Name: Un test basé sur Matrigel Tube Formation dévaluer lactivité Vasculogenic de cellules tumorales (Vidéo) | JoVE Journal
Uploaded: 2011-09-07T13:00:00.000+00:00
Duration: 4 min
Description: Apprenez à mesurer la formation de tubes par des cellules tumorales sur Matrigel pour évaluer l'activité vasculaire in vitro. Cette méthode permet d'étudier le potentiel angiogénique des tumeurs.

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1. Un test basé sur Matrigel Tube Formation d'évaluer l'activité Vasculogenic de cellules tumorales <ol><li> Préparation des cellules tumorales et les cellules endothéliales microvasculaires: les cellules tumorales du cerveau telles que les cellules U87, les cellules de mélanome B16F1, le cancer du sein MDA-MB-435, et les cellules du côlon HCT116 ont été cultivées dans du DMEM supplémenté avec 10% de FBS et pénicilline / streptomycine (tous d'Invitrogen ). Cellules endothéliales microvasculaires humaines en ligne les cellules endothéliales (HMVECs) ont été cultivées dans EBM2 moyennes (Lonza) supplémenté avec 1 ug / ml d'hydrocortisone et 1 ng / ml de facteur de croissance épidermique, 10% de FBS et pénicilline / streptomycine. Les cellules ont été lavées avec du PBS à trois reprises et détaché avec 0,05% de trypsine / EDTA (Invitrogen). Après centrifugation à 2000 rpm pendant 5 min, culots de cellules ont été lavées à nouveau avec du PBS. Ensuite, le culot cellulaire ont été comptés avec un hémocytomètre. </li><li> Préparation de Matrigel: Une aliquote de facteur de croissance réduite de Matrigel (BD Bioscience) a été réchauffé à la température ambiante. Avant de complètement dégelé, il a été transféré sur la glace et son liquide a été maintenu sur la glace pendant au moins 10 min. Ensuite, 50 ul de Matrigel a été plaqué au plaques de 96 puits à un niveau horizontal qui permet le Matrigel à répartir uniformément, et incubées pendant 30 min à 37 ° C. </li><li> La formation du tube: Cellules (1-2 x 10 4) ont été re-suspendu avec DMEM sans sérum pour les cellules tumorales ou EBM-2 pour les cellules endothéliales, et chargé sur le haut de la Matrigel. Si ce test a été utilisé pour mesurer les effets de certains agents sur le développement des tubules, ces agents (stimulateurs ou inhibiteurs) ont été ajoutés dans le milieu sans sérum. Chaque groupe conditionnelle contenue 4-6 puits. </li><li> Image et analyse de données: Après incubation à 37 ° C pendant la nuit, chaque puits a été analysée directement sous un microscope. Si les tubules étaient nécessaires pour la fixation, 100 ul de formol à 10% de solution saline solution a été ajoutée en douceur et dix minutes plus tard, il était prêt pour l'analyse. Sous un microscope à contraste de phase 10x, tubules dans chaque domaine ont été imagées et une moyenne de 3 à 5 tubules champs aléatoires dans chaque puits a été compté. </li></ol> 2. Les résultats représentatifs: HMVECs ont été utilisées comme contrôle positif, étant donné que ces tubules ont été développés à partir claires corps cellulaires allongées qui se connectent au réseau sous forme de polygones. Cellules B16F1, U87, et MDA-MB-435 développé tubules vasculaires semblables à ceux formés par HMVECs, mais cellules HCT116 n'a pas (figure 1). Une cellule de formation du tube dose-dépendante a été testé dans les cellules U87. Comme le montre la figure 2, 10000 cellules formées tubules abandonnées. Une fois les cellules ont été doublés, un solide réseau vasculaire est comparable à ceux observés dans HMVECs. En revanche, les cellules de moins de 5000 a échoué à former un phénotype vasculaire. <img src="/files/ftp_upload/3040/3040fig1.jpg" alt="Figure 1" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figure 1"> Figure 1. Formation de tubes induite par HMVECs, U87, MDA-MB-435, et cellules B16F1, mais pas les cellules HCT116. Toutes les cellules (2 x 10 4) ont été chargés sur Matrigel et incubées pendant la nuit. Tubules ont été imagées en utilisant le contraste de phase. HMVECs ont été utilisées comme contrôle positif. Un représentant de 3-5 champs a été montré. Bar: 100 um. <img src="/files/ftp_upload/3040/3040fig2.jpg" alt="Figure 2" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figure 2"> Figure 2. U87 cellulaire induite par les tubules dans un certain nombre cellulaire dépendante manière. Nombres différents de cellules U87, comme indiqué dans les coins ont été utilisés pour la formation du tube. HMVECs ont été utilisés pour un contrôle positif. Bar: 100 mm.

<ol><li>Shao, R., Guo, X. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Human+microvascular+endothelial+cells+immortalized+with+human+telomerase+catalytic+protein%3A+a+model+for+the+study+of+in+vitro+angiogenesis%5BTitle%5D)+AND+%22Biochemical+%26+Biophysical+Research+Communications%22%5BJournal%5D)">Human microvascular endothelial cells immortalized with human telomerase catalytic protein: a model for the study of in vitro angiogenesis.</a> Biochemical & Biophysical Research Communications. 321, 788-794 (2004).</li>
<li>Ribeiro, M. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Hemostatic+properties+of+the+SV-40+transfected+human+microvascular+endothelial+cell+line+%28HMEC-1%29.+A+representative+in+vitro+model+for+microvascular+endothelium%5BTitle%5D)+AND+%22Thromb+Res%22%5BJournal%5D)">Hemostatic properties of the SV-40 transfected human microvascular endothelial cell line (HMEC-1). A representative in vitro model for microvascular endothelium.</a> Thromb Res. 79, 153-1561 (1995).</li>
<li>Ades, E. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((HMEC-1%3A+establishment+of+an+immortalized+human+microvascular+endothelial+cell+line%5BTitle%5D)+AND+%22J+Invest+Dermatol%22%5BJournal%5D)">HMEC-1: establishment of an immortalized human microvascular endothelial cell line.</a> J Invest Dermatol. 99, 683-690 (1992).</li>
<li>Shao, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Acquired+expression+of+periostin+by+human+breast+cancers+promotes+tumor+angiogenesis+through+up-regulation+of+vascular+endothelial+growth+factor+receptor+2+expression%5BTitle%5D)+AND+%22Molecular+%26+Cellular+Biology%22%5BJournal%5D)">Acquired expression of periostin by human breast cancers promotes tumor angiogenesis through up-regulation of vascular endothelial growth factor receptor 2 expression.</a> Molecular & Cellular Biology. 24, 3992-4003 (2004).</li>
<li>Shao, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((YKL-40%2C+a+secreted+glycoprotein%2C+promotes+tumor+angiogenesis%5BTitle%5D)+AND+%22Oncogene%22%5BJournal%5D)">YKL-40, a secreted glycoprotein, promotes tumor angiogenesis.</a> Oncogene. 28, 4456-4468 (2009).</li>
<li>Basu, G. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+novel+role+for+cyclooxygenase-2+in+regulating+vascular+channel+formation+by+human+breast+cancer+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Breast+Cancer+Research%22%5BJournal%5D)">A novel role for cyclooxygenase-2 in regulating vascular channel formation by human breast cancer cells.</a> Breast Cancer Research. 8, R69-R69 (2006).</li>
<li>Scavelli, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Vasculogenic+mimicry+by+bone+marrow+macrophages+in+patients+with+multiple+myeloma%5BTitle%5D)+AND+%22Oncogene%22%5BJournal%5D)">Vasculogenic mimicry by bone marrow macrophages in patients with multiple myeloma.</a> Oncogene. 27, 663-674 (2008).</li>
<li>El Hallani, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+new+alternative+mechanism+in+glioblastoma+vascularization%3A+tubular+vasculogenic+mimicry%5BTitle%5D)+AND+%22+Brain%22%5BJournal%5D)">A new alternative mechanism in glioblastoma vascularization: tubular vasculogenic mimicry.</a> Brain. 133, 973-982 (2010).</li>
<li>Maniotis, A. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Vascular+channel+formation+by+human+melanoma+cells+in+vivo+and+in+vitro%3A+vasculogenic+mimicry%5BTitle%5D)+AND+%22American+Journal+of+Pathology%22%5BJournal%5D)">Vascular channel formation by human melanoma cells in vivo and in vitro: vasculogenic mimicry.</a> American Journal of Pathology. 155, 739-752 (1999).</li>
<li>Hendrix, M. J., Seftor, E. A., Hess, A. R., Seftor, R. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Vasculogenic+mimicry+and+tumour-cell+plasticity%3A+lessons+from+melanoma%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Reviews+Cancer%22%5BJournal%5D)">Vasculogenic mimicry and tumour-cell plasticity: lessons from melanoma.</a> Nature Reviews Cancer. 3, 411-421 (2003).</li>
<li>Folberg, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Tumor+cell+plasticity+in+uveal+melanoma%3A+microenvironment+directed+dampening+of+the+invasive+and+metastatic+genotype+and+phenotype+accompanies+the+generation+of+vasculogenic+mimicry+patterns%5BTitle%5D)+AND+%22American+Journal+of+Pathology%22%5BJournal%5D)">Tumor cell plasticity in uveal melanoma: microenvironment directed dampening of the invasive and metastatic genotype and phenotype accompanies the generation of vasculogenic mimicry patterns.</a> American Journal of Pathology. 169, 1376-1389 (2006).</li>
<li>Liu, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Prostate-specific+membrane+antigen+directed+selective+thrombotic+infarction+of+tumors%5BTitle%5D)+AND+%22Cancer+Research%22%5BJournal%5D)">Prostate-specific membrane antigen directed selective thrombotic infarction of tumors.</a> Cancer Research. 62, 5470-5475 (2002).</li>
<li>Sood, A. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+clinical+significance+of+tumor+cell-lined+vasculature+in+ovarian+carcinoma%3A+implications+for+anti-vasculogenic+therapy%5BTitle%5D)+AND+%22Cancer+Biology+%26+Therapy%22%5BJournal%5D)">The clinical significance of tumor cell-lined vasculature in ovarian carcinoma: implications for anti-vasculogenic therapy.</a> Cancer Biology & Therapy. 1, 661-664 (2002).</li>
<li>Shirakawa, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Hemodynamics+in+vasculogenic+mimicry+and+angiogenesis+of+inflammatory+breast+cancer+xenograft%5BTitle%5D)+AND+%22Cancer+Research%22%5BJournal%5D)">Hemodynamics in vasculogenic mimicry and angiogenesis of inflammatory breast cancer xenograft.</a> Cancer Research. 62, 560-566 (2002).</li>
<li>Ruf, W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Differential+role+of+tissue+factor+pathway+inhibitors+1+and+2+in+melanoma+vasculogenic+mimicry%5BTitle%5D)+AND+%22Cancer+Research%22%5BJournal%5D)">Differential role of tissue factor pathway inhibitors 1 and 2 in melanoma vasculogenic mimicry.</a> Cancer Research. 63, 5381-5389 (2003).</li>
<li>Seftor, R. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cooperative+interactions+of+laminin+5+gamma2+chain%2C+matrix+metalloproteinase-2%2C+and+membrane+type-1-matrix%2Fmetalloproteinase+are+required+for+mimicry+of+embryonic+vasculogenesis+by+aggressive+melanoma%5BTitle%5D)+AND+%22Cancer+Research%22%5BJournal%5D)">Cooperative interactions of laminin 5 gamma2 chain, matrix metalloproteinase-2, and membrane type-1-matrix/metalloproteinase are required for mimicry of embryonic vasculogenesis by aggressive melanoma.</a> Cancer Research. 61, 6322-6327 (2001).</li>
<li>Shirakawa, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Vasculogenic+mimicry+and+pseudo-comedo+formation+in+breast+cancer%5BTitle%5D)+AND+%22International+Journal+of+Cancer%22%5BJournal%5D)">Vasculogenic mimicry and pseudo-comedo formation in breast cancer.</a> International Journal of Cancer. 99, 821-828 (2002).</li>
</ol>

Aucun conflit d&#39;intérêt déclaré.

Pour ce test pour réussir, la qualité de Matrigel devrait être testée en premier. Un petit échantillon peut être obtenu à partir de BD Bioscience pour pré-lancer le test en utilisant HMVECs. Produits de lots différents peuvent afficher des qualités dissemblables dans lesquelles certains lots ne fournissent pas une condition optimale pour la formation du tube. Deuxièmement, toutes les bulles doivent être évitées lors d&#39;une aliquote de Matrigel est chargé dans des plaques 96 puits, parce que les bulles peuvent perturb...

<table border="1"><tbody><tr><th> Nom du réactif </th><th> Société </th><th> Numéro de catalogue </th></tr><tr><td> DMEM </td><td> Invitrogen </td><td> 11995 </td></tr><tr><td> FBS </td><td> Invitrogen </td><td> 16000-044 </td></tr><tr><td> Le facteur de croissance réduite Matrigel </td><td> BD Bioscience </td><td> 47743-720 </td></tr><tr><td> EBM2 kit </td><td> Lonza </td><td> CC-3156 </td></tr><tr><td> Microscope Nikon Eclipse TS100 </td><td> Nikon </td><td></td></tr></tbody></table>

un test basé sur matrigel tube formation d&#39;évaluer l&#39;activité vasculogenic de cellules tumorales

A Matrigel-Based Tube Formation Assay to Assess the Vasculogenic Activity of Tumor Cells

Au cours des dernières décennies, un essai de formation de tube en utilisant le facteur de croissance réduite Matrigel a été typiquement employées pour démontrer l&#39;activité angiogénique des cellules endothéliales vasculaires in vitro, 1-5. Toutefois, les preuves de plus en plus récemment, a montré que ce test n&#39;est pas limité à tester le comportement des cellules endothéliales vasculaires. Au lieu de cela, il a également été utilisé pour tester la capacité d&#39;un certain nombre de cellules tumorales pour développer un phénotype vasculaire 6-8. Cette capacité est compatible avec leur comportement vasculogenic identifiés chez des animaux xenotransplanted, un processus connu sous le nom vasculogenic mimétisme (VM) 9. Il ya une multitude de preuves démontrant que des cellules tumorales à médiation VM joue un rôle vital dans le développement tumoral, indépendant de l&#39;angiogénèse des cellules endothéliales 6, 10-13. Par exemple, les cellules tumorales ont été trouvés à participer dans le sang perfusé, la formation de canaux vasculaires dans des échantillons de tissus provenant de patients atteints de mélanome et le glioblastome 8, 10, 11. Ici, nous avons décrit ce test réseau tubulaire comme un outil utile dans l&#39;évaluation de l&#39;activité vasculogenic des cellules tumorales. Nous avons constaté que certaines lignées cellulaires tumorales, comme le mélanome B16F1 cellules, les cellules de glioblastome U87, et le cancer du sein MDA-MB-435 cellules sont capables de former des tubules vasculaires, mais certains n&#39;ont pas, comme le cancer du côlon cellules HCT116. Par ailleurs, ce phénotype vasculaire est dépendante du nombre de cellules plaquées sur le Matrigel. Par conséquent, ce test peut servir utilitaire puissant pour dépister le potentiel vasculaire d&#39;une variété de types cellulaires incluant les cellules vasculaires, les cellules tumorales ainsi que d&#39;autres cellules.

Un essai de formation de tube est utilisé pour évaluer l&#39;activité vasculaire des cellules tumorales.

Un test basé sur Matrigel Tube Formation d&#39;évaluer l&#39;activité Vasculogenic de cellules tumorales

Au cours des dernières décennies, un essai de formation de tubes utilisant du Matrigel réduit en facteurs de croissance a été classiquement employé pour démontrer le potentiel angiogénique...

L'objectif général de l'expérience suivante est de mesurer la formation de tubes par divers types de cellules tumorales in vitro, afin d'évaluer l'activité vasculaire in vivo. Cela est réalisé en ajoutant des cellules tumorales sur du matrigel afin d'induire la formation de tubes. Comme deuxième étape.Les cellules sur le matri gel sont incubées toute la nuit à 37 degrés Celsius, ce qui permet la formation de tubes. Ensuite, les tubes produits par chaque type cellulaire sont observés en microscopie. Afin de quantifier le nombre moyen de tubes formés par chaque type cellulaire, des résultats sont obtenus qui montrent la capacité potentielle de ces cellules à former une vascularisation in vivo, basée sur des modèles de tumeurs xénogreffées.Cette méthode peut aider à répondre à des questions clés dans le domaine de la recherche sur le cancer, comme la manière de mesurer l'activité vasculaire in vitro. Pour préparer les cellules tumorales, commencez par cultiver des cellules de mélanome UAD7, B16F1, MDA-MB-435 ou des cellules de colon HCT116. Cultivez-les dans du DMEM supplémenté avec 10 % de FPS et de la pénicilline. Cultivez les cellules endothéliales microvasculaires humaines, ou HECs, dans un milieu EBM-2 supplémenté avec un microgramme par millilitre d'hydrocortisone, un nanogramme par millilitre de facteur de croissance épidermique, 10 % de FBS et de la pénicilline.Lavez les cellules à la PBS avec de la streptomycine, puis détachez-les à l’aide de trypsine EDTA 0,05 %, centrifugez les cellules à 2000 RRM pendant cinq minutes. Lavez-les ensuite à nouveau avec du PBS. Comptez les cellules à l’aide d’un hémocytomètre afin de préparer le gel Matrigel tiède.Amenez un millilitre d'eloqua de matri gel avec facteurs de croissance réduits à température ambiante. Puis placez-le immédiatement sur de la glace pendant 10 minutes. Pipetez 50 microlitres dans les puits d'une plaque de 96 puits.Puis incuber la plaque à 37 degrés Celsius pendant 30 minutes, resuspendre une à deux fois 10 à la puissance 5 cellules tumorales ou endothéliales dans du DMEM ou du eBM2 respectivement, et les déposer sur le dessus du matrigel. Si l'on étudie les effets de réactifs sur le développement des tubules, ajouter le réactif au milieu sans sérum et incuber toute la nuit à 37 degrés Celsius. Pour l'analyse d'image, ajouter 10 microlitres de solution au formol 10 % en milieu salin pendant 10 minutes.Ensuite, réaliser l'acquisition d'images à l'aide d'un microscope à contraste de phase avec un objectif 10 x. Compter le nombre de tubules dans trois à cinq champs aléatoires provenant de chaque puits, puis calculer la moyenne.Les HMC ont été utilisées comme témoin positif, car ces tubules se sont développés à partir de corps cellulaires allongés bien visibles qui se sont reliés pour former un réseau polygonal. Les cellules B16F1, U87 et MDA-MB-435 ont formé des tubules vasculaires similaires à ceux produits par les HEC. En revanche, les cellules HCT116 ne l'ont pas fait.La formation de tubes dépendante de la dose cellulaire a été testée sur des cellules U87. Comme illustré sur cette figure, 10 000 cellules ont formé des tubules discontinus lorsque le nombre de cellules a été doublé. Un réseau vasculaire solide, comparable à celui observé dans les H ecs, s'est développé.En revanche, l'ensemencement avec moins de 5 000 cellules n'a pas permis d'obtenir un phénotype vasculaire. Après avoir visionné cette vidéo, vous devriez bien comprendre comment mettre correctement en place une expérience de test d'assemblage tubulaire sur Matrigel afin de mesurer la formation de tubes par des cellules cancéreuses in vitro.

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Apprenez à mesurer la formation de tubes par des cellules tumorales sur Matrigel pour évaluer l'activité vasculaire in vitro. Cette méthode permet d'étudier le potentiel angiogénique des tumeurs.

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