Name: Préparation des cultures de neurones dembryons de drosophile Midgastrula scène (Vidéo) | JoVE Journal
Uploaded: 2007-07-04T00:00:00.000+00:00
Duration: 13 min 7 s
Description: Apprenez à préparer des cultures neuronales primaires à partir d'embryons de Drosophila au stade midgastrula. Cette méthode permet d'étudier l'excitabilité électrique et la transmission synaptique des neurones.

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Ce travail a été soutenu par le NIH aux subventions NS27501 DKOD. Un appui supplémentaire pour ce travail à partir d&#39;une subvention HHMI professeur d&#39;DKOD.

Collection I. embryon de drosophile <ol><li> Préparer les plaques collecte des œufs <ol><li> Faire bouillir 200 ml dH 2 O avec 8 g d&#39;agar </li><li> Laisser refroidir à 50 ° C </li><li> Ajouter 2 ml de EtOH et 2 ml d&#39;acide acétique </li><li> Verser dans des boîtes de 35 mm de Petri en plastique, dessus </li><li> Refroidir et conserver dans contenant hermétique à 4 ° C </li><li> Donne environ 80 plaques </li></ol></li><li> Préparer la pâte de levure <ol><li> Dissoudre la levure active Fleishmans de cuisson dans de l&#39;eau pour former une pâte </li><li> Micro-ondes pendant 20-30 secondes pour tuer la levure (attention aux bouillante sur) </li><li> Stocker dans une seringue de 10 cc (sans aiguille) à 4 ° C pendant 2 semaines </li></ol></li><li> Mouches: Les adultes utilisés pour la collecte d&#39;œufs sont généralement plus productives entre 3 et 14 jours après son apparition, pourvu qu&#39;ils aient eu accès à des aliments frais. De nombreux stocks de mutants ont diminué de fertilité qui peut se manifester à un taux réduit de la ponte et un changement dans l&#39;âge où ils sont plus productifs. Généralement, plusieurs centaines d&#39;adultes font pour une bonne ponte de la population. </li><li> Procédure: Étendre une mince couche de levure pâte sur une plaque de collecte des œufs. Cela fournit un substrat favorable à la ponte des œufs. Transfert adulte vole à une bouteille de collecte des œufs propres et la plaque de collection de bandes à l&#39;embouchure de la bouteille. Ne laissez pas les mouches dans ces bouteilles plus longtemps que 3-4 heures que l&#39;humidité augmente et les mouches se coincer dans la pâte et sur les côtés de la bouteille. </li></ol> II. Dechorionation Embryon avec javellisant <ol><li> Mettre en place un entonnoir Büchner relié à un flacon de filtre attaché à un aspirateur. Placer un morceau de papier Whatman n ° 1 dans l&#39;entonnoir. Avec aspiration course, mouiller le papier avec de l&#39;eau distillée stérile. </li><li> Rincez embryons à partir de plaques de collecte sur le papier filtre avec un jet d&#39;eau à partir d&#39;un flacon de lavage. </li><li> Rincez-les en plusieurs volumes d&#39;eau stérile, éteignez l&#39;aspirateur, puis ajoutez un volume d&#39;entonnoir d&#39;eau de Javel à 50%. Laissez les œufs reposer pendant 5-10 minutes. Le chorions sera dissoute en 1-2 minutes, mais plus vous laissez les embryons dans l&#39;eau de javel plus de la levure contaminant seront détruits. Ramassez tous les adultes ou les larves qui ont rincé plat. </li><li> Rincez les embryons dans une boîte de Pétri stérile (culture de tissus non) avec de l&#39;eau distillée stérile. Beaucoup des embryons sera coller au fond du plat si elle n&#39;a pas été pré-mouillé. Rincez plusieurs fois à l&#39;eau stérile dans ce plat. </li><li> Examiner les embryons avec la lumière transmise à repérer embryons au stade mi-gastrula. </li></ol> III. Préparation des cultures d&#39;embryon unique <ol><li> Faire DDM1 (voir les recettes dans la section IV) </li><li> Versez de l&#39;eau hors plat du embryons juste avant la culture. Couvrir avec les médias embryons stérile. </li><li> Énoncer 3, 35 mm des boîtes de Pétri. Mettre en 4 lamelles rondes autoclavés dans chaque plat. Sur chaque lamelle, mettre 5 pi de milieu. Utilisez Bellco lamelles basse coverlips verre au plomb. Bellco biologique Verrerie 800-257-7043 Cat # 1943-00012 </li><li> Tirez quelques pipettes assez fine. Les pipettes nous utilisons sont tirés sur une Narishige PP-83 extracteur. Les dimensions exactes de la pipette ne sont pas cruciaux et nous avons l&#39;habitude de les tirer plus fine que nous voulons et les casser la pointe dans le même champ de vision comme l&#39;embryon d&#39;évaluer la taille. Vous ne voulez pas d&#39;aspirer tous les embryons d&#39;un seul coup, et ne voulons pas de votre bout si petit qu&#39;il faut 5 minutes pour aspirer les cellules. Visez entre les deux. Examiner les embryons à lumière transmise et d&#39;utiliser un tube d&#39;aspiration la bouche attachée à la pipette pour retirer le contenu de l&#39;embryon. Disperser les cellules sur la lamelle délicatement préparé par l&#39;expulsion des cellules aussi proche de la lamelle que possible. Vous voudrez peut-être examiner les lamelles à haute puissance et encore de disperser les cellules de la même manière. </li><li> Laissez reposer pendant les cellules ne sont plus que 10 minutes. Recouvrir le plat avec les médias et mis en couveuse, 4-5% CO 2 l&#39;environnement, si on utilise un milieu défini. Température entre 22-24 ° C. Nous utilisons régulièrement 23 ° C et une humidité de 95%. L&#39;humidité est importante, comme vous voulez éviter l&#39;évaporation. Vous pouvez utiliser une norme incubateur mammifères placés dans une chambre froide avec contrôle de température réglée à 23 ° C. </li></ol> IV. Moyennes DDM1 Définie pour la croissance des cultures <ol><li> Faire DMEM: Pour 100 ml de Ham F12/DME médias (DMEM) (Irvine Scientific # 9052). <ol><li> Ajouter 0,476 g Hepes (20mm) (Sigma # H-3375). Mélanger. </li><li> Ajouter 1,25 ml de L-glutamine 200 mM (Irvine Scientific # 9317). Mélanger. </li><li> Filtre de hotte avec 0,2 um acétate de filtre seringue (besoin de 2 filtres). </li><li> Le pH est 6,64 et OSM 288. </li><li> Faire des aliquotes de 10 ml dans des tubes de centrifugeuse de 15 ml. </li><li> Conserver à 4 ° C pendant pas plus de 2 semaines. Remarque: Toujours utiliser l&#39;eau filtrée et autoclavés font dans des conteneurs qui sont réservées pour les médias et les suppléments seulement. Ne mettez jamais une électrode de pH ou le barreau d&#39;agitation utilisé à des fins autres Media.To font DDM1: suppléments Ajouter énumérés ci-dessousau DMEM juste avant la culture. </li></ol></li><li> Pour 10 ml de DMEM ajouter: <ul><li> 100 ul de la transferrine </li><li> 100 ul Putrescine </li><li> 100 Sélénium ul </li><li> 100 ul de progestérone </li><li> 50 ul insuline </li></ul></li></ol>

<ol><li>Rohrbough, J., O'Dowd, D. K., Baines, R. A., Broadie, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cellular+bases+of+behavioral+plasticity%3A+Establishing+and+modifying+synaptic+circuits+in+the+Drosophila+Genetic+System%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Neurobiol%22%5BJournal%5D)">Cellular bases of behavioral plasticity: Establishing and modifying synaptic circuits in the Drosophila Genetic System.</a> J. Neurobiol. 54, 254-271 (2003).</li>
<li>O'Dowd, D. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Voltage-gated+currents+and+firing+properties+of+embryonic+Drosophila+neurons+grown+in+a+chemically+defined+medium%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Neurobiol%22%5BJournal%5D)">Voltage-gated currents and firing properties of embryonic Drosophila neurons grown in a chemically defined medium.</a> J. Neurobiol. 27, 113-126 (1995).</li>
<li>Lee, D., O'Dowd, D. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Fast+excitatory+synaptic+transmission+mediated+by+nAChR+in+cultured+Drosophila+neurons%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Fast excitatory synaptic transmission mediated by nAChR in cultured Drosophila neurons.</a> J. Neurosci. 19, 5311-5321 (1999).</li>
<li>Lee, D., O'Dowd, D. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cyclic-AMP-dependent+plasticity+at+excitatory+cholinergic+synapses+in+Drosophila+neurons%3A+Alterations+in+the+memory+mutant+dunce%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Cyclic-AMP-dependent plasticity at excitatory cholinergic synapses in Drosophila neurons: Alterations in the memory mutant dunce.</a> J. Neurosci. 20, 2104-2111 (2000).</li>
<li>Hodges, D. D., Lee, D., Boswell, K., Preston, C. F., Hall, L. M., O'Dowd, D. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((tipE+regulates+sodium-dependent+repetitive+firing+in+Drosophila+neurons%5BTitle%5D)+AND+%22Mol.+Cell+Neurosci%22%5BJournal%5D)">tipE regulates sodium-dependent repetitive firing in Drosophila neurons.</a> Mol. Cell Neurosci. 19, 402-416 (2002).</li>
<li>Lee, D., Su, H., Dowd, O., K, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((GABA+receptors+containing+Rdl+subunits+mediate+fast+inhibitory+synaptic+transmission+in+Drosophila+neurons%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Neurosci%22%5BJournal%5D)">GABA receptors containing Rdl subunits mediate fast inhibitory synaptic transmission in Drosophila neurons.</a> J. Neurosci. 23, 4625-4634 (2003).</li>
</ol>

Dans les cultures préparées à partir de la drosophile embryons au stade midgastrula les neurones proviennent de précurseurs neuroblastes, dont beaucoup divisent avant de différenciation in vitro. Ce système offre donc une occasion unique d&#39;étudier les facteurs génétiques et environnementaux importants dans des phases très précoces du développement neuronal (Rohrbaugh et al., 2003). Nous avons montré que les neurones cultivés dans un milieu simple défini différencier en neurones électriquement excitables qui a également une forme fonctio...

Les cultures faites dans ce média doit être maintenu dans un incubateur à 5% de CO2 à environ 22-24 ° C. Nous utilisons une culture de tissus de mammifères standards incubateur placé dans une chambre froide et chauffée à 23 ° C. Toujours utilisé autoclavé eau filtrée et de faire dans des conteneurs qui sont réservées pour les médias et les suppléments seulement. Ne placez jamais un pH-mètre ou le barreau d&#39;agitation utilisé à d&#39;autres fins dans les médias.

préparation des cultures de neurones d&#39;embryons de drosophile midgastrula scène

Preparation of Neuronal Cultures from Midgastrula Stage Drosophila Embryos

Cette vidéo illustre la procédure de mise cultures neuronales primaires d&#39;embryons de drosophile midgastrula scène. Les méthodes de collecte des embryons et leur dechorionation utilisant l&#39;eau de Javel sont démontrés. Aide d&#39;une pipette en verre attaché à un tube d&#39;aspiration bouche, nous illustrons l&#39;élimination de toutes les cellules issues d&#39;embryons unique. La méthode pour disperser les cellules d&#39;embryons de chaque dans un petit (5 l) goutte de milieu sur une lamelle de verre sans revêtement est démontrée. Une vue à travers le microscope à 1 heure après le placage illustre la densité de cellule préférée. La plupart des cellules qui survivent lorsqu&#39;elles sont cultivées en milieu défini sont neuroblastes qui divisent une ou plusieurs fois dans la culture avant d&#39;étendre les processus neuritique par 12-24 heures. Une vue à travers le microscope illustre le niveau de la croissance des neurites et la ramification attendus dans une culture saine à 2 jours in vitro. Les cultures sont cultivées dans un milieu à base de bicarbonate de simples définis, dans un 5% de CO 2 incubateur à 22-24 ° C. Processus neuritiques continuer à élaborer au cours de la première semaine de la culture et quand ils entrent en contact avec des neurites des cellules voisines, ils forment souvent des connexions synaptiques fonctionnelles. Les neurones de ces cultures d&#39;exprimer voltage-dépendants sodium, le calcium, et les canaux potassiques et sont électriquement excitables. Ce système de culture est utile pour étudier moléculaires des facteurs génétiques et environnementaux qui régulent la différenciation neuronale, excitabilité et la formation des synapses / fonction.

Cette vidéo montre la préparation de cultures primaires de neurones d&#39;embryons de drosophile midgastrula scène. Vues des cultures vivantes montrent les cellules 1 heure après le placage et les neurones différenciés après 2 jours de croissance dans un milieu à base de bicarbonate défini. Les neurones sont électriquement excitables et forment des connexions synaptiques.

Préparation des cultures de neurones d&#39;embryons de drosophile Midgastrula scène

Cette vidéo illustre la procédure de préparation de cultures neuronales primaires à partir d'embryons de Drosophila au stade de gastrula moyenne. Les méthodes de collecte des embryons...

Je m'appelle Diana Dowd, et je suis professeure au département de biologie du développement et de cellulaire, ainsi qu'en anatomie et neurobiologie à l'université de Californie à Irvine. Aujourd'hui, je vais démontrer la préparation de cultures neuronales primaires à partir d'embryons de drosophile. Cette procédure consiste à retirer toutes les cellules d'un embryon de drosophile au stade mi-gastrulation, puis à les placer en culture cellulaire.Ce que nous utilisons ces cultures pour comprendre, c'est quels sont les gènes et les facteurs environnementaux importants pour la régulation de l'excitabilité électrique et de la transmission synaptique entre les neurones de drosophile. Pour commencer cette procédure, nous devons collecter des embryons de drosophile. Pour ce faire, nous prenons des plaques de collecte d'œufs et y étalons une petite quantité de pâte de levure.Il s'agit d'un substrat favorable pour que les mouches adultes y déposent leurs œufs. Nous plaçons ces boîtes sur des flacons contenant une population de mouches adultes, généralement entre une centaine et deux cents mouches. Ensuite, nous laissons les mouches adultes pondre leurs œufs pendant environ deux à trois heure

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Cette vidéo montre la préparation de cultures primaires de neurones du cerveau des drosophiles stade avancé pupes. Vues des cultures vivantes montrent neurites et l'imagerie des niveaux de calcium en utilisant Fura-2.

Cultures neuronales primaires du cerveau des drosophiles stade tardif pupes

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In utero électroporation suivie par la culture neuronale primaire pour étudier la fonction des gènes dans un sous-ensemble des neurones corticaux

Nous fournissons un protocole détaillé pour la préparation de cellules primaires dissociées...

Cultures de cellules primaires à partir Drosophile Embryons Gastrula

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Apprenez à préparer des cultures neuronales primaires à partir d'embryons de Drosophila au stade midgastrula. Cette méthode permet d'étudier l'excitabilité électrique et la transmission synaptique des neurones.

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