September 5th, 2011
Cartographie vasculaire de monochoriales (MC) placentas jumelles après leur naissance constitue un moyen pour la démonstration détaillée des connexions vasculaires entre les circulations des jumeaux. Déséquilibre de ces connexions est pensé à jouer un rôle pivot dans le développement de complications du jumelage de MC dont le syndrome de transfusion jumeau à jumeau.
L’objectif général de l’expérience suivante est de cartographier le système vasculaire placentaire dans les grossesses gémellaires monochorioniques avec une attention particulière aux connexions entrelacées. Ceci est réalisé d’abord par une acquisition et une préparation minutieuses du placenta après l’accouchement pour faciliter la visualisation du système vasculaire. Dans un deuxième temps, des cathéters sont insérés dans les circulations artérielle et veineuse de chaque jumeau, ce qui permet d’injecter un colorant dans le système vasculaire.
Ensuite, un colorant de couleur différente est injecté dans les artères et les veines de chaque jumeau afin de démontrer le nombre et le type de connexions entrelacées. Enfin, la morphologie principale, la vascularisation placentaire peut être observée sur la base de la cartographie vasculaire démontrée par l’injection de colorant. Je m’appelle Eric Gellan et je suis résident en chirurgie générale et boursier en fœtus au centre de traitement fœtal de l’UCSF.
Cette méthode nous permet de répondre à des questions clés sur la prise en charge fœtale des jumeaux monochorioniques, telles que les états de la maladie monochorionique qui bénéficient d’une intervention fœtale. Je m’appelle Sam Schechter et je suis résident en chirurgie générale et boursier fœtal au Centre de traitement fœtal de l’UCSF. Les implications de cette procédure s’étendent au traitement et au diagnostic du syndrome de transfusion gémellaire (STT).
Il permet d’évaluer l’efficacité de l’ablation au laser pour les connexions jumelles internes. Acquérez le placenta dès que possible après l’accouchement afin de minimiser la formation de caillots, la dessiccation et la détérioration globale des tissus. Placez un grand bol en plastique ou en métal qui a des trous prédécoupés qui permettent le drainage des fluides placentaires dans un grand bol en acier inoxydable.
Placez le placenta à l’intérieur des deux bols, lavez le placenta avec une solution saline chaude, puis pour une meilleure visualisation du placenta, utilisez des ciseaux Metzenbaum pour exciser les membranes amniotiques entrelacées, en veillant à ne pas blesser le placenta lui-même. Laissez un brassard d’un demi-centimètre de membrane entrelacée en place. Identifiez les cordons des jumeaux respectifs en confirmant quels cordons ont alimenté le jumeau présentateur un par un, en gardant une trace du cordon qui traverse chaque cordon juste en dessous des pinces.
Ensuite, trayez doucement tous les caillots des vaisseaux. Identifiez la veine et les artères au bord coupé du cordon comme on le voit sur cette image représentative. Il y aura une veine comme indiqué par la flèche, et au moins une généralement deux artères indiquées ici par les pointes de flèches.
La partie la plus difficile de la réalisation de cette procédure est la canulation de l’artère ombilicale. Certains groupes ont constaté que le fait de ne pas utiliser de fil et d’utiliser simplement un cathéter artériel ombilical est en fait assez efficace et nous l’avons également constaté, mais nous constatons que l’utilisation d’un fil-guide facilite une procédure et la rend beaucoup plus efficace. Ensuite, utilisez une pince Kelly pour générer une légère contre-tension sur la partie non vasculaire du bord coupé du cordon.
Ensuite, utilisez un fil-guide de ligne artérielle radiale standard avec une pointe souple pour accéder à un orifice artériel sur le bord coupé du quart du jumeau A. Tourner légèrement la pinte pour redresser les vaisseaux tortueux peut aider à faire avancer le fil. Insérez le guide, câblez un minimum de trois centimètres dans le récipient en utilisant la technique du cell dinger.
Enfilez un cathéter en polyéthylène de 20 centimètres de long de 0,6 à 1,19 millimètre de diamètre intérieur avec une extrémité distale biseautée sur le fil dans l’artère. Retirez le fil une fois que le cathéter est inséré à au moins trois centimètres dans le vaisseau. Assurez-vous que le cathéter est correctement placé en injectant une petite quantité de solution saline dans le vaisseau et en observant le dégagement des artères distales.
De légers balayages des doigts sur les vaisseaux lors de l’injection de solution saline peuvent aider à faciliter le mouvement de tout caillot résiduel. Puis en utilisant la même procédure de fil G que pour l’artère et en évitant de déloger le cathéter artériel. Placez un cathéter dans la veine du cordon ou une cravate, un morceau de ruban ombilical, un centimètre distal du bord coupé autour du cordon dans les cathéters.
Après avoir réussi à cathétériser le cordon du jumeau non présentateur. De la même manière, assurez-vous que les cathéters de l’artère ombilicale et de la veine de chaque jumeau sont fixés avec du ruban ombilical et que les deux circulations ont été perfusées avec une solution saline comme cela a été fait pour le placenta illustré sur cette figure. Choisissez quatre couleurs contrastées avec lesquelles injecter les artères et les veines des jumeaux, A et B, les couleurs de l’artère et de la veine de chaque jumeau étant facilement distinguables.
L’anastomose superficielle doit être détectable par mélange de colorants et la formation d’une couleur mélangée différente et facilement détectable, comme en témoigne cette figure la présence du colorant vert et comme indiqué par la flèche. Maintenant, à l’aide d’une seringue de trois millilitres, injectez à la main l’artère du jumeau A avec un colorant à basse pression, balayez doucement un ou deux doigts le long des vaisseaux dans le sens de l’écoulement du colorant pour assurer le remplissage de tout l’arbre vasculaire. Si une anastomose vasculaire superficielle est identifiée, l’occlusion manuelle du vaisseau d’alimentation peut être utilisée pour permettre au reste du lit vasculaire à résistance plus élevée de se remplir.
Utilisez une seringue séparée de trois millilitres pour injecter à la main l’artère du jumeau B, puis effectuez les injections veineuses de la même manière. Enfin, utilisez l’appareil photo numérique haute résolution pour prendre une image après chaque injection. Une fois toutes les injections terminées, retirez l’échantillon des bols.
Placez-le sur un fond de couleur neutre et recréez l’image. Documentez soigneusement le nombre et le type de connexions observées entre les circulations des jumeaux Comme le montre cette figure, des cathéters ont été placés dans la veine ombilicale et dans une artère ombilicale de chaque jumeau. Les cathéters ont été fixés et placés avec du ruban ombilical autour de l’ensemble du cordon.
Le positionnement correct de chaque cathéter a été confirmé et les caillots intraluminaux ont été éliminés par l’injection de solution saline normale réchauffée. Dans ce placenta, la circulation artérielle du jumeau A a été injectée avec un colorant jaune comme indiqué par la flèche. Le contraste passe clairement à travers l’équateur vasculaire dans la circulation artérielle du jumeau B.Ici, l’injection de la circulation artérielle du jumeau B à partir du même placenta est dans la figure précédente, on peut voir ajouter le mélange du colorant jaune du jumeau A et du colorant bleu du jumeau B a entraîné un colorant vert dans l’anastomose artérielle artérielle ou aa.
Comme le montre la flèche. Pour ce placenta, un AA avait été identifié prospectivement in utero par échographie Doppler. Cette constatation a été confirmée par le mélange de l’artère jumelle A en jaune et de l’artère jumelle B en bleu Dans une structure artérielle communicante en vert et indiquée en outre par la flèche, la veine du jumeau A a également été injectée avec un colorant rouge, et la veine du jumeau B est orange et l’anastomose veineuse artérielle avec un flux dirigé du jumeau A vers le jumeau B est délimitée par la pointe de la flèche.
Ici, un exemple d’un placenta jumeau monochorionique qui a subi une thérapie au laser après une injection postnatale est présenté. L’artère et la veine des jumeaux donneurs sont respectivement en jaune et en vert. L’artère et la veine receveuses sont respectivement en bleu et en orange.
Aucune liaison résiduelle entre les circulations n’a été détectée. La dernière figure montre un autre exemple de placenta jumeau monochorionique après injection. L’artère et la veine jumelles gauches sont respectivement en jaune et en rouge.
L’artère et la veine des jumelles droites sont respectivement en bleu et en orange. Un AA est indiqué par la pointe de la flèche et l’anastomose veineuse d’Aveeno, comme indiqué par la flèche, sont visibles sur la surface placentaire. Une fois maîtrisée, cette technique peut être réalisée en 45 minutes.
Si c’est fait correctement. Après avoir regardé cette vidéo, vous devriez avoir une bonne compréhension de la façon d’injecter un colorant dans les systèmes artériel et veineux des placentas jumeaux monochorioniques pour démontrer les connexions vasculaires et l’anatomie.
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Cette étude se concentre sur la cartographie vasculaire des placentas de jumeaux monochoriales pour illustrer les connexions vasculaires entre les jumeaux. Comprendre ces connexions est crucial car les déséquilibres peuvent conduire à des complications telles que le syndrome de transfusion fœto-fœtale.
Mapping vascular connections in monochorionic twin placentas provides a mechanistic framework for understanding fetal hemodynamic imbalances that underlie twin-to-twin transfusion syndrome (TTTS). This approach supports target validation by enabling direct visualization of arteriovenous, artery-to-artery, and vein-to-vein anastomoses, which are critical pathophysiological drivers of TTTS severity. The technique enhances predictive confidence in preclinical models by correlating anatomical vascular maps with functional outcomes, informing risk-stratified intervention strategies.
The method integrates into the discovery continuum by supporting hypothesis testing in early biology, enabling assay standardization in screening, and informing translational decisions through anatomical-functional correlation.