Name: Disséquer le cerveau des primates non humains dans lespace stéréotaxique (Vidéo) | JoVE Journal
Uploaded: 2009-07-16T20:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 9 s
Description: Apprenez à bloquer le cerveau de primates non humains dans l'espace stéréotaxique pour étudier l'organisation cérébrale. Cette méthode permet d'explorer le développement normal et les pathologies neurologiques.

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Les auteurs tiennent à remercier pour son Ikiel Ptito appui technique continu. Subvention du CRSNG au MP.

Partie 1: Pré-traitement des tissus <ol><li> Les tissus doivent être bien perfusés avec du paraformaldéhyde, glutaraldéhyde, ou du formol. Ceci peut être réalisé grâce à la perfusion transcardial norme généralement utilisée pour la récolte d&#39;autres organes. Dans l&#39;étude actuelle, l&#39;objet a été profondément sédatés avec le chlorhydrate de kétamine (10 mg / kg, im), euthanasiés avec une overdose de pentobarbital sodique (25 mg / kg, iv) et perfusé transcardiaque avec PBS 0,1 M jusqu&#39;à ce que complètement exsanguinated.This est suivie par une solution de paraformaldéhyde 4% dans du PBS pendant 5 min (~ 1 litre). </li></ol> Partie 2: le blocage stéréotaxique <ol><li> Avant de placer la tête dans le cadre stéréotaxique les coordonnées de l&#39;avion à zéro Horsley-Clarke/interaural doit être pris. C&#39;est le point central théorique entre les oreilles. Pour mesurer ce plan, les barres d&#39;oreilles doivent être également monté dans l&#39;appareil, puis placez une lame de scalpel dans le bras manipulateur stéréotaxique et de mesurer le point médian entre les barres d&#39;oreilles. Ceci est important pour déterminer où pour bloquer le tissu en fonction des besoins de recherche. Une fois ceci terminé le crâne doit être préparé pour la fixation dans l&#39;appareil de stéréotaxie. </li><li> Afin de placer la tête dans le cadre stéréotaxique la mâchoire inférieure devra être enlevé avec Os Rongeurs et d&#39;un scalpel. En outre, la peau, les muscles et le tissu conjonctif doivent être enlevés afin d&#39;exposer le crâne. Une fois le tissu conjonctif est retiré de la boîte crânienne, d&#39;exposer le cerveau en éliminant progressivement la voûte crânienne (la partie de tableau de l&#39;os occipital ainsi que les pariétaux, les os frontaux ad). Dans la partie présente expérience de la calvaria a tous déjà été enlevés. Attention à ne pas supprimer complètement l&#39;os temporal parce que les canaux de l&#39;oreille devront être intacts pour placer la tête dans le cadre stéréotaxique. La question restante durée doit être retiré par le cerveau exposé. Le crâne est maintenant prêt à être placé dans le cadre stéréotaxique. </li><li> De la même manière dans laquelle on pourrait procéder à une chirurgie stéréotaxique, ajuster l&#39;œil, bouche, oreilles et bars tels que la tête est solidement fixée dans l&#39;appareil de stéréotaxie. Placez le manipulateur stéréotaxique dans les coordonnées prédéterminées antérieur / postérieur (A / P) et déplacer le manipulateur à la face latérale du cerveau. Abaissez lentement la lame dans le cerveau, complètement soulever la lame du cerveau, puis déplacer dedans et abaisser la lame de nouveau. Répétez ces deux étapes jusqu&#39;à ce que la lame a atteint la face latérale de l&#39;hémisphère opposé. Ceci termine le premier bloc coronale. Pour ultérieures blocs coronale passer les 1cm manipulateur dans A / P axe et répéter jusqu&#39;à ce que le cerveau entier a été bloqué. </li></ol> Partie 3: Retrait du cerveau du crâne <ol><li> Retirer la tête du cadre stéréotaxique et maintenez le cerveau exposé dans la paume de votre main. Essayez de sécuriser le cerveau par une légère plaçant dorloter le cerveau dans la paume de votre main et placez votre petit doigt à travers le lobe frontal, ce mouvement minimise du cerveau dans le crâne. Afin d&#39;éviter le séchage de la surface du cerveau piales, placez un morceau de gaze humidifié de PBS à travers le cerveau. Tenez fermement la tête par le crâne et les os ébrécher restantes occipital et temporal avec la colonne vertébrale. Cette situation expose les aspects de base et latérales du cerveau. Enfin enlever tout l&#39;os frontal et reste l&#39;os nasal, ce qui permettra l&#39;accès vers les bulbes olfactifs. Il est important d&#39;enlever l&#39;os frontal dernière parce que vous retirez la base du crâne le cerveau se déplace légèrement et les lobes frontaux peut être endommagé sur les bords dentelés de l&#39;os fontale. Couper et enlever la matière restante mère. Soulevez délicatement l&#39;avant du cerveau, faites glisser le scalpel dans le cerveau et gratuitement le cerveau du crâne. </li></ol> Partie 4: Mesures <ol><li> Il ya un certain nombre de mesures utiles qui peuvent être faites avant la congélation. Par exemple, l&#39;A / P de l&#39;axe du cerveau avec un étrier. Par ailleurs la densité spécifique peut être mesurée par la pesée du cerveau, mesure du volume par le déplacement de l&#39;eau dans un cylindre gradué, puis en divisant le poids en déplacement de volume (tableau 1). </li></ol> Partie 5: Fini le blocage du cerveau. <ol><li> En général, lorsque la lame du bistouri est inséré dans le cerveau, il n&#39;est pas assez longue pour pénétrer complètement la pleine mesure dorsale-ventrale du cerveau. Une fois que le cerveau est prélevé et les mesures brutes sont obtenues, prendre un tissu à trancher la lame et la finition bloquant le cerveau par le biais de la face ventrale du cerveau (figure 2). </li><li> Avant la congélation des blocs, il est nécessaire de cryoprotect le tissu classé solutions de saccharose PBS tamponné (10, 20 et 30%) maintenue à 4 ˚ C jusqu&#39;à ce que les éviers cerveau. Il faut généralement une nuit d&#39;incubation de 10%, 2-3 jours à 20% et 3-5 jours supplémentaires en 30% pour les blocs de couler au fond du récipient. Un changement quotidien des esolution e saccharose à 30% est recommandée. </li></ol> Partie 6: Résultats Représentant Il ya un certain nombre de mesures morphologiques brute qui peuvent être faites une fois que le cerveau a été retiré du crâne. Il s&#39;agit notamment de longueur / P, le poids et la densité spécifique (tableau 1). Nous avons généralement bloquer le cerveau en mesurant 1 cm 6-7 blocs (figure 1). Chaque pièce est ensuite photographiée (figure 2) et peut encore être disséqué en fonction des besoins de recherche ou préparés pour la congélation des solutions de sucrose classés. <table border="1"><tbody><tr><td> Sujet </td><td> A Longueur / P (Mm) </td><td> Poids (Grammes) </td><td> Déplacement d&#39;eau (Ml) </td><td> Densité spécifique (G / ml) </td></tr><tr><td> O2303-2-1-1 </td><td> 64,3 </td><td> 28,1 </td><td> 24 </td><td> 1,171 </td></tr><tr><td> O5180-1 </td><td> 71,3 </td><td> 38,7 </td><td> 34 </td><td> 1,138 </td></tr><tr><td> O2708-3-1 </td><td> 62,8 </td><td> 28,7 </td><td> 26 </td><td> 1,104 </td></tr><tr><td> O9184-4-2 </td><td> 65,3 </td><td> 29,5 </td><td> 24 </td><td> 1,229 </td></tr><tr><td> N459-1-14-2 </td><td> 68,2 </td><td> 31,6 </td><td> 26 </td><td> 1,215 </td></tr><tr><td> MOYENNE </td><td> 66,38 </td><td> 31,32 </td><td> 26,8 </td><td> 1,171 </td></tr><tr><td> Ecart </td><td> 3,38 </td><td> 4,33 </td><td> 4,17 </td><td> 0,052 </td></tr></tbody></table> Tableau 1. Brut des mesures morphologiques de l&#39;hémisphère droit de 5 mois vervets Vieux <img src="/files/ftp_upload/1259/1259fig1.jpg" alt="Figure 1" /> <img src="/files/ftp_upload/1259/1259fig2.jpg" alt="figure 1.5" /> Figure 1. Schémas pour les plans frontal utilisé pour bloquer le cerveau. Ceci est un exemple d&#39;un cerveau adulte vervet externalisés. Exemple de la procédure de blocage. Les lignes verticales ici sont espacés de 1 cm, produisant typiquement 7 blocs coronale de chaque hémisphère. <img src="/files/ftp_upload/1259/1259fig3.jpg" alt="Figure 2" /> Figure 2. Les blocs de tissu cérébral dans l&#39;espace stéréotaxique. Chaque bloc donne environ 200 sections prises à 50 microns. Avec ce plan d&#39;échantillonnage de plus de 1200 sections à travers le cortex seront prises et un montant supplémentaire de 400 à 500 du cervelet lors tranché dans le plan coronal.

<ol><li>Gallagher, M., Rapp, P. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+use+of+animal+models+to+study+the+effects+of+aging+on+cognition.+Annu+Rev+Psychol+48%5BTitle%5D)+AND+%22%22%5BJournal%5D)">The use of animal models to study the effects of aging on cognition. Annu Rev Psychol 48.</a> , 339-370 (1997).</li>
<li>Clancy, B., Darlington, R., Finlay, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Translating+developmental+time+across+mammalian+species%5BTitle%5D)+AND+%22Neuroscience%22%5BJournal%5D)">Translating developmental time across mammalian species.</a> Neuroscience. 105, 7-17 (2001).</li>
<li>Nowakowski, R. S., Rakic, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+site+of+origin+and+route+and+rate+of+migration+of+neurons+to+the+hippocampal+region+of+the+rhesus+monkey%5BTitle%5D)+AND+%22J+Comp+Neurol%22%5BJournal%5D)">The site of origin and route and rate of migration of neurons to the hippocampal region of the rhesus monkey.</a> J Comp Neurol. 196, 129-154 (1981).</li>
<li>Rakic, P., Bourgeois, J. P., Eckenhoff, M. F., Zecevic, N., Goldman-Rakic, P. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Concurrent+overproduction+of+synapses+in+diverse+regions+of+the+primate+cerebral+cortex%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Concurrent overproduction of synapses in diverse regions of the primate cerebral cortex.</a> Science. 232, 232-235 (1986).</li>
<li>Granger, B., Tekaia, F., Le Sourd, A. M., Rakic, P., Bourgeois, J. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Tempo+of+neurogenesis+and+synaptogenesis+in+the+primate+cingulate+mesocortex%3A+comparison+with+the+neocortex%5BTitle%5D)+AND+%22J+Comp+Neurol%22%5BJournal%5D)">Tempo of neurogenesis and synaptogenesis in the primate cingulate mesocortex: comparison with the neocortex.</a> J Comp Neurol. 360, 363-376 (1995).</li>
<li>Zecevic, N., Rakic, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Development+of+layer+I+neurons+in+the+primate+cerebral+cortex%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Development of layer I neurons in the primate cerebral cortex.</a> J Neurosci. 21, 5607-5619 (2001).</li>
<li>Ervin, F. R., Palmour, R. M., Young, S. N., Guzman-Flores, C., Juarez, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Voluntary+consumption+of+beverage+alcohol+by+vervet+monkeys%3A+population+screening%2C+descriptive+behavior+and+biochemical+measures%5BTitle%5D)+AND+%22Pharmacol+Biochem+Behav%22%5BJournal%5D)">Voluntary consumption of beverage alcohol by vervet monkeys: population screening, descriptive behavior and biochemical measures.</a> Pharmacol Biochem Behav. 36, 367-373 (1990).</li>
<li>Palmour, R. M., Mulligan, J., Howbert, J. J., Ervin, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Of+monkeys+and+men%3A+vervets+and+the+genetics+of+human-like+behaviors%5BTitle%5D)+AND+%22Am+J+Hum+Genet%22%5BJournal%5D)">Of monkeys and men: vervets and the genetics of human-like behaviors.</a> Am J Hum Genet. 61, 481-488 (1997).</li>
<li>Boire, D., Théoret, H., Ptito, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Stereological+evaluation+of+neurons+and+glia+in+the+monkey+dorsal+lateral+geniculate+nucleus+following+an+early+cerebral+hemispherectomy%5BTitle%5D)+AND+%22Exp+Brain+Res%22%5BJournal%5D)">Stereological evaluation of neurons and glia in the monkey dorsal lateral geniculate nucleus following an early cerebral hemispherectomy.</a> Exp Brain Res. 142, 208-220 (2002).</li>
<li>Bjugstad, K. B., Teng, Y. D., Redmond, D. E. J. r, Elsworth, J. D., Roth, R. H., Cornelius, S. K., Snyder, E. Y., Sladek, J. R. Jr <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Human+neural+stem+cells+migrate+along+the+nigrostriatal+pathway+in+a+primate+model+of+Parkinson%27s+disease%5BTitle%5D)+AND+%22Exp+Neurol%22%5BJournal%5D)">Human neural stem cells migrate along the nigrostriatal pathway in a primate model of Parkinson's disease.</a> Exp Neurol. 211, 362-369 (2008).</li>
<li>Lemere, C. A., Beierschmitt, A., Iglesias, M., Spooner, E. T., Bloom, J. K., Leverone, J. F., Zheng, J. B., Seabrook, T. J., Louard, D., Li, D., Selkoe, D. J., Palmour, R. M., Ervin, F. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Alzheimer%27s+disease+abeta+vaccine+reduces+central+nervous+system+abeta+levels+in+a+non-human+primate%2C+the+Caribbean+vervet%5BTitle%5D)+AND+%22Am+J+Pathol%22%5BJournal%5D)">Alzheimer's disease abeta vaccine reduces central nervous system abeta levels in a non-human primate, the Caribbean vervet.</a> Am J Pathol. 165, 283-297 (2004).</li>
<li>Mash, D. C., Staley, J. K., Doepel, F. M., Young, S. N., Ervin, F. R., Palmour, R. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Altered+dopamine+transporter+densities+in+alcohol-preferring+vervet+monkeys%5BTitle%5D)+AND+%22Neuroreport%22%5BJournal%5D)">Altered dopamine transporter densities in alcohol-preferring vervet monkeys.</a> Neuroreport. 7, 457-462 (1996).</li>
<li>Burke, M. W., Palmour, R. M., Ervin, F. R., Ptito, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Neuronal+reduction+in+frontal+cortex+of+primates+after+prenatal+alcohol+exposure%5BTitle%5D)+AND+%22Neuroreport%22%5BJournal%5D)">Neuronal reduction in frontal cortex of primates after prenatal alcohol exposure.</a> Neuroreport. 20, 13-17 (2009).</li>
</ol>

Les auteurs n'ont rien à divulguer.

Le Saint-Kitts-vervet (aethiops Chlorocebus sabeus) est un primate de l&#39;Ancien Monde avec des motifs similaires et les taux de développement du cerveau cortical et sous-corticales à celui des humains. Cette espèce a été utilisé pour modéliser les troubles du comportement humain complexe comme un comportement anxieux, hypertension artérielle 8, 9 hémisphérectomie, la maladie de Parkinson 10, la maladie Alzhemier de 11, et l&#39;abus d&#39;alcool 12. Plus récemment,...

<table><tbody><tr><td>Scalpel</td><td>Fine Science Tools</td><td>10003-12</td><td></td></tr><tr><td>Lames de scalpel</td><td>Fine Science Tools</td><td>10011-00</td><td></td></tr><tr><td>Ciseaux</td><td>Fine Science Tools</td><td>14090-11</td><td>Tous ciseaux chirurgicaux conviennent</td></tr><tr><td>Rongeurs</td><td>Fine Science Tools</td><td>16121-14</td><td></td></tr><tr><td>Pinces</td><td>Fine Science Tools</td><td>11027-12</td><td></td></tr><tr><td>Papier filtre</td><td>Fisher Scientific</td><td>09-924-150</td><td></td></tr><tr><td>Châssis stéréotaxique</td><td>Kopf Instruments</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Lame pour découpage tissulaire</td><td>Thomas Scientific</td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

disséquer le cerveau des primates non humains dans l&#39;espace stéréotaxique

Dissecting the Non-human Primate Brain in Stereotaxic Space

L&#39;utilisation de primates non-humains fournit un excellent modèle de translation pour notre compréhension des processus de développement et le vieillissement chez les humains<sup&gt; 1-6</sup&gt;. En outre, l&#39;utilisation de primates non humains a récemment eu l&#39;occasion d&#39;un modèle complexe naturellement troubles psychiatriques tels que l&#39;abus d&#39;alcool<sup&gt; 7</sup&gt;. Nous décrivons ici une technique pour bloquer le cerveau dans le plan frontal du singe vervet (<em&gt; Chlorocebus aethiops sabeus</em&gt;) Dans le crâne intact dans l&#39;espace stéréotaxique. La méthode décrite ici fournit un avion standard de la section entre les blocs et les sujets et minimise coupes partielles entre les blocs. Sectionnement d&#39;un bloc de tissu dans le plan frontal facilite également la délimitation d&#39;une zone d&#39;intérêt. Cette méthode fournit gérable blocs de taille car un seul hémisphère de l&#39;singe vervet rendements de plus de 1200 sections quand le tranchage à 50 microns. Par ailleurs, en bloquant le cerveau en blocs de 1 cm, elle facilite la pénétration du saccharose pour cyroprotection et permet au bloc d&#39;être tranché sur un cryostat standard.

Le primate non-humain est une espèce importante pour notre compréhension de translation du traitement normal du cerveau. L&#39;organisation anatomique du cerveau des primates peuvent fournir des indications importantes sur les conditions normales et pathologiques chez l&#39;homme.

Disséquer le cerveau des primates non humains dans l&#39;espace stéréotaxique

L'utilisation de primates non humains constitue un excellent modèle translationnel pour notre compréhension des processus de développement et de vieillissement chez l'humain1-6. Dans ...

Cette procédure commence par une tête de singe bien perfusée. Après avoir retiré le crâne, la tête est placée dans un cadre stéréotaxique et une série de coupes coronales stéréotaxiques est réalisée à l’aide du bras manipulateur. Ensuite, le cerveau est extrait, mesuré et protégé par congélation. Bonjour, je suis le Dr Mark Burke du Laboratoire des neurosciences visuelles de l’École d’optométrie de l’Université de Montréal.Je suis le Dr Shaheen Zur, également du Laboratoire de neurosciences visuelles à l’École d’optométrie de l’Université de Montréal. Je suis le Dr Mo Petto, directeur du Laboratoire de neurosciences visuelles à l’École d’optométrie de l’Université de Montréal. Aujourd’hui, nous allons vous montrer une procédure permettant de bloquer le cerveau de primates non humains dans l’espace stéréotaxique.Nous utilisons cette procédure dans notre laboratoire pour étudier divers aspects de l'organisation cérébrale lors du développement normal et en réponse à des perturbations développementales. Commençons donc. Ce protocole commence après l'euthanasie, la fixation et la décapitation d'un singe vervet.Avant le retrait du cerveau, il faut préparer le cadre stéréotaxique. On doit d'abord déterminer les coordonnées du plan interauriculaire zéro de Horsley-Clark ou du point médian théorique entre les oreilles. Pour mesurer ce plan, insérez les barres auriculaires de manière égale dans l'appareil.Ensuite, placez une lame de scalpel dans le bras du manipulateur stéréotaxique et mesurez le point médian entre les barres auriculaires. Préparez ensuite la tête pour l'insérer dans le cadre stéréotaxique. Utilisez un rongeur osseux et un scalpel pour retirer la mâchoire inférieure.À ce stade, éliminez soigneusement tout calvaire restant au cours de ces étapes. Veillez à ne pas retirer les os temporaux, car vous aurez besoin des conduits auditifs intacts pour fixer la tête dans le cadre stéréotaxique. À l’aide de pinces et de ciseaux, découpez délicatement la dure-mère visible sur le cerveau exposé.Maintenant, le crâne est prêt à être placé dans le manipulateur stéréotaxique. Pour commencer le blocage stéréotaxique du cerveau, insérez la tête dans le cadre, réglez les supports oculaires et les barres auriculaires comme vous le feriez pour une chirurgie stéréotaxique. Placez le manipulateur stéréotaxique selon l'axe antérieur-postérieur prédéterminé, ou axe AP.Pour commencer le blocage du cerveau, positionnez le manipulateur sur le côté le plus à gauche ou le plus à droite du cerveau et abaissez la lame pour effectuer votre premier incision. La lame sera perpendiculaire à la ligne médiane du cerveau, coupant dans le plan coronal.Relever la lame afin qu'elle dégage complètement la surface du cerveau. Ensuite, déplacer la lame médialement jusqu'à chevaucher légèrement la première incision, puis abaisser la lame à nouveau. Poursuivre en réalisant des incisions chevauchantes jusqu'à atteindre le bord opposé du cerveau.Ceci termine le premier blocage coronal. Déplacez le manipulateur d'un centimètre vers l'avant ou vers l'arrière le long de l'axe AP et effectuez une autre série de coupes dans le plan coronal, parallèlement aux précédentes. Continuez ainsi jusqu'à ce que vous ayez bloqué l'ensemble du cerveau.À présent que vous avez terminé la découpe, il est temps d'extraire le cerveau du crâne. Commencez par retirer la tête du cadre. Essayez de stabiliser le cerveau en le soutenant délicatement dans la paume de votre main afin d'éviter qu'il ne bouge à l'intérieur du crâne et ne subisse de dommages.Placez votre petit doigt en travers des lobes frontaux pour empêcher la surface du cerveau de se dessécher. Humidifiez un morceau de gaze avec du PBS et placez-le sur le cerveau. Maintenez fermement la tête par le crâne et enlevez les os occipitaux et temporales restants ainsi que la colonne vertébrale.Cela met à nu les faces basale et latérale du cerveau. Ensuite, retirez la dure-mère restante. Enfin, retirez l'os nasal et tout os frontal résiduel, ce qui permettra d'accéder aux bulbes olfactifs.Il est important d'ôter l'os frontal. Enfin, car lors de l'ablation de la base du crâne, le cerveau bouge légèrement et les bords irréguliers de l'os frontal pourraient endommager les lobes frontaux.Retirez soigneusement toute matière résiduelle de la dure-mère, soulevez délicatement la partie antérieure du cerveau, glissez le scalpel sous le cerveau et détachez-le du crâne. Il restera intact comme un oignon coupé par le sommet, car la lame de coupe n’atteint pas complètement le côté ventral. Vous pouvez effectuer plusieurs mesures utiles avant de congeler le cerveau.Tout d'abord, un pied à coulisse peut être utilisé pour mesurer l'axe antéropostérieur du cerveau. Ensuite, déterminez sa densité spécifique en pesant le cerveau. Puis mesurez le volume par déplacement d'eau dans une éprouvette graduée.Vous avez maintenant la masse de densité divisée par le volume. Maintenant que vous avez effectué des mesures sur l'ensemble du cerveau, il est temps de libérer les blocs individuels de tissu aux endroits où ils sont attachés sur la face ventrale du cerveau, et de les préparer au congélation. Prenez une lame de découpe de tissu et prolongez chaque incision à travers la face ventrale du cerveau afin de libérer les blocs.Un pied à coulisse peut être utilisé pour mesurer les AE médial, latéral et antéropostérieur. Les blocs de cerveau sont désormais prêts à être cryoprotégés et congelés. Nous venons de vous montrer comment découper un cerveau de primate non humain dans un espace stéréotaxique.Lors de cette procédure, il est important de rétracter complètement la lame avant d'effectuer tout mouvement latéral médial à l'aide d'un manipulateur stéréotaxique. De plus, lors du retrait des os du cerveau, faites attention à ne pas endommager le cortex avec les ER. Voilà, c'est tout.Merci d'avoir regardé et bonne chance avec vos expériences.

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