300 battements par minute avec une électrode coaxial connecté à une unité de stimulation électrique isolé. Simultanée des enregistrements électroencéphalographiques bipolaires ont été acquises et analysées avec les signaux de tension en utilisant un logiciel facilement disponible. De cette manière, les potentiels d&#39;action sur la surface de coeurs de rats perfusés de Langendorff peut être visualisé et enregistré avec des signaux électroencéphalographiques.

Cet article décrit une technique de haute résolution spatiale et temporelle optiquement l&#39;image mouvement d&#39;action potentielle sur la surface de coeurs de rats perfusés de Langendorff en utilisant un colorant potentiométrique (di-8-ANEPPS).

Cartographie optique des coeurs de rats perfusés de Langendorff

La cartographie optique de la surface cardiaque à l'aide de colorants fluorescents sensibles au voltage est devenue un outil important pour étudier l'excitation électrique dans ...

Bonjour, je suis Yon Ziv du laboratoire du Dr Cohen, du département d'anesthésiologie de l'hôpital pour enfants et de l'école de médecine Howard. Aujourd'hui, nous allons présenter une procédure de cartographie optique sur des cœurs rouges perfusés selon la méthode de Langendorff. Nous utilisons cette procédure dans notre laboratoire pour étudier la propagation de l'activité électrique à la surface cardiaque.Commençons donc. Le matin de l'expérience, préparez quatre litres de solution de Krebs Henselight. Après avoir préparé la solution, éliminez les particules non dissoutes à l'aide d'un filtre de 200 microns par filtration sous vide.Commencez par utiliser un litre de la solution Krebs Henzel lite préparée pour dissoudre 11 millimoles de BDM. Ensuite, prenez 100 millilitres supplémentaires de Krebs Henzel lite et mélangez-y 10 millimolaire de D huit NFS dans du DMSO afin d'obtenir une concentration finale de cinq micromoles par litre de D huit annex en solution. Les réservoirs en verre munis d'une double enveloppe d'eau, le barboteur et la verrerie utilisés ici proviennent tous de red.Naughty.Transférez les deux solutions dans les réservoirs préchauffés à 41 degrés Celsius. Oxygen

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High-Resolution cartographie endocardique et épicardique optique dans un modèle de moutons de Stretch-Induced fibrillation auriculaire

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