Name: Caractériser les mécanismes de résistance Herbivores: cercopes sur Brachiaria Spp. comme un exemple (Vidéo) | JoVE Journal
Uploaded: 2011-06-19T14:00:00.000+00:00
Duration: 6 min 52 s
Description: Découvrez une méthode pour caractériser les mécanismes de résistance des plantes aux herbivores chez Brachiaria spp. Ce test sans choix évalue l'antibiose et la tolérance face aux cercopes pour améliorer les programmes de sélection.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Cette production et les travaux expérimentaux présentés ici reflètent l&#39;aide dévouée et enthousiaste de Reynaldo Pareja aimablement pris en charge par Lina Aguirre, Gilberto Córdoba, William Mera, Ximena Bonilla, et Darío Viveros. Nous remercions également John Miles et trois lecteurs anonymes pour les commentaires qui nous ont aidés à améliorer la vidéo et du manuscrit.

1. Plantes <ol><li> Boutures simple à partir de plantes matures sont utilisés comme unités expérimentales. Les boutures sont taillés à 10 cm pour assurer l'uniformité du matériel de plantation. </li><li> Pour éviter la contamination par des agents pathogènes des plantes, les boutures sont lavés dans une solution d'hypochlorite de sodium à 3% pendant 2 min, puis rincée avec de l'eau du robinet thoughroughly. </li><li> Chaque bouture est plantée dans ca. 36 g de sol stérile dans un tube cylindrique en PVC (5,3 cm de diamètre extérieur de 6,5 cm de hauteur) scellé à l'extrémité inférieure avec une tasse de styromousse et coiffé d'une douille en PVC. La coupe est maintenu en place par un anneau en mousse placée dans l'ouverture centrale de la douille. </li><li> Les plantes sont fécondées et arrosés au besoin pour maintenir l'humidité du sol suffisante. </li><li> Les plantes poussent pendant un mois avant d'être contestée par les insectes, ce qui permet le développement des racines superficielles, qui servent de sites d'alimentation pour les nymphes cercope racine xylème-alimentation. </li><li> Tubes en PVC avec des boutures enracinées sont inversées pour les huit d avant l'infestation de stimuler davantage la croissance des racines superficielles, partiellement tenu compte des différences inhérentes à l'architecture des racines. Cette étape nécessite une source de lumière artificielle, qui nous fournissent pour 24 h par jour. Pour éviter échappe confondants d'herbivores à la résistance des herbivores, des plantes individuelles réplique avec peu ou pas de racines superficielles après ce traitement d'inversion sont éliminés de l'expérience. Cette élimination doit être rares, jamais conduisant à l'élimination du génotype qu'ils représentent. </li></ol> 2. Insectes <ol><li> Cercopes adultes sont recueillies sur le terrain, identifiés à l'espèce, et introduit dans des cages de ponte où ils sont fournis feuillage des brachiariagrasses sensibles à nourrir. Les femelles pondent leurs œufs dans le sol contenue dans un bac peu profond, placé sur le fond des cages. </li><li> Après plusieurs jours, le sol est en suspension dans l'eau et passé à travers une série de tamis (42, 60 et 150 mesh) pour collecter les oeufs. Suspendre le matériel tamisée dans une solution saline à 30% des causes les oeufs matures à flotter, laissant derrière lui des œufs immatures et toute matière organique résiduelle. </li><li> Pour éviter la contamination par des pathogènes d'insectes, les œufs sont désinfectés dans une solution d'hypochlorite de sodium à 0,5% pendant 5 min, puis rincée avec de l'eau distillée. </li><li> Chaque usine de test (unité expérimentale) est infesté à la surface du sol avec six oeufs matures. Seuls les oeufs matures à proximité d'incubation sont sélectionnés pour les infestations. Ils peuvent être identifiés par la présence de deux points rouges dans leur partie antérieure, correspondant aux yeux de l'insecte; traces roses dans leur partie postérieure, correspondant à l'abdomen de l'insecte, et un opercule en entier. </li><li> L'éclosion réussie est confirmée quatre jours plus tard, à quel point tout oeuf non éclos est remplacé par un nouveau-né cercope de notre colonie. </li><li> Test de plantes sont disposées en blocs complets randomisés avec six répétitions par génotype. </li></ol> 3. Évaluations <ol><li> L'expérience est évaluée ca. 30 jours après l'infestation (horaires exacts varient selon les espèces d'insectes étudiés). </li><li> Les dommages sont notés sur une échelle de 1 à 5 visuels, où 1 correspond à aucun dommage visible et 5 correspond à une usine de mort (figure 1). Notation des dommages plante fournit une estimation de la tolérance. </li></ol><img src="/files/ftp_upload/3047/3047fig1.jpg" alt="Figure 1" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figure 1"> Ampleur des dommages figure 1. Utilisé pour évaluer la tolérance au cercope herbivores dans les Brachiaria spp. 1 = aucun dommage détectable; 2 = 0-25% du feuillage nécrotiques; 3 = 25-50% du feuillage nécrotiques; 4 = 50-75% du feuillage nécrotiques; 5 = 75-100% du feuillage nécrotiques. <ol start="3"><li> La survie des insectes est évaluée par le comptage des insectes d'atteindre leur stade soit final ou au stade adulte (figure 2). De notation pour la survie des insectes fournit une estimation de l'antibiose. </li></ol><img src="/files/ftp_upload/3047/3047fig2.jpg" alt="Figure 2" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figure 2"> Figure 2. Cercope le développement du premier stade (à gauche) à l'adulte (à droite). Seuls les insectes d'atteindre au moins leur stade final (flèches) à la date de l'évaluation sont considérés comme des «survivants». 4. Les résultats représentatifs Les résultats d'un test hybrides représentant Brachiaria sélection pour la résistance à l'reducta cercope Aeneolamia sont présentés dans la figure 3. <img src="/files/ftp_upload/3047/3047fig3.jpg" alt="Figure 3" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figure 3"> Figure 3. Résultats du dépistage hybrides Brachiaria pour la résistance à cercope Aeneolamia reducta. Nous considérons que les plantes résistantes si leur réponse à l'herbivorie tombe dans la moitié inférieure de ce complot. Augmente Antibiose de droite à gauche et à la tolérance augmente de haut en bas. Les flèches indiquent à nos chèques résistants.

<ol><li>Painter, R. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aPainter%2C+R+%22Insect+resistance+in+crop+plants%22">Insect resistance in crop plants</a>. , Mcmillan. (1951).</li>
<li>Kogan, M., Ortman, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Antixenosis-a+new+term+proposed+to+define+Painter%27s+%27Nonpreference%27+modality+of+resistance%5BTitle%5D)+AND+%22Bull.+Entomol.+Soc.+Am%22%5BJournal%5D)">Antixenosis-a new term proposed to define Painter's 'Nonpreference' modality of resistance.</a> Bull. Entomol. Soc. Am. 24, 175-176 (1978).</li>
<li>Kennedy, G., Gould, F., Deponti, O., Stinner, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Ecological%2C+agricultural%2C+genetic%2C+and+commercial+considerations+in+the+deployment+of+insect-resistant+germplasm%5BTitle%5D)+AND+%22Environ.+Entomol%22%5BJournal%5D)">Ecological, agricultural, genetic, and commercial considerations in the deployment of insect-resistant germplasm.</a> Environ. Entomol. 16, 327-338 (1987).</li>
<li>Holmann, F., Peck, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Economic+damage+of+grassland+spittlebugs+%28Homoptera+Cercopidae%29+in+Colombia%3A+a+first+approximation+of+impact+on+animal+production+in+Brachiaria+decumbens%5BTitle%5D)+AND+%22Neotrop.+Entomol%22%5BJournal%5D)">Economic damage of grassland spittlebugs (Homoptera Cercopidae) in Colombia: a first approximation of impact on animal production in Brachiaria decumbens.</a> Neotrop. Entomol. 31, 275-284 (2002).</li>
<li>Miles, J. W., Cardona, C., Sotelo, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Recurrent+selection+in+a+synthetic+brachiariagrass+population+improves+resistance+to+three+spittlebug+species%5BTitle%5D)+AND+%22Crop+Sci%22%5BJournal%5D)">Recurrent selection in a synthetic brachiariagrass population improves resistance to three spittlebug species.</a> Crop Sci. 46, 1088-1093 (2006).</li>
<li>Ferrufino, A., Lapointe, S. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Host+plant+resistance+in+Brachiaria+grasses+to+the+spittlebug+Zulia+colombiana%5BTitle%5D)+AND+%22Entomol.+Exp.+Appl%22%5BJournal%5D)">Host plant resistance in Brachiaria grasses to the spittlebug Zulia colombiana.</a> Entomol. Exp. Appl. 51, 155-162 (1989).</li>
<li>Lapointe, S. L., Serrano, M. S., Arango, G. L., Sotelo, G., Cordoba, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Antibiosis+to+spittlebugs+%28Homoptera%3A+Cercopidae%29+in+accessions+of+Brachiaria+spp%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Econ.+Entomol%22%5BJournal%5D)">Antibiosis to spittlebugs (Homoptera: Cercopidae) in accessions of Brachiaria spp.</a> J. Econ. Entomol. 82, 1764-1766 (1992).</li>
<li>Cardona, C., Miles, J. W., Sotelo, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((An+improved+methodology+for+massive+screening+of+Brachiaria+spp.+genotypes+for+resistance+to+Aeneolamia+varia+%28Homoptera%3A+Cercopidae%29%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Econ.+Entomol%22%5BJournal%5D)">An improved methodology for massive screening of Brachiaria spp. genotypes for resistance to Aeneolamia varia (Homoptera: Cercopidae).</a> J. Econ. Entomol. 92, 490-496 (1999).</li>
<li>Cardona, C., Fory, P., Sotelo, G., Pabon, A., Diaz, G., Miles, J. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Antibiosis+and+tolerance+to+five+species+of+spittlebug+%28Homoptera%3A+Cercopidae%29+in+Brachiaria+spp.%3A+implications+for+breeding+for+resistance%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Econ.+Entomol%22%5BJournal%5D)">Antibiosis and tolerance to five species of spittlebug (Homoptera: Cercopidae) in Brachiaria spp.: implications for breeding for resistance.</a> J. Econ. Entomol. 97, 635-645 (2004).</li>
<li>Smith, C., Khan, Z., Pathak, M. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aSmith%2C+C+%22Techniques+for+evaluating+insect+resistance+in+crop+plants%22">Techniques for evaluating insect resistance in crop plants</a>. , CRC Press. (1994).</li>
<li>Lapointe, S., Sotelo, G., Arango, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Improved+technique+for+rearing+spittlebugs+%28Homoptera%3A+Cercopidae%29%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Econ.+Entomol%22%5BJournal%5D)">Improved technique for rearing spittlebugs (Homoptera: Cercopidae).</a> J. Econ. Entomol. 82, 1764-1766 (1989).</li>
<li>Lopez, F., Cardona, C., Miles, J. W., Sotelo, G., Montoya, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Screening+for+resistance+to+adult+spittlebugs+%28Hemiptera%3A+Cercopidae%29+in+Brachiaria+spp.%3A+methods+and+categories+of+resistance%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Econ.+Entomol%22%5BJournal%5D)">Screening for resistance to adult spittlebugs (Hemiptera: Cercopidae) in Brachiaria spp.: methods and categories of resistance.</a> J. Econ. Entomol. 102, 1309-1316 (2009).</li>
</ol>

Discrimination entre les mécanismes de résistance des herbivores peut éclairer les efforts d&#39;amélioration des plantes 3. Résistance repose sur antibiose forte pourrait, dans certaines circonstances, de créer des pressions de sélection pour les biotypes de ravageurs plus agressif. D&#39;autre part, la résistance basée sur la tolérance pourrait permettre les populations de ravageurs à augmenter jusqu&#39;à la tolérance est finalement débordé. Sélection pour la résistance durable, exige donc un examen attentif de ce que les mécanismes de résistance conférerait plus de stabilité pour une culture particulière / système de lutte [voir Kennedy et al. (1987) pour une discussion approfondie sur le sujet] 3. Cette vidéo de démonstration s&#39;appuie sur plusieurs études antérieures visant à estimer les contributions relatives de l&#39;antibiose et de tolérance à la résistance dans le cercope brachiariagrasses 6-9. En contraste avec les tests à choix ou des expériences de terrain, aucun des tests à choix s&#39;assurer que toutes les plantes reçoivent la pression des herbivores même, fournissant ainsi de neutraliser les différences résultant de comportements herbivores (par exemple, la préférence d&#39;hôte, agrégation). Pour cette raison, cependant, pas le choix des tests ne sont pas adaptées pour évaluer la résistance des antixénose. Artificiellement l&#39;élevage des colonies d&#39;insectes est la méthode préférée pour obtenir des insectes de test pour des essais de criblage pour la résistance 10. Colonies de fournir une source fiable et uniforme de cercopes d&#39;un âge connu pour des expériences à réaliser à tout moment de l&#39;année 11. Il peut cependant être nécessaire d&#39;effectuer périodiquement infuser individus sauvages dans la colonie afin de s&#39;assurer que la colonie ne s&#39;écarte pas de populations génétiquement domaine pertinent 10. Pour évaluer l&#39;aptitude de ces herbivores artificiellement élevés, et de surveiller d&#39;éventuels changements dans leur agressivité au cours du temps, il est important que toutes les projections incluent des contrôles appropriés de niveaux de résistance connue. Plusieurs paramètres doivent être définis avec soin à la conception d&#39;un test de dépistage de résistance approprié. Quelques paramètres clés que nous avons considéré la conception de notre test incluent l&#39;âge de la plante hôte, l&#39;espèce et le stade de développement de l&#39;cercopes, le niveau d&#39;infestation et la durée de la plante-insecte de contact 8,9,12. Plusieurs cycles de l&#39;expérimentation et le raffinement du protocole peut être nécessaire pour atteindre à une rapide, rentable, fiable, test qui prédit correctement la résistance des herbivores dans le domaine.

caractériser les mécanismes de résistance herbivores: cercopes sur brachiaria spp. comme un exemple

Characterizing Herbivore Resistance Mechanisms: Spittlebugs on Brachiaria spp. as an Example

Les plantes peuvent résister aux dommages herbivore par trois mécanismes principaux: antixénose, antibiose et de tolérance 1. Antixénose est le degré auquel la plante est évité lorsque l&#39;herbivore est capable de sélectionner d&#39;autres plantes 2. Antibiose est le degré auquel la plante affecte l&#39;aptitude de l&#39;herbivore se nourrissant de ce 1. La tolérance est le degré auquel la plante peut résister ou réparer les dommages causés par les herbivores, sans compromettre la croissance de l&#39;herbivore et la reproduction 1. La durabilité de la résistance des herbivores dans un milieu agricole dépend dans une large mesure sur le mécanisme de résistance favorisée lors des efforts d&#39;amélioration des plantes 3. Nous démontrons une expérience non-choix visant à estimer les contributions relatives de l&#39;antibiose et de tolérance à la résistance dans le cercope Brachiaria spp. Plusieurs espèces de graminées d&#39;Afrique de l&#39;Brachiaria genre sont de fourrage précieux et plantes de pâturage dans la région néotropicale, mais ils peuvent être sérieusement remis en question par plusieurs espèces indigènes de cercopes (Hemiptera: Cercopidae) 4. Afin d&#39;évaluer leur résistance aux cercopes, les plantes sont propagées végétativement- par boutures de tiges et de laisser pousser pendant environ un mois, permettant la croissance des racines superficielles sur lesquelles cercopes peuvent se nourrir. À ce moment, chaque plante test est individuelle a contesté avec six oeufs d&#39;incubation cercope proximité. Les infestations sont autorisés à progresser pendant un mois avant d&#39;évaluer les dommages et la survie des insectes. Notation des dommages plante fournit une estimation de la tolérance tout en marquant la survie des insectes fournit une estimation de l&#39;antibiose. Ce protocole a facilité notre objectif d&#39;amélioration des plantes pour améliorer la résistance au cercope brachiariagrases commerciale 5.

Cette vidéo explique les mécanismes de résistance de la plante hôte à l&#39;herbivorie et démontre un test non-choix que les estimations de la contribution relative de l&#39;antibiose et de la tolérance au cercope résistance<em&gt; Brachiaria</em&gt; Spp.

Caractériser les mécanismes de résistance Herbivores: cercopes sur Brachiaria Spp. comme un exemple

Les plantes peuvent résister aux dommages causés par les herbivores grâce à trois mécanismes généraux : l'antixénose, l'antibiose et la tolérance1. L'antixénose correspond au degré auquel la plante est...

Bonjour, je m'appelle Ush Bara et je suis entomologiste au Centre international pour l'agriculture tropicale. L'objectif général est de présenter en vidéo une méthode permettant de caractériser les mécanismes de résistance des plantes hôtes aux herbivores, afin d'appuyer les efforts conjoints de notre initiative de sélection visant à renforcer la résistance aux punaises des racines. Dans ce contexte, les graminées serviront d'exemple.Les cigales piqueuses sont des ravageurs importants de nombreuses graminées à valeur économique, notamment les pâturages tropicaux, la canne à sucre et le maïs. Dans les régions tropicales américaines, les pâturages appartenant au genre *Bacteria* sont leurs hôtes les plus importants. Une plante peut résister aux dégâts causés par les herbivores par trois mécanismes généraux.L'antiose, les antibiotiques, l'intolérance, les antis, parfois appelée non-préférence, est le degré auquel la plante est évitée lorsque l'herbivore peut choisir entre différentes plantes. L'antiose est généralement détectée dans des tests de choix où les herbivores ont accès à plus d'un génotype. L'antibiose est le degré auquel la planté affecte la capacité de survie de l'herbivore qui s'en nourrit.Enfin, la tolérance correspond au degré auquel la plante peut supporter ou réparer les dommages causés par le HBO sans compromettre la croissance et la reproduction de ce dernier. Les deux paramètres, antibiose et tolérance, sont mieux détectés lors de tests sans choix, où les HBO sont confinés et donc contraints de se nourrir sur une seule plante. Notre vidéo démontrera un test sans choix conçu pour estimer l'intolérance aux antibiotiques, le cracheur IV. Chez les graminées en aire, la résistance de la plante-hôte constitue une tactique clé de gestion du cracheur.Cependant, une résistance fondée sur des antibiotiques puissants pourrait créer des pressions de sélection favorisant des biotypes de ravageurs plus virulents. En revanche, une résistance fondée sur la tolérance permettrait aux populations de pucerons gris de continuer à croître jusqu'à ce que leur nombre submerge la plante. Une résistance durable pourrait donc nécessiter un certain niveau à la fois d'antibiotiques et de tolérance.Ce protocole démontrera comment estimer les contributions relatives de chacun à la résistance des pucerons cendrés. Chez Aria Aria, les génotypes proviennent d'une collection du Banque de Germoplasme du Centre International pour l'Agriculture Tropicale. Les plantes sont propagées végétativement à partir de boutures uniques de tige, prélevées sur des plantes matures utilisées comme unités expérimentales.Les boutures sont taillées à 10 centimètres afin d'assurer une uniformité du matériel végétal et d'éviter toute contamination par des agents pathogènes végétaux. Les boutures sont lavées dans une solution d'hypochlorite de sodium à 3 % pendant deux minutes, puis rincées soigneusement à l'eau du robinet. Chaque bouture est plantée dans environ 36 grammes de sol stérile, dans un tube en PVC scellé à la base par un morceau de coupe en polystyrène et fermé par un raccord en PVC.La bouture est maintenue en place par un anneau en mousse placé dans l'ouverture centrale du manchon. Les plantes sont fertilisées et un arrosage est nécessaire pour maintenir une humidité adéquate du sol. Les plantes pousseront pendant un mois avant d'être exposées aux insectes, ce qui permet le développement de racines superficielles qui serviront de sites d'alimentation pour les insectes phytophages racinaires.Le retournement des plantes dans un bain de mousse pendant huit jours avant l'infestation stimule davantage la croissance des racines superficielles, compensant partiellement les différences inhérentes de l'architecture racinaire. Cette étape nécessite une source lumineuse artificielle, que nous fournissons 24 heures sur 24. Plans présentant peu ou pas de racines superficielles.Après ce traitement par inversion, les spécimens sont éliminés de l'expérience. Trente jours après la plantation, chaque plante est infestée à la surface du sol avec six œufs matures obtenus à partir de nos colonies de cigonies. Pour établir ces colonies, des cigonies adultes sont collectées dans le milieu naturel, identifiées au niveau de l'espèce, puis introduites dans des cages appropriées où elles reçoivent du feuillage d'aria sensible à titre de nourriture. Les femelles pondent leurs œufs dans un sol contenu dans un bac peu profond placé au fond des cages.Après plusieurs jours, le sol est mis en suspension dans de l'eau et passé à travers une série de tamis afin de recueillir les œufs. La mise en suspension du matériel dans une solution saline à 30 % provoque la flottaison des œufs matures, laissant les œufs immatures associés aux matières organiques résiduelles. Pour éviter toute contamination par des pathogènes d'insectes, les œufs sont désinfectés dans une solution d'hypochlorite de sodium à 0,5 % pendant cinq minutes, puis rincés à l'eau distillée ; seuls les œufs matures, proches de l'éclosion, sont sélectionnés pour les infestations.Ils peuvent être identifiés par la présence de deux points rouges dans la partie antérieure correspondant aux yeux de l'insecte, de marques roses dans la partie postérieure correspondant à l'abdomen de l'insecte, et d'un a perm complètement développé. L'éclosion réussie est confirmée quatre jours plus tard, moment auquel tout œuf non éclos est remplacé par un bloc de crachat néonatal.D'après notre test de colonie. Les plantes sont disposées selon un plan en blocs complets randomisés avec six répétitions. L'expérience est évaluée environ 30 jours après l'infestation.L'évaluation des dégâts causés aux plantes fournit une estimation de la tolérance. Tandis que l'évaluation de la survie des insectes fournit une estimation des propriétés antibiotiques. Les dégâts sont évalués selon une échelle visuelle de un à cinq, où un correspond à l'absence de dégâts visibles et cinq correspond à la mort de la plante.Ensuite, la survie est évaluée en comptant les insectes atteignant soit leur dernier stade larvaire, soit leur stade adulte. Pour catégoriser les mécanismes de résistance, il est utile de visualiser les résultats à l’aide d’un graphique où la survie des insectes est indiquée sur l’axe des abscisses et les dégâts causés aux plantes sur l’axe des ordonnées. L’antibiose augmente lorsqu’on se déplace de droite à gauche.En revanche, la tolérance augmente lorsqu'on passe du haut vers le bas. Nous considérons qu'une plante est résistante si sa réponse à l'herbivore se situe dans la moitié inférieure de ce graphique. Si cette réponse se trouve dans le quadrant gauche, le mécanisme de résistance dominant est constitué d'antibiotiques.Si la réponse se situe dans le quadrant droit, le mécanisme de résistance dominant est la tolérance. Voici un exemple représentatif de nos données de criblage. Les points en haut représentent les plantes sensibles.Les points du quadrant inférieur gauche représentent les plans résistants aux antibiotiques. Les points du quadrant inférieur droit représentent les plantes résistantes par tolérance. Nous venons d'observer une démonstration d'un test sans choix permettant d'estimer les contributions relatives des antibiotiques et de l'intolérance à la résistance des plantes, quel que soit le mécanisme en jeu.Nous utilisons la résistance aux pucerons cendrés chez Aria comme exemple, mais les principes présentés devraient s'appliquer à d'autres systèmes. Nous espérons que notre vidéo vous aidera dans vos propres travaux. Bonne chance.

characterizing-herbivore-resistance-mechanisms-spittlebugs-on

Research

Recherche

JoVE Journal

Biology

Biologie

La résistance des plantes aux insectes herbivores mâcher peut être testée à plusieurs égards. Ici, nous montrons comment mettre en place un choix et une expérience non-choix avec la plante modèle Arabidopsis thaliana pour identifier la résistance contre les parasites des espèces Pieris rapae.

Les analyses et les choix non-choix pour tester la résistance de A. thaliana d&#39;insectes broyeurs

Une méthode push-pull pour la collecte des plantes volatils est décrite. La méthode permet une comparaison des composés volatils induite par l'alimentation des herbivores, le jasmonate de méthyle exogène, et les dommages mécaniques. Cette technique est également utilisée pour étudier la réponse volatiles de branches intactes à l'exposition aux composés volatils à partir de branches endommagées par des herbivores dans les plants de bleuets.

Herbivores induite Volatiles Blueberry et intra-usine de signalisation

Ce protocole illustre deux méthodes d'inoculation d'introduire le champignon...

Établir entomopathogènes fongiques comme endophytes: Vers un contrôle biologique endophytique

Protocoles pour la préparation efficace des échantillons homogènes de tétranyques, l'infestation de plantes expérimentales et l'évaluation des dommages aux plantes, tel que requis pour les études d'interaction plante-ravageur ont été développés.

Application de deux tétranyque<em&gt; Tetranychus urticae</em&gt; D&#39;études des plantes-parasites interaction

Une approche robuste et flexible pour confirmer la résistance aux herbicides dans les populations de mauvaises herbes est présentée. Ce protocole permet de déduire les niveaux de résistance aux herbicides et de les appliquer à un large éventail d’espèces de mauvaises herbes et d’herbicides avec des adaptations mineures.

Protocoles pour les essais la résistance aux herbicides robuste chez différentes espèces de mauvaises herbes

La quantification de la croissance des agents pathogènes est un outil puissant pour caractériser diverses réponses immunitaires d’Arabidopsis thaliana (ci-après : Arabidopsis). La méthode décrite ici présente un test d’infiltration à la seringue optimisé pour quantifier le Pseudomonas syringae pv. maculicola Croissance d’ES4326 dans les feuilles adultes d’Arabidopsis.

Bactérienne Feuille Infiltration Essai de caractérisation fine des réponses de défense des plantes à l&#39;aide du<em&gt; Arabidopsis thaliana-Pseudomonas syringae</em&gt; Pathosystème

Nous présentons un guide visuel pour les comportements de défense de la maladie dans les fourmis phyllophages, avec des séquences individuelles et les définitions connexes, illustrées dans un scénario d’infection expérimentale. Notre but principal est d’aider les autres chercheurs à reconnaître les comportements défensifs clés et à fournir une compréhension commune des recherches futures dans ce domaine.

Un Guide visuel pour étudier les défenses comportementales à pathogène s’attaque à fourmis coupe-feuille

La méthode présentée crée des tissus végétaux naturels endommagés par l'herbivore grâce à l'application de larves de sexta de Manduca sur des feuilles détachées de pommes de terre. Le tissu végétal est mis en ligne pour l'expression de six homologs de facteur de transcription impliqués dans les réponses précoces à l'herbivorie d'insecte.

Des essais de feuilles détachées pour simplifier les études sur l'expression génique de la pomme de terre pendant l'infestation par l'insecte à mâcher Manduca sexta

Le présent protocole décrit une méthode permettant de recueillir suffisamment de salive auprès d’insectes perçants-suceurs à l’aide d’un milieu artificiel. Il s’agit d’une méthode pratique pour collecter la salive des insectes et étudier la fonction salivaire sur le comportement alimentaire des insectes et la transmission du virus à transmission vectorielle.

Méthode sandwich à membrane à deux couches pour la collection de salive Laodelphax striatellus

Le présent protocole décrit une méthode pour induire la dispersion des juvéniles du troisième stade (juvéniles pré-dauer, JIII.) de Bursaphelenchus xylophilus dans la cryptobiose par régulation osmotique des ions chlorure de potassium (KCl). Cette méthode peut fournir un soutien technique à la recherche sur les mécanismes de résistance au stress de B. xylophilus.

Induction de l’entrée des juvéniles de dispersion du troisième stade de Bursaphelenchus xylophilus dans la cryptobiose par régulation osmotique

Découvrez une méthode pour caractériser les mécanismes de résistance des plantes aux herbivores chez Brachiaria spp. Ce test sans choix évalue l'antibiose et la tolérance face aux cercopes pour améliorer les programmes de sélection.

Caractériser les mécanismes de résistance Herbivores: cercopes sur Brachiaria Spp. comme un exemple

Explorer plus de vidéos