RESEARCH
Peer reviewed scientific video journal
Video encyclopedia of advanced research methods
Visualizing science through experiment videos
EDUCATION
Video textbooks for undergraduate courses
Visual demonstrations of key scientific experiments
BUSINESS
Video textbooks for business education
OTHERS
Interactive video based quizzes for formative assessments
Products
RESEARCH
JoVE Journal
Peer reviewed scientific video journal
JoVE Encyclopedia of Experiments
Video encyclopedia of advanced research methods
EDUCATION
JoVE Core
Video textbooks for undergraduates
JoVE Science Education
Visual demonstrations of key scientific experiments
JoVE Lab Manual
Videos of experiments for undergraduate lab courses
BUSINESS
JoVE Business
Video textbooks for business education
Solutions
Language
French
Menu
Menu
Menu
Menu
Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.
Pour détecter les signaux chromogènes lors de l’hybridation de l’ARN, commencez par prélever une coupe de tissu sur une lame de verre. Cette section contient de l’ARN cible, pré-hybridé avec une sonde d’ARN marquée à la peroxydase de raifort.
Versez quelques gouttes de diaminobenzidine ou DAB, un substrat de détection, sur la section de tissu et incuber.
Le DAB pénètre dans la cellule et l’enzyme peroxydase du raifort l’oxyde pour former un précipité brun. Cette réaction donne une couleur brune à des séquences d’ARN spécifiques dans la cellule. Les cellules qui ne contiennent pas d’ARN cible n’auront pas d’activité peroxydase et resteront non colorées.
Ensuite, contre-colorez la section de tissu avec de l’hématoxyline. L’hématoxyline se lie à l’ADN et confère une tache violette à la section du tissu.
Traitez la section de tissu avec de l’eau ammoniacale - une solution bleuissante. Il réduit l’intensité de la coloration violette, rendant les cellules bleues. Cette étape est essentielle pour une visualisation claire des taches brunes à l’intérieur des cellules.
Maintenant, immergez la section de tissu dans des concentrations croissantes d’éthanol et traitez-la ensuite avec du xylène - un solvant organique. Ces étapes déshydratent la section de tissu pour obtenir de meilleures images.
Enfin, scellez la lame à l’aide d’une solution de montage et d’une lamelle et visualisez-la au microscope optique. Les cellules présentent des points bruns ponctués indiquant la présence d’ARN cible.
Distribuez le même nombre de gouttes de chaque solution DAB-A et DAB-B dans un tube de taille appropriée pour produire environ 120 microlitres de substrat DAB par section et vortex. Prenez chaque diapositive, une à la fois, du support à glissières et tapotez et effleurez pour retirer l’excès de liquide, puis remettez-la dans le support à glissières. Pipetez environ 120 microlitres de mélange DAB sur chaque section de tissu, en vous assurant que les sections sont couvertes. Incuber pendant 10 minutes à température ambiante et procéder à la contre-coloration.
Placez une goutte de support de montage par lame de verre, puis placez la lame sur les lames et laissez-les sécher à l’air. Après quelques heures, procédez à l’évaluation à l’aide d’un microscope optique tel que décrit dans le manuscrit.
Related Videos
13:41
Related Videos
12.9K Views
10:26
Related Videos
28.1K Views
11:24
Related Videos
12.2K Views
17:38
Related Videos
16.1K Views
03:53
Related Videos
2.8K Views
03:26
Related Videos
2.8K Views
09:57
Related Videos
18.9K Views
11:36
Related Videos
18.8K Views
10:17
Related Videos
11.9K Views
14:21
Related Videos
13.7K Views