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DOI: 10.3791/2901-v
Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.
Fopius arisanus est un parasitoïde des œufs de larves de mouches des fruits Tephritidae qui est utilisé avec succès dans la lutte biologique contre ces ravageurs importants tropicales. Nous décrivons ici un protocole optimisé pour l'élevage de F. arisanus sur une petite échelle en utilisant des matériaux facilement disponibles.
FOIA Aus est un agent de lutte biologique important à Hawaï car il attaque les mouches des fruits fritées, qui sont de graves ravageurs économiques dans toutes les tropiques et en particulier ici à Hawaï. La beauté de FOIA Aus est qu’il attaque le stade de l’œuf de l’insecte nuisible, contrôlant ainsi l’insecte à un stade précoce. Dans les clips suivants, vous pourrez voir des gros plans de la façon dont nous élevons des FOA Aus dans un laboratoire.
Et à la fin de ce programme, vous verrez quelques discussions sur la façon dont ce parasitoïde particulier a été utilisé dans un programme de libération réussi en Polynésie française. Nous commencerons notre protocole avec les parasites adultes qui sont prêts à se transformer en œufs d’une mouche des fruits hôte. La première étape consiste à préparer les œufs de mouches des fruits pour les présenter au parasite.
Ensuite, les larves de mouches des fruits sont laissées éclore, se développer et se nymphoser. Une fois que les mouches des fruits atteignent le stade pupillaire, elles sont triées par taille pour s’enrichir en parasites. Enfin, les parasites émergent et se maintiennent jusqu’à maturité.
Ils se rencontrent ensuite et sont à nouveau prêts à OSI dans un nouveau lot de fruits. Mouches oeufs. Cela termine le cycle.
Préparez un substrat pour le fruit. Volez les œufs en faisant des blocs de tarière d’environ 10 centimètres de chaque côté. La tarière est préparée à une concentration de neuf grammes de poudre de tarière par litre d’eau.
À l’aide d’une surface plane, remplissez la vaisselle jusqu’au bord avec une vis sans fin liquide, en la laissant se solidifier pendant au moins 45 minutes. Une fois que les blocs de tarière sont solides, appliquez une seule couche de papier de soie couvrant le haut de chaque bloc de tarière. Le tissu doit adhérer facilement à la tarière en raison de l’humidité de surface.
Une deuxième fois. Appliquez les œufs de mouches des fruits sur la surface recouverte de tissu des blocs de tarière. Un volume de 0,5 millilitre d’œufs de mouches des fruits en suspension donne environ 6 000 œufs par bloc.
Un pinceau de 2,5 centimètres de large trempé dans l’eau est utilisé pour étaler les fruits, faire voler les œufs uniformément sur la surface du tissu. Les œufs de mouches des fruits sont maintenant placés sous l’écran inférieur des cages antiparasitaires pour permettre aux parasites de se positionner, en tapotant le dessous de l’écran, on enlève les parasites morts, qui pourraient obstruer les fruits. Les œufs de mouches permettent aux parasites de trop pondre pendant la nuit.
Environ 21 heures suffisent pour qu’un pourcentage élevé d’œufs de mouches des fruits soit parasité. Une exposition plus longue risque de super parasite. Les principaux composants nécessaires à l’élevage des œufs après une exposition aux parasites sont le régime larvaire des mouches des fruits, les récipients de régime larvaire et les récipients de nymphose.
Placez trois à trois blocs et demi d’œufs parasités préparés sur un litre et quart de fruits. Régime alimentaire des larves de mouches. Placez le récipient de régime avec les œufs sur une colonne montante et un récipient de nymphose sur une couche d’un centimètre et demi de profondeur de vermiculite fine ou de sable de lavage.
Collez les bords du récipient de nymphose avec du ruban adhésif. Assurez-vous qu’il y a suffisamment d’espace entre le haut du contenant de régime et le couvercle du récipient de nymphose pour que les larves puissent ramper et sauter dans la vermiculite en dessous. Déplacez les récipients de nymphose dans une pièce à 27 degrés centigrades et à 80 % d’humidité relative pendant une semaine.
Couvrez les récipients avec un chiffon épais pendant les quatre premiers jours après une semaine. Ouvrez les récipients de nymphose et retirez le régime larvaire. Nous utilisons Bre Dorsals comme mouche hôte des fruits pour élever foia Airis.
D’autres espèces des genres ainsi que Asfa et sitis sont également des hôtes potentiels. S’il y a des larves non placées dans la vermiculite, laissez-les se transformer en chrysalide pendant la nuit. Les pupi de la vermiculite commencent par un tamis grossier et un grand récipient.
Ensuite, utilisez un tamis à main pour enlever tous les amas restants de vermiculite Eria contenant de l’opia. Les ais peuvent être partiellement séparés des mouches à fruits non parasitées. Ainsi, sur la base de recherches antérieures, nous ne collectons que les aria d’un diamètre compris entre 1,65 et 2,26 millimètres, qui sont plus petits, contiennent principalement des parasitoïdes sous-dimensionnés.
Les airs plus grands contiennent principalement des mouches. Diverses méthodes peuvent être employées pour trier les pupi. Nous décrirons une méthode mécanique utilisant un trieur de taille personnalisée pour l’aria parasité collectée.
Le pourcentage de femelles augmente avec la taille, placez le puy dans l’entonnoir en haut du trieur de taille mécanique. Un alimentateur vibrant les déplace vers le haut d’une paire de barres de roulement légèrement divergentes à un angle de 30 degrés. L’aria se dépose individuellement dans une série de fentes qui se vident à travers des entonnoirs dans 10 conteneurs distincts.
Mettez les pipis pu dans la gamme de taille de 1,65 millimètre à 2,26 millimètres dans une cage d’émergence pendant sept jours de plus jusqu’à ce que la plupart des mouches aient émergé du pupi parasité. Ensuite, utilisez un ventilateur pour séparer les arias de mouches vides de celles qui contiennent encore des parasitoïdes vivants. D’accord, pour maintenir la colonie d’Opia Aus, utilisez une cage de maintien des parasites avec une façade en verre amovible, d’environ 25 centimètres et une longueur de chaque côté.
La cage est dotée d’un écran d’un millimètre carré sur le dessus et sur deux côtés. L’arrière de la cage est recouvert d’une feuille de caoutchouc avec un trou de neuf centimètres pour l’accès. Le fond de la cage a une découpe recouverte à l’intérieur d’un écran d’un à deux millimètres carrés.
Assez grand pour permettre le placement de deux blocs de vis sans fin avec des fruits, des œufs de mouches pour le parasite sur la position. Les cages de maintien doivent également avoir une partie teintée le long du quart inférieur de la façade vitrée afin de minimiser l’encombrement des parasites le long de l’avant de la cage. Placez environ 11 grammes de l’aria sélectionné dans des récipients en plastique d’environ neuf centimètres de diamètre.
Cela devrait produire environ 600 à 700 parasites par cage. Le choix de la taille devrait donner environ 60 %Les femelles fixent des couvercles grillagés aux contenants. Les couvercles doivent être recouverts d’un tamis de deux millimètres carrés, ce qui permettra aux foia ais de quitter les récipients à la levée, mais contiendra toutes les mouches des fruits restantes.
Maintenez les parasites à 24 degrés centigrades et à environ 45 % d’humidité relative, avec une photopériode de 1212 et de bonnes stries de ventilation, faites tourner du miel le long du haut des cages au moins trois fois par semaine. Ou chaque fois que le miel disponible est sec, appliquez le miel filé en traînées étroites du bout du doigt Notez que si les stries sont trop lourdes, le miel s’égouttera dans la cage. Si les stries sont trop légères, le miel se dessèchera rapidement et nécessitera une application fréquente, placez des blocs de tarière, qui mesurent 10 centimètres carrés et quatre centimètres de profondeur sur le dessus des cages pour fournir de l’humidité aux parasites.
Ces blocs doivent être changés deux fois par semaine. En 2001, nous avons reçu une petite subvention de semences pour voir si nous pouvions introduire des contrôles biologiques en Polynésie française pour aider à atténuer la situation, car la mouche orientale des fruits à l’époque causait une infestation incroyable de tous les fruits tropicaux. Le laboratoire ici à Hawaï, nous, nous avons fait 10 envois.
Ainsi, chacune de ces expéditions s’élevait généralement à environ cent mille Opia air, disant qu’en fait, il y en avait beaucoup plus, mais nous expédiions l’EPI contre les mouches orientales des fruits avec le parasitoïde à l’intérieur, puis nous les faisions ressortir. Nous avons donc mis en place un petit laboratoire à Tahiti et nous les recevions et, puis nous émergeions la FOIA Air Sanus. Donc, sur une période d’environ un an, nous avons publié près d’un million de FOIA Aans.
Dans l’ensemble, c’est le plus réussi en dehors d’Hawaï. Lorsque FOIA Aus a été initialement publié à Hawaï, il s’agissait du meilleur exemple de contrôle biologique des mouches des fruits dans tout le Pacifique. Au cours des 10 dernières années, il y a eu une énorme propagation du complexe de Bactrocera Dorsals dans le monde entier.
Bactrocera Carbo s’est donc répandu en Amérique du Sud, au Suriname, et il est maintenant dans le nord du Brésil. Ensuite, il y a eu une autre espèce appelée Bacter Inance, qui est répandue dans toute l’Afrique et cause toutes sortes de ravages. Et puis il y a aussi eu la propagation de la papaye bactérie.
Ce succès ouvre donc maintenant des opportunités de publier ces FOIA Aus en Amérique du Sud, en Afrique et dans d’autres parties de l’Asie.
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