Name: Microdissection de Black Widow Soie daraignée des glandes productrices (Vidéo) | JoVE Journal
Uploaded: 2011-01-11T23:59:00.000+00:00
Duration: 9 min 47 s
Description: Apprenez la microdissection des glandes séricigènes de l'araignée veuve noire pour étudier la production de soie. Cette méthode permet d'isoler sept glandes distinctes pour analyses moléculaires et biochimiques.

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Ce travail a été soutenu par une subvention NSF RUI MCB-0950372 Caractérisation moléculaire droit de Black Silks Veuve.

1. Anesthésier l'araignée et l'isolement de l'abdomen <ol><li> Transfert de l'araignée d'un bocal en verre dans une boîte en carton doublée de plastique (figure 1A). Nous recueillons généralement araignées de tas de bois, des garages ou des buissons et les loger dans le laboratoire dans des bocaux en verre. Parce que l'araignée ne peut pas monter le revêtement en plastique, elle fournit une méthode efficace pour le transfert de l'araignée à partir d'un bocal en verre ou un café dans un petit peut flacon à des fins d'anesthésier. Alors que la manipulation de l'araignée à ce stade, vous devriez porter deux paires de gants en latex ou des gants de jardinage pour des raisons de sécurité. </li><li> Alors que l'araignée est dans la boîte de doublés de plastique, l'approche de l'araignée de son dos et de laisser la lame d'araignée dans le flacon de culture en plastique. Après l'araignée pénètre dans le flacon, placer immédiatement la fiche sur le dessus (figure 1B). Nous vous recommandons d'utiliser un flacon qui est d'environ 101,6 mm x 31,75 mm (L x P). Cela réduit la quantité de dioxyde de carbone nécessaire pour l'étape d'anesthésier. </li><li> Anesthetize l'araignée en introduisant du gaz dioxyde de carbone à 5-10 livres par pouce carré pendant 10 min (figure 1C). Cette quantité de gaz ne frappez l'araignée pendant environ 5 min, donc après l'anesthésie, vous devez immédiatement procéder aux étapes 1.4 à 1.5. </li><li> Placez l'araignée anesthésiés dans un plat à la dissection de petits et de l'utilisation des forceps pour la position de l'araignée jusqu'à côté dorsal (sablier rouge vers le bas). </li><li> Fixez le pédoncule (tige étroit reliant le céphalothorax et l'abdomen) pour libérer l'abdomen du reste de l'araignée (figure 1D). Stocker le céphalothorax dans le congélateur une nuit dans une boîte de Pétri et jeter après gelé le lendemain. Soyez prudent lorsque vous déplacez le céphalothorax que les crocs de l'araignée sont présents sur ce segment. </li><li> Fixez l'abdomen pour le matériel Sylgard dans le plat de dissection petite aide d'une épingle seul insecte. Insérer la broche d'insectes à travers le trou fait par la coupure de pédoncule (figure 1E). Cela peut facilement être identifié comme le site où le fluide sort de l'écrêtage du pédoncule. Assurez-vous de la filière (extrémité opposée du pédoncule) est orientée vers le bas (proche de chez vous). </li></ol> 2. Suppression de l'exosquelette <ol><li> Faire la première incision grâce à l'exosquelette utilisant une paire de microciseaux, en commençant par le trou à partir de la coupure de pédicelle. Couper latéralement jusqu'à la face dorsale est atteint sur les deux côtés (figure 1F). En utilisant une paire de pinces, peler le segment antérieur et exosquelette insérer une seconde broche à cet endroit. Après l'insertion du second axe, tourner le plateau de dissection caudalement (angle de 90 °) de la coupe latérale initiale et continue jusqu'à ce que la découpe filières sont atteint (figure 1G). Cette incision sera perpendiculaire ou verticale pour la première coupe latérale. Ne pas couper à travers les filières où l'incision verticale est faite (par rapport postérieur à la sablier et elle a un aspect circulaire). Le défaut d'insérer les broches seconde se traduira dans l'abdomen de tourner quand les incisions verticales sont réalisées. </li><li> Immerger l'abdomen à disséquer une solution tampon (0,1 M de chlorure de sodium, 0,015 M citrate de sodium, 0,1% de diéthyle pyrocarbonate). </li><li> Peler l'exosquelette reste en arrière à partir de l'initiale, incision latérale. Lorsque cela est terminé, le tissu adipeux doit être clairement visible (figure 1H). </li></ol> 3. Isolement des glandes produisant la soie <ol><li> En utilisant une pince commencer à démêler l'écart de la couche de graisse (figure 1H). La graisse aura une couleur blanchâtre à l'aspect jaunâtre. Continuez jusqu'à ce que la plupart des graisses est enlevé et les glandes de soie sont clairement visibles. La glande tubuliform se compose de trois paires de très longues, des tubes cylindriques qui sont abondants dans la cavité abdominale. Le ampullate majeur, qui se trouve dans les paires, est une ampoule grand croissant, en forme avec une longue queue distaux et un conduit proximale qui diminue de largeur à l'approche de filières de l'araignée. Le ampullate mineur est très similaire en morphologie à l'ampullate majeur, mais il est nettement plus petit. La glande flagelliformes, également en paires, est ronde et multilobulaire avec une petite cylindriques en zig-zag conduit qui s'étend vers le bas vers les filières. La glande totale (en paires) est un très grand, la glande multilobulaire qui a un canal excréteur très important qui a de grands lobes irréguliers sur elle. Les glandes acinus se produisent en grand nombre et ressemblent à court, projections fingerlike petits. La glande piriforme est la plus petite glande située dans l'abdomen et a beaucoup compacté, conduits cylindriques qui ressemblent à un ventilateur avec de nombreux petits canaux excréteurs qui s'étendent jusque dans les filières. </li><li> Nous vous conseillons de retirer les glandes dans l'ordre suivant: tubuliform, ampullate majeur, flagelliformes, ampullate mineur, globalement, acinus, et ensuite le piriformes (Figure 2A-B). </li><li> En commençant par le tubuliform, taquiner ces glandes hors du reste de l'eglandes e - ils doivent être assis sur le dessus des autres glandes (figure 2A). Il ya trois paires de glandes tubuliform dans une araignée unique. Permettez-leur de flottement libre, mais restent attachés à leurs filières par leurs conduits. </li><li> Ensuite, l'écart taquiner les glandes ampullate majeur. Il ya deux glandes ampullate majeurs présents dans une araignée. Pendant la procédure de retrait, assurez-vous les gaines restent attachés à des glandes (figure 2A). </li><li> Continuer à taquiner le reste de la glande loin les uns des autres, à travailler avec soin pour éviter toute perforation de la glande, en particulier l'agrégat et les glandes flagelliformes. Chaque glande devrait être libre flottante tout le chemin à son point de sortie dans l'exosquelette pour les filières. Ces glandes sont également trouvés dans les paires. Retirez chaque glande en pinçant le conduit avec une pince et tirant doucement jusqu'à ce qu'elle se détache du point de sortie. Le ampullate majeur, flagelliformes, ampullate mineur, et les glandes agrégées sont trouvés dans les paires. Les glandes piriformes acinus et se produisent dans de nombreuses paires de plus. </li><li> Retirez chaque glande en pinçant le conduit avec une pince et tirant doucement jusqu'à ce qu'elle se détache du point de sortie par la filière. Nous stockent généralement les glandes humides, cependant, nous n'ajoutons pas de tampon supplémentaire. </li><li> Comme les glandes sont supprimés, les placer dans stériles pré-étiquetées 1,5 ml microtubes. Glandes individuels sont présentés dans la figure 3A-G. Conservez ces glandes sur la glace, puis les congeler éclair dans l'azote liquide. Suite à la congélation instantanée dans l'azote liquide, placez-les à -80 ° C pour le stockage. </li></ol> 4. Les résultats représentatifs Lors de la suppression des glandes différentes, un soin extrême doit être pris pendant la manipulation du flagelliformes et les glandes agrégées, comme ces deux structures peuvent être facilement perforés et endommagé avec la pince. Par ailleurs, il est à noter que les glandes morphologiquement flagelliformes et d'agrégat sont très similaires avant leur retrait et ils sont souvent étroitement liés les uns aux autres. Pour prévenir la contamination croisée de ces tissus lors de l'enlèvement, le dissecteur devrait soigneusement taquiner ces structures à part. De plus, lors de l'exposition initiale de la production de soie glandes, les glandes et les acinus piriformes sera le plus difficile à visualiser immédiatement en raison de leur petite taille et la localisation anatomique. Souvent, il ya la présence de nombreux œufs. Par ailleurs, des précautions supplémentaires doivent être prises lors de l'enlèvement de la glande pyriforme, que ce tissu est extrêmement collante et adhèrent souvent à votre pince. Lorsque cette procédure est faite correctement, il est possible d'obtenir les sept glandes productrices de soie d'une araignée seule manière hautement purifié. Typiquement, on peut récupérer des quantités de microgramme d'ARN total et de protéines à partir d'une dissection d'araignée unique. Un exemple d'utilisation de l'ARN total pour qPCR à examiner les taux d'ARNm d'un gène tubuliform restreint fibroïne, TuSp1, est illustré (Figure 4). Représentant des expériences qui impliquent des protéines de lysats recueillis par les glandes, par exemple en solution de digestion tryptique suivie par MS analyse (pourrait aussi être utilisé pour MS / MS) ou une analyse d'acides aminés composition est indiquée (figure 5-6, respectivement). <img src="/files/ftp_upload/2382/2382fig1a.jpg" alt="Figure 1a" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figure 1a"><img src="/files/ftp_upload/2382/2382fig1e.jpg" alt="Figure 1e" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figure 1e"> Figure 1. Manutention, anesthésiant, et le retrait de l'exosquelette de l'abdomen d'une araignée veuve noire femelle. A) Transfert de l'araignée dans une boîte en carton doublé de plastique pour faciliter le déplacement de l'araignée dans un flacon en plastique plus petites. B) Spider placé dans un flacon en plastique avec bouchon. C) L'anesthésie de l'araignée avec du gaz de dioxyde de carbone. D) la séparation du céphalothorax de l'abdomen à l'aide microciseaux. E) Immobilisation de l'abdomen dans le plateau de dissection utilisant des broches d'insectes. F) Voir, après une incision latérale est faite avec des ciseaux et une partie de l'exosquelette est abrogé retour avec une pince. G) Les incisions faites perpendiculairement à la première coupe latérale. H) la révocation de l'exosquelette et l'exposition de la couche de graisse. <img src="/files/ftp_upload/2382/2382fig2.jpg" alt="Figure 2" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figure 2"> Figure 2. Visualisation des sept différentes glandes productrices de soie tandis intacte dans l'abdomen de l'araignée ainsi que les tissus environnants. A) Images de la tubuliform, ampullate majeur, flagelliformes, globalement, les tissus ampullate mineure à un grossissement de 12X. B) l'image de l'acinus et les glandes piriformes à un grossissement de 12X. <img src="/files/ftp_upload/2382/2382fig3a.jpg" alt="Figure 3a" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="La figure 3a"><img src="/files/ftp_upload/2382/2382fig3e.jpg" alt="Figure 3e" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figure 3e"> Photographies Figure 3. Des sept soie glandes productrices après leur retrait de l'abdomen. Toutes les images ont été capturées à un grossissement de 20x à l'exception de l'acinus et les glandes piriformes, qui ont été fait à 40X. Un important)ampullate glande; B) ampullate majeurs et mineurs (côté droit) pour comparaison de taille; C) tubuliform; D) flagelliformes; E) des agrégats; F) acinus; G) piriforme. <img src="/files/ftp_upload/2382/2382fig4.jpg" alt="Figure 4" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figure 4"> Les résultats représentatifs Figure 4. Du patron d'expression du gène de la soie, TuSp1, après l'arpentage de la TuSp1 les niveaux d'ARNm dans les différents soie glandes productrices (hors de la glande piriformes) à l'aide quantitative PCR en temps réel (qPCR) isolement suivantes de l'ARN total à partir les glandes. <img src="/files/ftp_upload/2382/2382fig5.jpg" alt="Figure 5" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figure 5"> Figure 5. Exemple d'analyse de MS d'extraits protéiques obtenus à partir de la glande piriformes suivants en solution de digestion tryptique. Remarque: x2 représente deux fois de grossissement de l'intensité du spectre. Messes spectre des ions peptidiques qui correspondent aux régions de la fibroïne PySp1 sont affichés avec le symbole #. <img src="/files/ftp_upload/2382/2382fig6.jpg" alt="Figure 6" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figure 6"> Figure 6. Résultat typique du profil de composition en acides aminés des protéines extraites de la glande tubuliform. Remarque: ASX = Asp et Asn; GLX = Glu et Gin. Coloration bleue reflète acides aminés avec des groupes polaires chaîne latérale tandis coloration rouge représente les résidus d'acides aminés avec des groupes non polaires chaîne latérale.

<ol><li>Vollrath, F., Knight, D. P. Int. J. Biol. Macromol. 24, 243-243 (1999).</li>
<li>Gosline, J. M., Guerette, P. A., Ortlepp, C. S. J. Exp. Biol. 202, 3295-3295 (1999).</li>
<li>Gosline, J. M., DeMont, M. E., Denny, M. W. Endeavour. 10, 31-31 (1986).</li>
<li>Hinman, M. B., Jones, J. A., Lewis, R. V. Trends Biotechnol. 18 (9), 374-374 (2000).</li>
<li>Lewis, R. V., Xu, M. Proc. Natl. Acad. Sci. 87, 7120-7120 (1990).</li>
<li>Colgin, M. A., Lewis, R. V. Protein Sci. 7 (3), 667-667 (1998).</li>
<li>Tian, M., Lewis, R. V. Appl. Phys. A-Mater. 82, 265-265 (2006).</li>
<li>Hu, X., Lawrence, B., Kohler, K. Biochemistry. 44 (30), 10020-10020 (2005).</li>
<li>Vasanthavada, K., Hu, X., Falick, A. M. J Biol Chem. 282 (48), 35088-35088 (2007).</li>
<li>Hayashi, C. Y., Blackledge, T. A., Lewis, R. V. Mol. Biol. Evol.. 21 (10), 1950-1950 (2004).</li>
<li>Blasingame, E., Tuton-Blasingame, T., Larkin, L. J Biol Chem. 284 (42), 29097-29097 (2009).</li>
</ol>

Notre méthodologie pour la microdissection des glandes produisant la soie de l&#39;araignée veuve noire offre un moyen efficace d&#39;obtenir hautement purifiées de la soie des glandes productrices. Les dissections peuvent être complétés dans 1,5 à 3 heures, ce qui donne un ensemble complet de sept distincts de soie des glandes productrices d&#39;cobweavers. Obtention hautement purifiées de la soie de la glande échantillons permet aux enquêteurs la possibilité d&#39;effectuer un large éventail d&#39;études biochimiques,...

<table><tbody><tr><td>Chlorure de sodium</td><td>Electron Microscopy Sciences</td><td>SX0420-1</td><td>0,1 M dans l'eau</td></tr><tr><td>Pyrocarbonate de diéthyle</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>D-5758 - 5 ml</td><td>0,1 % v/v</td></tr><tr><td>Citrate de sodium</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>S1804 - 1 kg</td><td>0,015 M dans l'eau</td></tr><tr><td>Microscope stéréoscopique</td><td>Leica Microsystems</td><td>Leica MZ16</td><td></td></tr><tr><td>Caméra numérique pour microscope</td><td>Leica Microsystems</td><td>DFC320</td><td>Logiciel - Leica Application Suite v2.8.1</td></tr><tr><td>Ciseaux de Vannas</td><td>World Precision Instruments, Inc.</td><td>500260</td><td></td></tr><tr><td>Pinces en acier inoxydable</td><td>World Precision Instruments, Inc.</td><td>501764</td><td>Mini Dumont n° M5S</td></tr><tr><td>Épingles à insectes</td><td>Indigo Instruments</td><td>33414-2</td><td>Épingles à insectes n° 2</td></tr><tr><td>Plats de dissection petits ou grands</td><td>Living Systems Instrumentation</td><td>DD-50-S ou DD-90-S</td><td>52 mm de diamètre × 18 mm de hauteur (profondeur Sylgard ~6 mm) ou 93 mm × 22 mm</td></tr><tr><td>&lt;em&gt;Drosophila&lt;/em&gt; tubes de culture</td><td>Carolina Biological</td><td>FR-17-3076</td><td>Dimensions : 31,75 mm de diamètre × 101,6 mm</td></tr></tbody></table>

microdissection de black widow soie d&#39;araignée des glandes productrices

Microdissection of Black Widow Spider Silk-producing Glands

Araignées modernes tour des fibres de soie de haute performance avec une large gamme de fonctions biologiques, y compris la locomotion, la proie saisie et la protection de développer 1,2 progéniture. Araignées accomplir ces tâches en faisant tourner plusieurs types de fibres distinctes qui ont diverses propriétés mécaniques. Une telle spécialisation des types de fibres a eu lieu à travers l&#39;évolution des différentes glandes productrices de soie, qui fonctionnent comme des bio-usines de petite taille. Ces bio-usines de fabrication et de stocker de grandes quantités de protéines de soie pour la production de fibres. Grâce à une série complexe d&#39;événements biochimiques, ces protéines de soie sont convertis à partir d&#39;un liquide dans un matériau solide lors de l&#39;extrusion. Des études ont démontré que mécanique soies d&#39;araignée sont plus forts que l&#39;acier à haute résistance 3. Analyses de comprendre la relation entre la structure et la fonction des fils de soie d&#39;araignée ont révélé que la soie d&#39;araignée se compose essentiellement de protéines, ou fibroins, qui ont dans leurs répète bloc de séquences de protéines 4. Commune signatures moléculaires qui contribuent à la résistance à la traction incroyable et l&#39;extensibilité de la soie d&#39;araignée sont démêlé au travers des analyses d&#39;ADNc de soie traduits. Etant donné les propriétés du matériau extraordinaire de soies d&#39;araignée, les laboratoires de recherche à travers le monde font la course à comprendre et à imiter les processus de filage pour produire des fibres de soie synthétique pour des applications commerciales, militaires et industriels. Un des principaux défis à la filature de la soie d&#39;araignée artificielle dans le laboratoire de recherche implique une compréhension complète des processus biochimiques qui se produisent lors de l&#39;extrusion des fibres provenant des glandes de soie producteurs. Nous présentons ici une méthode pour l&#39;isolement des sept producteurs de soie différentes glandes de l&#39;araignée veuve noire cobweaving, qui comprend les glandes ampullate majeurs et mineurs [fabrique de soie et d&#39;échafaudages dragline] 5,6, tubuliform [synthétise la soie cas d&#39;œuf] 7 , 8, flagelliformes [fonction inconnue en torchis-tisserands], granulats [rend la soie colle], acinus [emballage proies synthétise et les discussions à oeufs] 9 et piriformes [produit l&#39;attachement de la soie disque] 10. Cette approche est basée sur anesthésier l&#39;araignée avec du gaz de dioxyde de carbone, la séparation ultérieure du céphalothorax de l&#39;abdomen, et microdissection de l&#39;abdomen afin d&#39;obtenir les glandes produisant la soie. Après la séparation des différentes glandes productrices de soie, ces tissus peuvent être utilisés pour récupérer des macromolécules différentes pour différentes analyses biochimiques, y compris quantitative PCR en temps réel, dans le nord-ouest et le buvard, spectrométrie de masse (MS ou MS / MS) des analyses pour identifier nouvelles séquences de protéines de soie, la recherche de protéines qui participent à la voie d&#39;assemblage de soie, ou utiliser les tissus intacts pour la culture cellulaire ou d&#39;expériences histologiques.

Nous décrivons ici une stratégie efficace pour enlever les glandes produisant la soie de l&#39;abdomen des femelles veuves noires. Cette procédure permet l&#39;isolement rapide de la production de soie sept glandes distinctes d&#39;une manière hautement purifiée, un processus important pour les enquêteurs étudient la production de soie d&#39;araignée et de l&#39;assemblage de fibres.

Microdissection de Black Widow Soie d&#39;araignée des glandes productrices

Les araignées modernes filent des fibres de soie à haute performance dotées d'un large éventail de fonctions biologiques, notamment la locomotion, la capture de proies et la protection de ...

L'objectif général de cette procédure est d'isoler les sept glandes productrices de soie distinctes de l'abdomen de l'araignée, et d'utiliser ces tissus pour des études moléculaires et biochimiques. Cela est réalisé en anesthésiant d'abord l'araignée. La deuxième étape de la procédure consiste à séparer la région céphalique, le thorex et l'abdomen, puis à fixer l'abdomen avec des épingles à insectes dans une petite boîte de dissection.La troisième étape de la procédure consiste à pratiquer des incisions dans l'exosquelette afin d'exposer les glandes productrices de soie. La dernière étape de la procédure est l'ablation des différentes glandes productrices de soie. En fin de compte, des résultats peuvent être obtenus qui démontrent que les différentes glandes productrices de soie expriment des ARNm ou protéines de soie distincts, grâce à des approches moléculaires et biochimiques, telles que la PCR quantitative en temps réel ou la spectrométrie de masse, respectivement.Cette méthode fournira des informations essentielles sur la recherche en biologie arachnidienne en révélant les protéines stockées dans les glandes productrices de soie. Ces protéines ont des applications dans les domaines militaire et médical, ainsi que dans de nombreux secteurs commerciaux et industriels. Nous avons eu l'idée d'effectuer cette étude particulière lorsque nous avons eu besoin d'en apprendre davantage sur les protéines stockées dans les glandes productrices de soie.Le principal avantage de cette technique est que les araignées veuves noires femelles possèdent de très gros abdomens, ce qui facilite grandement l'isolement des glandes productrices de soie. Les personnes novices dans cette méthode peuvent éprouver des difficultés, car les glandes se rompent souvent durant la dissection. Certaines structures anatomiques sont également difficiles à isoler.La démonstration visuelle est essentielle pour une bonne dissection. La procédure sera démontrée par Kobe LaMattina, Tiffany Tootin, Blasingame et Y Shaw avant le début de la dissection. Préparez 500 millilitres de solution tampon de dissection composée de chlorure de sodium 0,1 molaire, de citrate de sodium 0,015 molaire et de 0,1 % de bicarbonate d'éthyle.Ensuite, préparez une boîte en carton doublée de plastique afin de contenir l'araignée et l'empêcher de sortir en rampant. Nous obtenons généralement les araignées veuves noires à partir de tas de bois, d'abris ou de garages, et nous utilisons des bocaux en verre pour les héberger au laboratoire. Une fois capturée, transférez l'araignée d'un bocal en verre vers la boîte en manipulant l'araignée.Portez deux paires de gants en latex ou de jardinage pour des raisons de sécurité. Ensuite, à l’aide d’un petit flacon en plastique pour culture, approchez-vous de l’araignée par l’arrière et faites glisser l’araignée dans le flacon, puis bouchez immédiatement le flacon. Introduisez du gaz de dioxyde de carbone dans le flacon à une pression de 5 à 10 psi pendant 10 minutes afin d’anesthésier l’araignée. La dissection initiale de l’abdomen à partir du céphalothorax doit être effectuée dans les cinq minutes, pendant que l’araignée est encore sous anesthésie.Placer l'araignée anesthésiée dans une petite boîte de dissection. Couper le pédoncule, tige étroite reliant le céphalothorax à l'abdomen, afin de libérer l'abdomen. Le céphalothorax contient les chélicères de l'araignée et doit être éliminé correctement.Retirer soigneusement le thax céphalique placé dans une boîte de Pétri et congeler toute une nuit. Avant de jeter l'échantillon, repérer le trou dans l'abdomen de l'araignée provoqué par le prélèvement de la cellule pédicelle en identifiant l'endroit d'où s'écoule du liquide. À l'aide d'une seule aiguille de dissection, insérer l'aiguille à travers le trou et dans l'abdomen afin d'attacher l'abdomen au plateau de dissection, en orientant l'araignée de sorte que le pédicelle soit le plus éloigné possible du manipulateur et que la tête soit la plus proche du manipulateur.À l’aide d’une paire de ciseaux microchirurgicaux, commencer par le trou laissé par l’ablation de la cellule pédes et couper latéralement de chaque côté à travers l’exosquelette jusqu’à atteindre le côté dorsal. À l’aide de pinces, écarter le segment antérieur de l’exosquelette et insérer une deuxième épingle à cet endroit. Ensuite, tourner la boîte de dissection d’un angle de 90 degrés par rapport aux incisions latérales initiales.Continuez à couper jusqu'à ce que les spints soient atteints. L'incision sera perpendiculaire ou verticale par rapport à la coupe latérale initiale. Les spints se trouvent sous l'entonnoir et ont un aspect circulaire.Ne coupez pas les muscles lorsque l'incision verticale est réalisée. Plongez l'abdomen dans la solution tampon de dissection. Détachez le reste de l'exosquelette en partant de l'incision latérale initiale.Lorsque cette étape est terminée, le tissu adipeux, de couleur blanchâtre à jaunâtre, doit être clairement visible à l’aide de pinces. Commencer à séparer délicatement la couche de graisse jusqu’à ce que la majeure partie de la graisse soit retirée et que les glandes séricigènes soient clairement visibles. Si des œufs sont présents, ils doivent être éliminés.À ce stade, disséquez les glandes dans l'ordre suivant : forme tubulaire, forme des flagelles principales, agrégat des assifs mineurs, forme, puis la forme piriforme. Nous décrirons chaque glande selon l'ordre de la dissection.Les glandes en forme de tubes sont situées au-dessus de toutes les autres glandes et possèdent trois paires de longs cylindres très étendus, abondamment présents dans la cavité abdominale. Détachez soigneusement ces glandes du reste des glandes. Laissez-les flotter librement, tout en les maintenant attachées aux agrapheuses par leurs conduits.Ensuite, séparez délicatement les deux glandes ampullaires principales également présentes dans les poires. Ces glandes sont volumineuses, en forme de croissant, et possèdent de longues queues distales tortueuses ainsi que des canaux proximaux dont la largeur diminue progressivement. Lorsque vous approchez des pattes de l'araignée, retirez les glandes ampullaires principales et placez-les dans des tubes microcentrifugeurs stériles de 1,5 millilitre.Placer les glandes sur de la glace après leur prélèvement. Ensuite, retirer la glande flagellaire du gland. La glande flagellaire est également présente sous forme de poire.Il s'agit d'une structure multilobulée entourant un petit canal cylindrique en zigzag qui s'étend vers le bas en direction des spints après leur prélèvement, puis sont placés sur de la glace. Ensuite, l'ailette mineure se révèle très similaire en morphologie à l'ailette majeure, mais nettement plus petite. La glande agrégée, présente en paires, est volumineuse et multilobulée, et possède un très large canal excréteur doté de lobes irréguliers et importants.Les glandes sino formm sont présentes en grand nombre et ressemblent à de petites projections courtes et digitiformes. La glande piriforme est la plus petite glande de l'abdomen et possède de nombreux conduits cylindriques compacts qui forment un éventail, avec de nombreux petits canaux excréteurs s'étendant jusqu'aux spints. Maintenant que la glande formm tubulaire est la seule glande restante libre, retirez-la en pinçant le canal avec une pince et en tirant délicatement jusqu'à ce qu'elle se détache du point de sortie au niveau du spint. Après la dissection, congélez rapidement toutes les glandes disséquées en plaçant le tube dans de l'azote liquide jusqu'à ce qu'il gèle, puis conservez-les à moins 80 degrés Celsius pour le stockage.Alternativement, les glandes peuvent être congelées immédiatement après leur prélèvement indépendant au cours de la procédure de dissection. Cette figure montre l'isolement du gène de la soie, des niveaux d'ARNm de TUSP1 dans les différentes glandes productrices de soie, à l'exception de la glande piriforme, à l'aide d'une analyse par PCR quantitative en temps réel après l'isolement d'ARN total provenant des glandes. Les glandes de forme tubulaire contiennent la plus grande abondance d'ARNm de TUSP1.Cette figure montre un résultat typique du profil de composition en acides aminés des protéines extraites de la glande tubulaire. La coloration bleue reflète les acides aminés possédant des groupes latéraux polaires, tandis que la coloration rouge représente les résidus d'acides aminés ayant des groupes latéraux non polaires. Cette figure présente l'analyse par spectrométrie de masse d'extraits protéiques obtenus à partir de la glande piriforme après triptyque en insolution.La digestion ici, fois deux, représente une amplification deux fois plus grande de l'intensité du spectre. Les masses ioniques des peptides du spectre marquées avec le symbole dièse indiquent des peptides dérivés de la fibroïne de soie PYSP1 après son développement. Cette technique a ouvert la voie aux chercheurs de la communauté scientifique en biologie des éponges.Il a été utilisé pour explorer les processus chimiques et moléculaires impliqués dans la production de fibres par trempage, l'assemblage des fibres de soie et l'extrusion. Si cette technique est réalisée correctement, elle peut être accomplie en une heure et demie à trois heures. Lors de la réalisation de cette procédure, il est important de porter deux paires de gants jusqu'à ce que les crochets de l'araignée soient retirés.À l'issue de cette méthode, les glandes productrices de soie peuvent être utilisées pour extraire l'ARN et les protéines. Ces matériaux peuvent être utilisés dans des applications en aval telles que la PCR quantitative en temps réel, ainsi que la spectrométrie de masse. Les informations obtenues grâce à ces études nous aideront à mieux comprendre l'assemblage de la soie et la voie d'extrusion de la soie.Après avoir visionné cette vidéo, vous devriez bien comprendre comment isoler les sept glandes productrices de soie distinctes de l'araignée veuve noire femelle.

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